Растворяют компоненты в воде, при необходимости производя нагрев. При необходимости регулируют pH так, чтобы после стерилизации он был равен 7,0 +/- 0,2 при температуре 25 °C.
5.2. Питательная среда
5.2.1.1. Состав
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Ферментный гидролизат животных и растительных ? 5,0 г ?
?тканей ? ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?D-Глюкоза (C H O ) ? 10,0 г ?
? 6 12 6 ? ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Дигидрофосфат калия (KH PO ) ? 1,0 г ?
? 2 4 ? ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Сульфат магния (MgSO ·H O) ? 0,5 г ?
? 4 2 ? ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Дихлоран (2,6-дихлор-4-нитроанилин) ? 0,002 г ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Бенгальский розовый ? 0,025 г ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
? ? а ?
?Агар ?12 г до 15 г ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Хлорамфеникол ? 0,1 г ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Вода дистиллированная или деионизированная ? 1000 см3 ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
? В зависимости от прочности студня агара. ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
5.2.1.2. Приготовление
5.2.1.2.1. Общие вопросы
Суспендируют в воде все ингредиенты, кроме хлорамфеникола, и доводят до кипения для полного растворения. При необходимости регулируют pH так, чтобы после стерилизации он был равен 5,6 +/- 0,2 при температуре 25 °C.
Добавляют 10 см3 1%-ного раствора хлорамфеникола (массовая концентрация) в этаноле и перемешивают. Распределяют среду в большом количестве в удобные контейнеры (6.5) подходящей емкости. Стерилизуют в автоклаве при температуре 121 °C в течение 15 мин.
Затем среду немедленно охлаждают в водяной бане (6.3), поддерживаемой при температуре от 44 °C до 47 °C. Охлаждают до температуры ниже 50 °C и распределяют в объеме по 15 см3 в стерильные чашки Петри (6.6).
Оставляют среду до затвердевания и, при необходимости, сушат поверхность чашек, как описано в ИСО 7218 и ИСО/ТС 11133-1 и ИСО/ТС 11133-2.
Среды используют немедленно или хранят в темноте согласно ИСО/ТС 11133-1 и ИСО/ТС 11133-2.
Предупреждение: следует избегать воздействия света на среду, поскольку в результате недооценки микофлоры в образцах могут быть образованы цитотоксические продукты распада.
5.2.1.2.2. Факультативное добавление гидрохлорида хлортетрациклина
Если возникают сложности из-за чрезмерного бактериального роста (например, при использовании сырого мяса), рекомендуется использовать хлорамфеникол (50 мг/дм3) и хлортетрациклин (50 мг/дм3). В этом случае приготовляют среду, как описано выше, только с использованием 50 мг хлорамфеникола, распределяют ее в объеме по 100 см3 и стерилизуют. Готовят также раствор 0,1%-ного гидрохлорида хлортетрациклина (массовая концентрация) в воде (будучи относительно неустойчивым в растворе, он должен быть свежеприготовленным) и стерилизуют фильтрацией. Непосредственно перед использованием добавляют 5 см3 этого раствора асептически к 100 см3 основной среды и разливают в чашки. Использование гентамицина не рекомендуется, так как согласно представленным данным он вызывает ингибирование некоторых видов дрожжевых грибов.
5.2.1.2.3. Факультативное добавление микроэлементов
Для идентификации плесневых грибов на среде DRBC перед обработкой в автоклаве добавляют раствор следующих микроэлементов в объеме 1 см3 на литр среды:
- 1 г; - 0,5 г; вода дистиллированная или деионизированная - 100 см3 ([1]).5.2.1.2.4. Факультативное добавление тергитола
Для предотвращения чрезмерного роста микроорганизма Mucoraceae на агаровых пластинах рекомендуется добавление к культуральной среде тергитола (1 см3/дм3).
5.2.1.3. Испытание рабочих характеристик для гарантии качества питательной среды
5.2.1.3.1. Общие вопросы
DRBC является твердой средой. Продуктивность и селективность - по ИСО/ТУ 11133 (все части) со следующими техническими и условиями:
5.2.1.3.2. Продуктивность
Инкубация:
5 дней при (25 +/- 1) °C.
Штаммы:
Saccharomyces cerevisiae ATCC 9763,
Candida albicans ATCC 10231,
Aspergillus niger ATCC 16404,
Mucor racemosus ATCC 42647
или штаммы, зарегистрированные как эквивалентные в других грибковых семействах.
Эталонные среды:
партия сред SDA (декстрозный агар Сабуро), уже валидированных.
Контрольный метод:
количественный.
Критерии:
коэффициент продуктивности,
.Характеристическая реакция:
характеристические колонии/пропагулы/зародыши согласно каждому виду.
5.2.1.3.3. Селективность
Инкубация:
5 дней при (25 +/- 1) °C.
Штаммы:
Escherichia coli ATCC 25922 или
Bacillus subtilis ATCC 6633,
или штаммы, зарегистрированные как эквивалентные в других бактериальных семействах.
Контрольный метод:
качественный.
Критерии:
полное ингибирование.
