Полное меню
- Актуальное
законодательство - Интернет
и право- - Рассылка ''Закон есть закон''
- - Форум сайта (архив)
- - Законодательство
- - Судебная практика (необычная)
- - Судебная практика (авторская)
- - Процедура UDRP и и решения WIPO
- - Книги серии ''Интернет и Право''
- - Книги в открытом доступе
- - Учебный курс ''Интернет и Право''
- - Учебный курс ''Доменные споры''
- - Литература по ''Интернет и Право''
- - Литература по интел. собственности
- - Научный уголок (работы гостей)
- - Авторские публикации
- Информационные
материалы - ЮРИДИЧЕСКИЕ
УСЛУГИ- - Перечень юридических услуг
- - Карта юридических услуг
- - Юридическая консультация
- - Доменные споры (RU), авторское право
- - Международный суд по доменам (COM)
- - Защита прав на маркетплейсе (WB, Ozon)
- - Защита прав в соцсетях (Vk, Ok, FB)
- - Купля-продажа домена, сайта, ПО
- - Досудебное урегулирование конфликта
- - Защита чести и деловой репутации
- - Отмена блокировки сайта/домена РКН
- - ФАС: товарные знаки, авторское право
- - Регистрация ПО/сайта (Роспатент)
- - Юридическая проверка домена
- - Нотариальное заверение сайтов
- - Способы и формы оплаты услуг
- - Мы в СМИ
- - О компании, клиенты
- - Наши дела и победы
- - Контакты и реквизиты
- Информация
о сайте -
ОписаниеИсточник публикации М.: Стандартинформ, 2010 Примечание к документу Документ утратил силу с 15 февраля 2015 года в связи с изданием Приказа Росстандарта от 29.11.2012 N 1766-ст. Взамен введен в действие ГОСТ 31744-2012. Документ включен в Перечень национальных стандартов, содержащих правила и методы исследований (испытаний) и измерений, в том числе правила отбора образцов, необходимых для применения и исполнения Федерального закона "Технический регламент на молоко и молочную продукцию" и осуществления оценки соответствия (Распоряжение Правительства РФ от 15.12.2008 N 1866-р). Документ введен в действие с 1 июля 2011 года. Название документа "ГОСТ Р 53400-2009 (ИСО 7937:2004). Национальный стандарт Российской Федерации. Микробиология пищевых продуктов и кормов для животных. Метод подсчета колоний Clostridium perfringens" (утв. и введен в действие Приказом Ростехрегулирования от 24.09.2009 N 423-ст) "ГОСТ Р 53400-2009 (ИСО 7937:2004). Национальный стандарт Российской Федерации. Микробиология пищевых продуктов и кормов для животных. Метод подсчета колоний Clostridium perfringens"
|
ИС NORMPROD: примечание. В тексте документа, видимо, допущена опечатка: таблица B.4 в тексте документа отсутствует. |
Определение селективности и качества среды проводят по ГОСТ Р ИСО 11133-1. Для проверки характеристик применяют ГОСТ Р ИСО 11133-2 (см. таблицу B.4).
5.4.1.1. Состав в соответствии с таблицей 4.
Таблица 4
??????????????????????????????????????????????????????????????????
? Состав ? Значение показателя ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Ферментативный перевар казеина, г ? 5,0 ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Дрожжевой экстракт, г ? 2,5 ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Хлорид натрия, г ? 2,5 ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Лактоза, г ? 10,0 ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?L-Цистин гидрохлорид, г ? 0,3 ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?D-Глюкоза, г ? 5,5 ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Вода, см3 ? 1000 ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
5.4.1.2. Приготовление
Растворяют компоненты в воде, при необходимости раствор доводят до кипения. Устанавливают уровень pH, чтобы после стерилизации он соответствовал (7,1 +/- 0,2) при 25 °C.
Среду разливают по 8 см3 в пробирки с обратными трубками Дархема и стерилизуют в автоклаве 15 мин при 121 °C.
Среду хранят в холодильнике при температуре (3 +/- 2) °C не более четырех недель после приготовления.
5.4.2.1. Состав в соответствии с таблицей 5.
Таблица 5
??????????????????????????????????????????????????????????????????
? Состав ? Значение показателя ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Двунатрий дисульфит (Na S O ) безводный, г? 1,2 ?
? 2 2 5 ? ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Вода, см3 ? 100 ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
5.4.2.2. Приготовление
Растворяют двунатрий дисульфит в воде и стерилизуют.
Раствор используют в течение дня.
5.4.3.1. Состав в соответствии с таблицей 6.
Таблица 6
??????????????????????????????????????????????????????????????????
? Состав ? Значение показателя ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Железа (III) - аммония цитрат, г ? 1,0 ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Вода, см3 ? 100 ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
5.4.3.2. Приготовление раствора
Растворяют цитрат железа (III) - аммония в воде и стерилизуют раствор фильтрованием.
Раствор используют в течение дня.
5.4.4. Полная среда
Перед составлением полной среды ее деаэрируют нагреванием и последующим быстрым охлаждением. В случае хранения среды во флаконах с завинчивающимися крышками крышки ослабляют перед нагреванием и затем завинчивают перед охлаждением.
Затем к каждым 8 см3 основы среды (см. 5.4.1) добавляют 0,5 см3 раствора цитрата железа (III) - аммония (см. 5.4.3) и 0,5 см3 раствора двунатрия дисульфита (см. 5.4.2).
Среда используется в течение дня.
5.5.1. Состав в соответствии с таблицей 7.
Таблица 7
??????????????????????????????????????????????????????????????????
? Состав ? Значение показателя ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Ферментативный гидролизат казеина, г ? 5,0 ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Мясной экстракт, г ? 3,0 ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Галактоза, г ? 5,0 ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Глицерин, г ? 5,0 ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Азотнокислый калий (KNO ), г ? 1,0 ?
? 3 ? ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Динатрийфосфат (Na HPO ), г ? 2,5 ?
? 2 4 ? ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Агар, г ? 1,0 - 5,0 * ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Диазорезорин, г ? 0,001 ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Вода, см3 ? 1000 ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
??????????????????????????????????????????????????????????????????
5.5.2. Приготовление
Растворяют компоненты в воде, при необходимости раствор доводят до кипения. Устанавливают уровень pH, чтобы после стерилизации он соответствовал (7,3 +/- 0,2) при 25 °C.
Среду разливают в пробирки с выросшей разводкой-культурой по 10 см3 и стерилизуют в автоклаве 15 мин при 121 °C. Если среду не использовали в день приготовления, то ее хранят в холодильнике при температуре (5 +/- 3) °C не более четырех недель после приготовления.
Непосредственно перед использованием подогревают в кипящей воде или на пару в течение 15 мин и затем быстро охлаждают до температуры разведения.
Растворяют 0,1 г 5-2-ANSA в 100 см3 15%-ного (объемная доля) раствора уксусной кислоты. Фильтруют через бумажный фильтр.
Реактив хранят в хорошо закупоренном флаконе (предпочтительно с капельницей шаровидной формы) в холодильнике при температуре (5 +/- 3) °C.
Растворяют 0,4 г сульфаниловой кислоты в 100 см3 15%-ного (объемная доля) раствора уксусной кислоты. Фильтруют через бумажный фильтр.
Реактив хранят в хорошо закупоренном флаконе (предпочтительно с капельницей шаровидной формы) в холодильнике при температуре (5 +/- 3) °C.
5.6.3. Приготовление полного реактива
Смешивают равные количества двух растворов (см. 5.6.1 и 5.6.2) непосредственно перед использованием. Неиспользованный реактив уничтожают.
5.8.1. Состав в соответствии с таблицей 8.
Таблица 8
??????????????????????????????????????????????????????????????????
? Состав ? Значение показателя ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Ферментативный гидролизат казеина, г ? 15,0 ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Дрожжевой экстракт, г ? 10,0 ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Галактоза, г ? 10,0 ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Желатин, г ? 120,0 ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Фенол красный, г ? 0,05 ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Вода, см3 ? 1000 ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
5.8.2. Приготовление среды
Растворяют компоненты в воде (кроме лактозы и фенола красного). Устанавливают уровень pH, чтобы после стерилизации он соответствовал (7,5 +/- 0,2) при 25 °C.
Добавляют лактозу и фенол красный. Среду разливают в пробирки по 10 см3 и стерилизуют в автоклаве 15 мин при 121 °C. Если среду не использовали в день приготовления, то ее хранят в холодильнике при температуре (5 +/- 3) °C не более трех недель после приготовления.