Одноразовая аппаратура является приемлемой альтернативой стеклянной посуде многоразового использования, если она обладает подходящими техническими характеристиками. Используют следующее обычное микробиологическое оборудование:
6.4. pH-метр, с точностью измерения до 0,1 единицы pH при 25 °C.
6.5. Бутылки, колбы и пробирки для кипячения и хранения питательной среды и для приготовления разведений.
6.7. Микроскоп для отличия дрожжевых грибов от бактериальных клеток (область увеличения от 250 до 1000 раз).
6.8. Шпатели, сделанные из стекла или пластика (диаметром меньше 2 мм и длиной 80 мм). Диаметр не должен превышать 2 мм, чтобы минимизировать количество образца, прилипающего к шпателям в конце процедуры его распределения.
6.9. Бинокулярная лупа для различения и дифференцирования колоний/клеток дрожжевых и плесневых грибов (увеличение от 6,5 до 50 раз).
В лабораторию следует отправлять представительную пробу. Она не должна быть повреждена или изменена во время транспортирования или хранения. Лабораторную пробу не замораживают.
Отбор проб не является частью метода, установленного настоящим стандартом. Отбор проб следует проводить согласно стандарту на проверяемый продукт. Если не существует стандарта на проверяемый продукт, заинтересованным сторонам рекомендуется достичь соглашения по этому вопросу.
Образец для испытания приготовляют согласно ИСО 6887 (все части), ИСО 7218, ИСО 8261 и стандарту на проверяемый продукт. Если не существует стандарта на проверяемый продукт, заинтересованным сторонам рекомендуется достичь соглашения по этому вопросу.
9.1. Навеска, исходная суспензия и разведения.
Приготовляют навеску, исходную суспензию (первичную суспензию) и последующие разведения согласно ИСО 6887 (все части), ИСО 7218, ИСО 8261 и стандарту на проверяемый продукт.
Помимо специального приготовления испытательного образца рекомендуется использовать в качестве растворителя 0,1%-ную пептонную воду с питательным бульоном (5.1.3). Использование перистальтического гомогенизатора предпочтительнее смесителя или шейкера.
По причине быстрого осаждения спор в пипетке (6.2) ее следует держать в горизонтальном (не вертикальном!) положении при заполнении соответствующим объемом исходной суспензии и разведений.
Встряхивают исходную суспензию и разведения для избежания осаждения частиц, содержащих микроорганизмы.
9.2. Инокуляция и инкубация
9.2.1. На одну агаровую пластинку с DRBC (5.2.1) переносят с помощью стерильной пипетки (6.2) 0,1 см3 испытательного образца, если это жидкость, или 0,1 см3 исходной суспензии - в случае других продуктов (раздел 8).
На вторую агаровую пластинку с DRBC переносят с помощью новой стерильной пипетки 0,1 см3 первого десятикратного
Для облегчения подсчета низких популяций дрожжевых и плесневых грибов объемы, вплоть до 0,3 см3 разведения
Эти операции повторяют с последующими разведениями, используя новую стерильную пипетку для каждого десятикратного разведения.
Примечание. Если предполагается присутствие быстрорастущих плесневых грибов, следует использовать ИСО 21527-2 [6].
9.2.2. Жидкость распределяют по поверхности агаровой пластинки стерильным шпателем (6.8) до тех пор, пока она не будет полностью абсорбирована в среду.
Для инокуляции пластинок можно также использовать наливной метод, но в этом случае эквивалентность результатов должна быть валидирована при сравнении с поверхностной инокуляцией, и различение и дифференцирование плесневых и дрожжевых грибов неприемлемы. Метод нанесения на поверхность может дать более высокие результаты подсчета. Поверхностный метод обеспечивает максимальное воздействие атмосферного кислорода на клетки и предотвращает риск тепловой инактивации грибных пропагул. Результаты могут зависеть от типа грибов.
9.2.3. Приготовленные пластинки (9.2.2) инкубируют аэробно, с крышками наверху, в прямом положении в инкубаторе (6.1) при (25 +/- 1) °C в течение пяти дней. При необходимости агаровые пластинки выдерживают на рассеянном свете от одного до двух дней.
Рекомендуется инкубировать чашки (6.6) в открытом пластмассовом пакете во избежание загрязнения инкубатора в случае разрастания плесневых грибов из чашек.
9.3. Подсчет и отбор колоний для подтверждения
Считывают пластинки в промежутке от двух до пяти дней инкубации. Отбирают чашки (9.2.3), содержащие меньше 150 колоний/пропагул/зародышей, и подсчитывают эти колонии/пропагулы/зародыши. Если возникают трудности из-за быстрорастущих плесневых грибов, подсчитывают колонии/пропагулы/зародыши через два дня и снова через пять дней инкубации.
Примечания. 1. Методы подсчета дрожжевых и особенно плесневых грибов не являются точными, потому что они состоят из смеси мицелия и спор бесполого и полового размножения. Количества колониеобразующих единиц зависят от степени фрагментации мицелий и соотношения спор, способных расти на питательной среде.