Непосредственно перед использованием подогревают в кипящей воде или на пару в течение 15 мин и затем быстро охлаждают до температуры разведения.
Примечание. При одинаковой спецификации одноразовое оборудование предпочтительнее многоразового.
Используют обычное лабораторное оборудование, а также следующее:
6.1. Стерилизаторы сухожаровые (печи) или паровые (автоклавы) по ГОСТ Р ИСО 7218.
6.2. Термостат, поддерживающий температуру (37 +/- 1) °C.
6.3. Анаэростат, обеспечивающий культивирование анаэробных микроорганизмов.
6.4. pH-метр с разрешением 0,01 единиц pH и точностью +/- 0,1 pH при 25 °C.
6.5. Бактериологические петли из платино-иридиевого или никель-хромового сплава, около 3 мм в диаметре, и иглы из тех же материалов для пересева в агаровые косяки.
6.6. Приборы для фильтрования, предназначенные для стерилизации растворов.
6.7 Пробирки размером 16 x 160 мм с перевернутыми трубками Дархема, длиной 35 мм и диаметром 7 мм.
6.11. Резиновые колбы, используемые с градуированными пипетками для разбрызгивания компонентов нитратного реактива обнаружения (при необходимости).
В лабораторию направляют представительный образец. Образец не должен быть поврежден или изменен в процессе транспортирования или хранения.
Отбор проб не является частью метода, приведенного в настоящем стандарте. Рекомендуется достижение соглашения заинтересованных сторон касательно отбора проб конкретного продукта при отсутствии специального стандарта для данного продукта.
Подготовку проб проводят в соответствии со специальным стандартом для данного продукта. Рекомендуется достижение соглашения заинтересованных сторон касательно подготовки проб конкретного продукта при отсутствии специального стандарта на подготовку проб данного продукта.
Приготовление пробы и первичного разведения в зависимости от вида продукта согласно соответствующей части ГОСТ 26669.
С помощью стерильной пипетки (см. 6.8) переносят в двух повторностях 1 см3 исходной суспензии или испытуемой пробы (если продукт жидкий) в центр пустых чашек Петри (см. 6.9).
Наливают в обе чашки от 10 до 15 см3 SC агара (см. 5.2.3), подогретого в водяной бане (см. 6.10) при температуре от 44 °C до 47 °C, и хорошо перемешивают с испытуемой пробой, осторожно вращая чашки. После затвердевания среды добавляют сверху 10 см3 дополнительно SC агара.
Оставляют чашки для затвердевания агара. Застывшие чашки агара с исходной пробой помещают в анаэростат или другие приборы, обеспечивающие культивирование анаэробных микроорганизмов, и инкубируют в анаэробных условиях в течение (20 +/- 2) ч при температуре 37 °C.
Более продолжительное инкубирование может привести к излишнему почернению среды.
Повторяют процедуру с последующими десятикратными разведениями (см. 9.1).
После установленного периода инкубации (см. 9.2) выделяют все чашки Петри, содержащие менее 150 колоний. Из них выделяют чашки с двумя последовательными разведениями. Подсчитывают на каждой чашке характерные колонии, предположительно относящиеся к C. perfringens.
Выделяют из каждой чашки пять типичных колоний и подтверждают их, используя одну из методик, описанных в 9.4.2 или 9.4.3.
9.4. Биохимическое подтверждение
9.4.1. Общие положения
Для целей подтверждения может быть использован набор сред для биохимических испытаний в соответствии с ГОСТ Р ИСО 7218.
Примечание. Реакция, протекающая в лактозо-сульфитной среде (см. 5.4) при 46 °C, очень специфична для C. perfringens и C. absonum. Поэтому необязательно добиваться дополнительной очистки черных колоний, выделенных с агаровой среды, перед их посевом на тиогликолатную и затем на лактозо-сульфитную среду.
Каждую изолированную колонию (см. 9.3) пересевают на жидкую тиогликолатную среду (см. 5.3). Инкубируют в анаэробных условиях в течение 18 - 24 ч при температуре 37 °C.
9.4.2.2. Обработка результатов
Исследуют пробирку с LS средой, учитывая образование газа и наличие черного окрашивания (осадок сульфита железа). Трубки Дархема, заполненные более чем на одну четвертую часть газом, и пробирки, содержащие черный осадок, оценивают как положительные.
В сомнительных случаях, когда трубка Дархема в пробирке с почерневшей средой заполнена газом менее чем на четверть, без промедления, с помощью стерильной пипетки переносят пять капель культуры с LS средой (см. 9.4.2.1) в другую пробирку с той же средой. Инкубируют на водяной бане (см. 6.10) при температуре от 46 °C в течение 18 - 24 ч. Оценивают эти пробирки, как описано выше.
Бактерии, которые образуют типичные колонии на LS среде и дают положительную реакцию подтверждения на LS среде, относят к C. perfringens. Во всех прочих случаях пробирки с посевами рассматривают как отрицательные.
9.4.3. Методика подтверждения с использованием подвижной нитратной среды и лактозо-желатиновой среды
9.4.3.1. Общие положения
Для данной методики подтверждения требуются хорошо изолированные типичные колонии. Если их нет (т.е. они чрезмерно разрослись на поверхности чашек, и нет возможности выбрать хорошо изолированные типичные колонии), засевают пять типичных колоний на предварительно деаэрированные жидкие тиогликолатные среды (см. 5.3).
ИС NORMPROD: примечание. В тексте документа, видимо, допущена опечатка: пункт 5.2.1.2 в тексте документа отсутствует. |
Инкубируют в анаэробных условиях при температуре 37 °C в течение 18 - 24 ч. Штрихуют колонии на чашках с основным агаром SC (5.2.1.2) и добавляют сверху 10 см3 основного агара SC.
Дают застыть агару и инкубируют в анаэробных условиях при температуре 37 °C в течение 18 - 24 ч. Потом выбирают из каждой чашки одну типичную и хорошо выделенную колонию.
При необходимости повторяют штрихование и посев на чашки Петри с основным агаром SC до получения хорошо изолированных типичных колоний.
9.4.3.2. Инокуляция и исследование подвижной нитратной среды
Инокулируют уколом каждую выделенную колонию (см. 9.3) в только что деаэрированную подвижную нитратную среду (см. 5.5).
Инкубируют в анаэробных условиях при 3 °C в течение 24 ч. Исследуют пробирку с подвижной нитратной средой на тип культуры по линии укола. Подвижность очевидна по диффузному распределению бактерий в среду от линии укола.
Проводят испытание на присутствие нитрита, добавляя с помощью градуированной пипетки (см. 6.8) и резиновой колбы (см. 6.11) от 0,2 до 0,5 см3 нитритного реактива обнаружения (см. 5.6) в каждую пробирку с подвижной нитратной средой.
Примечание. В целях безопасности проводят это испытание в вытяжном шкафу.
Образование красного цвета подтверждает восстановление нитрата до нитрита. Если красный цвет не появляется в течение 15 мин, добавляют небольшое количество цинковой пыли (см. 5.7) и дают отстояться в течение 10 мин. Если красный цвет не появился после добавления цинковой пыли, восстановления нитрата не произошло.
Инокулируют каждую выделенную колонию (см. 9.3) в только что деаэрированную лактозо-желатиновую среду (см. 5.8). Инкубируют в анаэробных условиях при 37 °C в течение 24 ч.
Исследуют пробирку с лактозо-желатиновой средой на присутствие газа и желтого цвета (благодаря образованию кислоты), указывающих на ферментацию лактозы. Охлаждают пробирки при 5 °C в течение 1 ч и проверяют на сжижение желатина. Если среда застыла, повторно инкубируют в течение еще 24 ч и снова проверяют на сжижение желатина.
Бактерии, которые образуют черные колонии в среде SC, неподвижны, обычно восстанавливают нитрат до нитрита, вырабатывают кислоту и газ из лактозы и сжижают желатин за 48 ч, относятся к бактериям C. perfringens. Культуры, которые дают слабую реакцию на нитрит (т.е. розового цвета), должны быть ликвидированы, так как бактерии C. perfringens дают сильную и немедленную реакцию.
10.1. Метод расчета
Обработка результатов - по ГОСТ Р ИСО 7218.
10.2. Сходимость
10.2.1. Межлабораторные испытания
Данные о сходимости этого метода, описанные в настоящем стандарте, базируются на результатах межлабораторного испытания [1]. Детали этого межлабораторного испытания приведены в Приложении A. Предельные значения повторяемости и воспроизводимости определялись на трех видах продуктов, загрязненных на разных уровнях, и на контрольных материалах.