2. Часто имеет место нелинейность подсчетов при инокуляции с использованием разведений, т.е. 10-кратные разведения часто не дают 10-кратного уменьшения количества колоний, полученных на питательной среде. Это относят за счет фрагментации мицелия и разрыва скоплений спор во время разведения, помимо конкурентного ингибирования, когда на пластинах вырастает большое число колоний.
Предупреждение: споры плесневых грибов рассеиваются в воздухе с большой легкостью, поэтому при работе с чашками Петри следует соблюдать осторожность во избежание развития сателлитных колоний, которые дают завышенную оценку популяции в образце.
При необходимости проводят исследование с помощью бинокулярной лупы (6.9) или микроскопа (6.7) для различения клеток дрожжевых или плесневых грибов и бактерий от колоний.
Подсчитывают колонии дрожжевых грибов и колонии/пропагулы плесневых грибов по отдельности, если необходимо.
Для идентификации дрожжевых и плесневых грибов отделяют области грибного роста и удаляют для высокоэффективного микроскопического анализа или инокулируют на подходящую разделительную или идентификационную среду.
См. ИСО 7218.
При необходимости регистрируют колонии дрожжевых грибов и колонии/пропагулы плесневых грибов отдельно.
Протокол испытания должен включать в себя, как минимум:
a) информацию, необходимую для полной идентификации образца;
b) используемый метод приготовления образцов (если известен);
c) используемый метод испытания со ссылкой на настоящий стандарт;
d) все рабочие подробности, не установленные в настоящем стандарте или факультативные, вместе с подробностями любых инцидентов, которые могли бы повлиять на результаты испытания;
e) полученные результаты испытания.
(обязательное)
СВЕДЕНИЯ О СООТВЕТСТВИИ ССЫЛОЧНЫХ МЕЖДУНАРОДНЫХ СТАНДАРТОВ
ССЫЛОЧНЫМ НАЦИОНАЛЬНЫМ СТАНДАРТАМ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ
Таблица ДА.1
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
? Обозначение ? Степень ? Обозначение и наименование ?
? ссылочного ?соответствия ? соответствующего национального стандарта ?
? международного? ? ?
? стандарта ? ? ?
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
?ИСО 6887-1:1999? - ? * ?
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
?ИСО 6887-2:2003? - ? * ?
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
?ИСО 6887-3:2003? - ? * ?
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
?ИСО 6887-4:2003? - ? * ?
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
?ИСО 7218:2007 ? IDT ?ГОСТ Р ИСО 7218-2008 "Микробиология пищевых?
? ? ?продуктов и кормов для животных.?
? ? ?Общие требования и рекомендации по?
? ? ?микробиологическим исследованиям" ?
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
?ИСО 8261:2001 ? - ? * ?
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
?ИСО/ТС 11133- ? IDT ?ГОСТ Р ИСО 11133-1-2008 "Микробиология?
?1:2000 ? ?пищевых продуктов и кормов для животных.?
? ? ?Руководящие указания по приготовлению и?
? ? ?производству культуральных сред. Часть 1.?
? ? ?Общие руководящие указания по обеспечению?
? ? ?качества приготовления культуральных сред в?
? ? ?лаборатории" ?
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
?ИСО/ТС 11133- ? IDT ?ГОСТ Р ИСО 11133-2-2008 "Микробиология?
?1:2003 ? ?пищевых продуктов и кормов для животных.?
? ? ?Руководящие указания по приготовлению и?
? ? ?производству культуральных сред. Часть 2.?
? ? ?Практические руководящие указания по?
? ? ?эксплуатационным испытаниям культуральных?
? ? ?сред" ?
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
?утверждения рекомендуется использовать перевод на русский язык данного?
?международного стандарта. Перевод данного международного стандарта?
?находится в Федеральном информационном фонде технических регламентов и?
?стандартов. ?
? Примечание: в настоящей таблице использовано условное обозначение?
?степени соответствия стандартов: ?
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
practice. Blackwell, Oxford, 2005. 324 p.
In: Corry, J.E.L., Curtis, G.D.W., Baird, R.M., editors. Handbook of
culture media for food microbiology, pp. 369-386. Elsevier, Amsterdam,
2003. (Progress in industrial microbiology, Vol 37)
Guerrero, A.S.,
-Malo, A., Ohlsson, I., Olsen, M., Peinado, J.M., Schnurer, J., de Siloniz, M.I., Tornai-Lehoczki, J. (2001) Performance
of mycological media in enumerating desiccated food spoilage yeasts:
An interlaboratory study. Int. J. Food Microbiol. 2001, 70, pp. 89-96
medium for enumeration and isolation of molds from foods. Appl.
Environ. Microbiol. 1979, 37, pp. 959-964
[5] ISO 6107-6:2004 Water quality - Vocabulary Part 6
Horizontal method for the enumeration of yeasts and moulds - Part 2:
Colony count technique in products with water activity less than
or equal to 0,95
Вернуться в "Каталог нормативных документов"
Источник информации: https://internet-law.ru/documents/prod/gost-r_gosudarstvennyj-standart/50/gost_44611.html
На правах рекламы:
|