Значения, полученные на основе этого межлабораторного испытания, не могут применяться к пределам концентраций и матрицам, отличным от приведенных здесь.
10.2.2. Повторяемость
Абсолютная разность между двумя отдельными (
-преобразованными) результатами испытаний (число C. perfringens на г или см3) или отношение большего к меньшему из двух результатов по нормальной шкале, полученных при использовании одного и того же метода, на идентичном испытуемом материале, одним и тем же оператором, использующим одно и то же оборудование, в течение короткого допустимого промежутка времени, будет превышать предел повторяемости (r) не более чем в 5% случаев.
-преобразованными) результатами испытаний (число C. perfringens на г или см3) или отношение большего к меньшему из двух результатов по нормальной шкале, полученных при использовании одного и того же метода, на идентичном испытуемом материале, одним и тем же оператором, использующим одно и то же оборудование, в течение короткого допустимого промежутка времени, будет превышать предел повторяемости (r) не более чем в 5% случаев.В качестве общего показателя повторяемости (r) при испытании проб пищевых продуктов допускается использовать следующие значения. Эти значения r являются общими для всех матриц, рассматриваемых в процессе межлабораторного испытания:
- r = 0,21 для подтверждения LS или 0,25 для подтверждения MN/LG (выраженные как разница между 
-преобразованными результатами испытания) или
-преобразованными результатами испытания) или- r = 1,67 для подтверждения LS или 1,8 для подтверждения MN/LG (выраженные как отношение большего к меньшему из двух результатов испытания).
Для контрольных материалов (см. таблицу A.4) могут применяться следующие значения:
- r = 0,13 для подтверждения LS или 0,12 для подтверждения MN/LG (выраженные как разница между 
-преобразованными результатами испытания) или
-преобразованными результатами испытания) или- r = 1,3 для подтверждения LS или 1,8 для подтверждения MN/LG (выраженные как отношение большего к меньшему из двух результатов испытания).
Пример.
Получен первый результат 10000 или 1,0 x 
предполагаемых бактерий C. perfringens на грамм продукта. В условиях повторяемости отношение большего результата к меньшему не должно быть свыше 1,9. Следовательно, второй результат будет между 5263 (= 10000/1,9) и 19000 (10000 x 1,9) предполагаемых бактерий C. perfringens на грамм.
предполагаемых бактерий C. perfringens на грамм продукта. В условиях повторяемости отношение большего результата к меньшему не должно быть свыше 1,9. Следовательно, второй результат будет между 5263 (= 10000/1,9) и 19000 (10000 x 1,9) предполагаемых бактерий C. perfringens на грамм.10.2.3. Воспроизводимость
Абсолютная разность между двумя отдельными (
-преобразованными) результатами испытаний (число C. perfringens на г или см3) или абсолютное соотношение между результатами двух испытаний по нормальной шкале, полученными при использовании одного и того же метода, на идентичном испытуемом материале в разных лабораториях, разными операторами, использующими различное оборудование, будут превышать предел воспроизводимости (R) не более чем в 5% случаев.
-преобразованными) результатами испытаний (число C. perfringens на г или см3) или абсолютное соотношение между результатами двух испытаний по нормальной шкале, полученными при использовании одного и того же метода, на идентичном испытуемом материале в разных лабораториях, разными операторами, использующими различное оборудование, будут превышать предел воспроизводимости (R) не более чем в 5% случаев.В качестве показателя предела воспроизводимости (R) при испытании различных видов пищевых продуктов и контрольных материалов могут использоваться значения из таблицы 9. Эти значения r являются средними значениями, полученными в результате межлабораторного испытания для различных уровней <1>.
--------------------------------
<1> В случае данного межлабораторного испытания значения воспроизводимости, которые должны быть выражены как общее значение, применимое ко всем пробам продуктов, очень сильно отличаются между пробами.
Таблица 9
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
? Вид пробы ? Подтверждение LS ? Подтверждение MN и LG ?
? ???????????????????????????????????????????????
? ? R(log) ? R ? R(log) ? R ?
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
? Сыр ? 0,26 ? 1,8 ? 0,31 ? 2,1 ?
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
? Мясо ? 0,55 ? 3,5 ? 0,52 ? 3,3 ?
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
? Сухой корм для животных? 0,65 ? 4,5 ? 0,72 ? 5,3 ?
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
? Контрольный материал ? 0,27 ? 1,9 ? 0,29 ? 1,9 ?
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
?log -трансформированными результатами испытаний. ?
? 10 ?
?результатами испытаний. ?
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Примеры.
1. Во-первых, лаборатория нашла результат испытания, равный 10000 или 1,0 x 
C. perfringens на грамм сыра. В условиях воспроизводимости отношение большего результата к меньшему не должно быть свыше 2,1. Следовательно, результат второй лаборатории должен быть между 4761 (= 10000/2,1) и 21000 (10000 x 2,1) предполагаемых бактерий C. perfringens на грамм.
C. perfringens на грамм сыра. В условиях воспроизводимости отношение большего результата к меньшему не должно быть свыше 2,1. Следовательно, результат второй лаборатории должен быть между 4761 (= 10000/2,1) и 21000 (10000 x 2,1) предполагаемых бактерий C. perfringens на грамм.2. Во-вторых, лаборатория хочет знать максимальный уровень, который она может найти и который соответствует установленному уровню (например предел в 100000 или 
). Для этого значение R (0,31 x 0,59) является разностью между 
-трансформированными результатами испытаний, а значение 1,52 
представляет соотношение между результатами испытаний. Следовательно, результаты до 
или 152000 (100000 x 1,52) не указывают несоответствие пределу. Коэффициент 0,59 отражает тот факт, что испытание с односторонним 95%-ным интервалом проводят для того, чтобы узнать, превышен ли предел. Коэффициент 0,59 вычислен по формуле
). Для этого значение R (0,31 x 0,59) является разностью между -трансформированными результатами испытаний, а значение 1,52 представляет соотношение между результатами испытаний. Следовательно, результаты до или 152000 (100000 x 1,52) не указывают несоответствие пределу. Коэффициент 0,59 отражает тот факт, что испытание с односторонним 95%-ным интервалом проводят для того, чтобы узнать, превышен ли предел. Коэффициент 0,59 вычислен по формуле
В протоколе испытания указывают:
- всю информацию, необходимую для полной идентификации образца;
- метод отбора пробы, если известен;
- использованный метод испытания со ссылкой на настоящий стандарт;
- все детали исследования, не оговариваемые в настоящем стандарте или рассматриваемые как необязательные, а также детали иного свойства, могущие оказать влияние на результаты исследований;
- полученные результаты.
(справочное)
Межлабораторное совместное испытание [1], в котором принимали участие 17 лабораторий из 15 стран, проводилось на пробах сыра, мяса, сухого корма для животных и контрольном материале. Каждая проба пищевых продуктов/кормов для животных была испытана на трех различных уровнях загрязнения бактериями Clostridium perfringens.
В соответствии с [2] в процессе межлабораторного испытания были получены следующие параметры. Испытание было организовано Голландским национальным институтом общественного здоровья (RIVM) в январе 2000 г. и дало данные по сходимости, приведенные в таблицах A.1 - A.4.
Таблица A.1
Результаты анализа данных, полученных на пробах сыра
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Проба ? Сыр ? Сыр ? Сыр
? (низкий ? (средний ? (высокий
? уровень) ? уровень) ? уровень)
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Число лабораторий с положительными 13 13 13
результатами
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Число проб 2 2 2
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Число лабораторий, оставшихся после 13 13 13
исключения выбросов
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Число выбросов 0 0 0
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Число принятых проб 26 26 26
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
(log cfu/g) 10 2,5/2,5 3,5/3,5 4,5/4,5
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
повторяемости S (log cfu/g) 0,11/0,11 0,06/0,07 0,08/0,10
R 10
повторяемости, % 4,37/4,59 1,63/1,97 1,85/2,31
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
- как разность по шкале log (log cfu/g) 0,30/0,32 0,16/0,19 0,23/0,29
10 10
2,0/2,1 1,5/1,6 1,7/1,9
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
воспроизводимости S (log cfu/g) 0,13/0,13 0,08/0,15 0,11/0,14
r 10
воспроизводимости, % 5,21/5,11 2,32/4,38 2,50/3,11
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
- как разность по шкале log (log cfu/g) 0,36/0,35 0,23/0,43 0,31/0,39
10 10
2,3/2,2 1,7/2,7 2,1/2,4
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Первый результат был получен с использованием лактозо-желатиновой среды,
а второй - с использованием подвижной нитратной и лактозо-желатиновой
среды.
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Таблица A.2
Результаты анализа данных, полученных на пробах
мясного фарша
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Проба ? Мясной ? Мясной ? Мясной
? фарш ? фарш ? фарш
? (низкий ? (средний ? (высокий
? уровень) ? уровень) ? уровень)
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Число лабораторий с положительными 13 13 13
результатами
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Число проб 2 2 2
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Число лабораторий, оставшихся после 13 13 13
исключения выбросов
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Число выбросов 0 0 0
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Число принятых проб 26 26 26
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
(log cfu/g) 10 2,7/2,7 3,6/3,6 4,5/4,5
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
повторяемости S (log cfu/g) 0,06/0,11 0,06/0,10 0,11/0,09
R 10
повторяемости, % 2,32/4,22 1,67/2,70 2,33/2,01
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
- как разность по шкале log (log cfu/g) 0,18/0,32 0,17/0,27 0,29/0,25
10 10
1,5/2,1 1,5/1,9 2,0/1,8
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
воспроизводимости S (log cfu/g) 0,14/0,18 0,18/0,18 0,18/0,22
r 10
воспроизводимости, % 5,01/6,54 5,07/5,05 3,90/4,76
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
- как разность по шкале log (log cfu/g) 0,38/0,49 0,51/0,50 0,49/0,60
10 10
2,4/3,1 3,2/3,2 3,1/4,0
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Первый результат был получен с использованием лактозо-сульфитной среды,
а второй - с использованием подвижной нитратной и лактозо-желатиновой
среды.
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Таблица A.3
Результаты анализа данных, полученных на пробах
сухого корма для животных
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Проба ? Сухой ? Сухой ? Сухой
? корм ? корм ? корм
? (низкий ? (средний ? (высокий
? уровень) ? уровень) ? уровень)
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Число лабораторий с положительными 13 13 13
результатами
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Число проб 2 2 2
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Число лабораторий, оставшихся после 13 13 13
исключения выбросов
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Число выбросов 0 0 0
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Число принятых проб 25 25 25
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
(log cfu/g) 10 2,6/2,6 3,8/3,9 4,8/4,9
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
повторяемости S (log cfu/g) 0,07/0,10 0,08/0,08 0,06/0,04
R 10
повторяемости, % 2,85/3,79 2,09/1,93 1,22/0,75
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
- как разность по шкале log (log cfu/g) 0,21/0,28 0,22/0,21 0,16/0,10
10 10
1,6/1,9 1,7/1,6 1,5/1,3
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
воспроизводимости S (log cfu/g) 0,32/0,32 0,25/0,24 0,17/0,17
R 10
воспроизводимости, % 12,21/12,03 6,53/6,18 3,50/3,49
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
- как разность по шкале log (log cfu/g) 0,88/0,88 0,69/0,67 0,47/0,47
10 10
7,6/7,6 4,9/4,7 3,03/3,0
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Первый результат был получен с использованием лактозо-сульфитной среды,
а второй - с использованием подвижной нитратной и лактозо-желатиновой
среды.
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Таблица A.4
материале
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Проба ? Контрольный материал
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Число лабораторий с положительными 13
результатами
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Число проб 2
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Число лабораторий, оставшихся после 13
исключения выбросов
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Число выбросов 0
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Число принятых проб 26
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Среднее значение 
(log cfu/capsule) a
(log cfu/capsule) a 10 3,7/3,7
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Среднеквадратическое отклонение a
повторяемости S (log cfu/capsule) 0,05/0,5
R 10
Среднее относительное отклонение a
повторяемости, % 1,24/1,21
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Предел повторяемости r: a
- как разность по шкале log 0,13/0,12
10
(log cfu/capsule)
10
- как соотношение по нормальной шкале a
1,3/1,3
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Среднеквадратическое отклонение a
воспроизводимости S (log cfu/capsule) 0,09/0,09
R 10
Среднее относительное отклонение a
воспроизводимости, % 2,51/2,39
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Предел повторяемости R: a
- как разность по шкале log 0,26/0,25
10
(log cfu/capsule)
10
- как соотношение по нормальной шкале a
1,8/1,6
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Первый результат был получен с использованием лактозо-сульфитной среды,
а второй - с использованием подвижной нитратной и лактозо-желатиновой
среды.
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
(справочное)
НАЦИОНАЛЬНЫМ СТАНДАРТАМ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ,
ИСПОЛЬЗОВАННЫМ В НАСТОЯЩЕМ СТАНДАРТЕ
В КАЧЕСТВЕ НОРМАТИВНЫХ ССЫЛОК
Таблица B.1
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
? Обозначение ссылочного? Обозначение и наименование ссылочного ?
?национального стандарта? международного стандарта и условное обозначение ?
? Российской Федерации ?степени его соответствия ссылочному национальному?
? ? стандарту ?
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
?ГОСТ Р ИСО 7218-2008 ?ИСО 7218-2007 ?
? ?"Микробиология пищевых продуктов и кормов для?
? ?животных. Общие требования и руководство?
? ?по микробиологическим исследованиям" (IDT) ?
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
?ГОСТ Р ИСО 11133-1-2008?ИСО 11133-1-2000 ?
? ?"Микробиология пищевых продуктов и кормов для?
? ?животных. Правила приготовления и производства?
? ?питательных сред. Часть 1. Общие правила?
? ?по обеспечению качества приготовления питательных?
? ?сред в лаборатории" (IDT) ?
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
?ГОСТ Р ИСО 11133-2-2008?ИСО 11133-2-2003 ?
? ?"Микробиология пищевых продуктов и кормов для?
? ?животных. Правила приготовления и производства?
? ?питательных сред. Часть 2. Практическое?
? ?руководство по определению эффективности?
? ?питательных сред" (IDT) ?
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
?ГОСТ Р 51426-99 ?ИСО 6887-1-1999 ?
?(ИСО 6887-83) ?"Микробиология пищевых продуктов и кормов для?
? ?животных. Приготовление проб для испытаний,?
? ?исходных суспензий и десятичных разведений для?
? ?микробиологических исследований. Часть 1. Общие?
? ?правила приготовления исходной суспензии?
? ?и десятичных разведений" (MOD); ?
? ?ИСО 6887-2-2003 ?
? ?"Микробиология пищевых продуктов и кормов для?
? ?животных. Приготовление проб для испытаний,?
? ?исходных суспензий и десятичных разведений для?
? ?микробиологических исследований. Часть 2.?
? ?Специальные правила для приготовления мяса?
? ?и мясных продуктов" (MOD); ?
? ?ИСО 6887-3-2003 ?
? ?"Микробиология пищевых продуктов и кормов для?
? ?исходных животных. Приготовление проб для?
? ?испытаний, суспензий и десятичных разведений для?
? ?микробиологических исследований. Часть 3.?
? ?Специальные правила для приготовления рыбы?
? ?и рыбных продуктов" (MOD); ?
? ?ИСО 6887-4-2003 ?
? ?"Микробиология пищевых продуктов и кормов для?
? ?животных. Приготовление проб для испытаний,?
? ?исходных суспензий и десятичных разведений для?
? ?микробиологических исследований. Часть 4.?
? ?Специальные правила для приготовления продуктов,?
? ?кроме молока и молочных продуктов, мяса?
? ?и мясных продуктов и рыбы и рыбопродуктов" (MOD) ?
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
?ГОСТ Р 51448-90 ?ИСО 3100-2-88 * ?
?(ИСО 3100-2-88) ?"Мясо и мясные продукты. Отбор и подготовка?
? ?опытных проб. Часть 2. Подготовка опытных проб?
? ?для микробиологического исследования" (MOD) ?
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
? Примечание: в настоящей таблице использованы следующие условные?
?обозначения степени соответствия стандартов: ?
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
--------------------------------
Validation of microbiological methods: Enumeration of Clostridium
perfringens according to ISO 7937 (второе издание, 1997). Отчет
286555002, Национальный институт общественного здоровья и окружающей
среды, Bilthoven, Нидерланды, 2001
Протокол проверки достоверности альтернативных методов
Вернуться в "Каталог нормативных документов"
Источник информации: https://internet-law.ru/documents/prod/gost-r_gosudarstvennyj-standart/51/gost_81014.html
На правах рекламы:
|
© Антон Серго, 1998-2026.
|
Разработка сайта |
|