4 Приказом Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии от 18 июня 2025 г. N 574-ст межгосударственный стандарт ГОСТ ISO 12228-1-2025 введен в действие в качестве национального стандарта Российской Федерации с 1 мая 2026 г.
5 Настоящий стандарт идентичен международному стандарту ISO 12228-1:2014 "Определение состава и общего содержания стеролов. Метод газовой хроматографии. Часть 1. Жиры и масла животные и растительные" ("Determination of individual and total sterols contents - Gas chromatographic method - Part 1: Animal and vegetable fats and oils", IDT).
Международный стандарт разработан Подкомитетом SC 11 "Жиры и масла животные и растительные" Технического комитета ISO/TC 34 "Пищевые продукты" Международной организации по стандартизации (ISO).
Наименование настоящего стандарта изменено относительно наименования указанного международного стандарта для приведения в соответствие с ГОСТ 1.5 (подраздел 3.6).
При применении настоящего стандарта рекомендуется использовать вместо ссылочных международных стандартов соответствующие ему межгосударственные стандарты, сведения о которых приведены в дополнительном приложении ДА
6 ВВЕДЕН ВПЕРВЫЕ
7 Некоторые элементы настоящего стандарта могут быть объектом патентных прав. Международная организация по стандартизации (ISO) не несет ответственности за идентификацию какого-либо или всех патентных прав
Информация о введении в действие (прекращении действия) настоящего стандарта и изменений к нему на территории указанных выше государств публикуется в указателях национальных стандартов, издаваемых в этих государствах, а также в сети Интернет на сайтах соответствующих национальных органов по стандартизации.
В случае пересмотра, изменения или отмены настоящего стандарта соответствующая информация будет опубликована на официальном интернет-сайте Межгосударственного совета по стандартизации, метрологии и сертификации в каталоге "Межгосударственные стандарты"
Настоящий стандарт устанавливает метод газохроматографического определения содержания и состава стеролов в животных и растительных жирах и маслах. Определение содержания и состава стеролов в оливковом масле и масле из выжимок оливок проводят в соответствии с ISO 12228-2.
В настоящем стандарте использованы нормативные ссылки на следующие стандарты [для датированных ссылок применяют только указанное издание ссылочного стандарта, для недатированных - последнее издание (включая все изменения)]:
ISO 661, Animal and vegetable fats and oils - Preparation of test sample (Жиры и масла животные и растительные. Приготовление пробы для испытания)
ISO 3696, Water for analytical laboratory use - Specification and test methods (Вода для лабораторного анализа. Технические требования и методы испытаний)
В настоящем стандарте применены следующие термины с соответствующими определениями:
3.1 состав стеролов: Состав индивидуальных стеролов в пробе, начиная с холестерола и заканчивая
(см. таблицу 1), определенный в условиях, указанных в настоящем стандарте.Примечание - Состав выражают в процентах от суммы площадей всех пиков, принятых за 100%.
3.2 общее содержание стеролов: Массовая доля суммы всех индивидуальных стеролов, определенная в соответствии с методом, указанным в настоящем стандарте, начиная с холестерола и заканчивая
(см. таблицу 1), деленная на массу испытуемой пробы.Примечание - Содержание выражают в миллиграммах на килограмм жира.
Испытуемую пробу омыляют раствором гидроксида калия в этаноле при кипячении с обратным холодильником. Неомыляемые вещества отделяют твердофазной экстракцией на колонке с оксидом алюминия. Колонку с оксидом алюминия используют для удержания анионов жирных кислот; стеролы проходят через колонку. Фракцию стеролов отделяют от неомыляемых веществ с помощью тонкослойной хроматографии. Качественный и количественный состав фракции стеролов определяют методом газовой хроматографии, используя холестанол или бетулин в качестве внутреннего стандарта.
ПРЕДУПРЕЖДЕНИЕ - Следует обращать внимание на правила, определяющие работу с опасными веществами. Необходимо соблюдать технические, организационные меры и меры личной безопасности.
Используют только реактивы признанной аналитической степени чистоты, если не указано иное, и воду, соответствующую классу 3 по ISO 3696.
5.1 Гидроксид калия (KOH), раствор в этаноле, с молярной концентрацией c (KOH) приблизительно 0,5 моль/дм3.
3 г гидроксида калия растворяют в 5 см3 воды и доводят объем раствора этанолом (5.3) до 100 см3. Раствор должен быть бесцветным или соломенного цвета.
5.2 Раствор внутреннего стандарта, холестанол
или бетулин, раствор в этаноле с объемной долей 1,0 мг/см3 (см. примечание к 5.10).Примечание - Для гидрогенизированных масел, которые могут содержать холестанол, рекомендуется использовать бетулин (пик 17 в таблице 1).
5.4 Оксид алюминия нейтральный, размер частиц от 0,063 до 0,200 мм, класс активности I (содержание воды = 0%).
ПРЕДУПРЕЖДЕНИЕ - Диэтиловый эфир легко воспламеняется и может образовывать взрывоопасные перекиси. Пределы взрываемости в воздухе составляют от 1,7% до 48% (объемная доля). При его использовании следует соблюдать особые меры предосторожности. Хранить вдали от источников тепла и солнечного света.
5.6 Пластины с силикагелем для тонкослойной хроматографии (ТСХ), коммерчески доступные, размеры 20 x 20 см, толщина слоя 0,25 мм.
5.7 Элюирующий растворитель, гексан/диэтиловый эфир. Объемная доля каждого растворителя составляет 50 см3/100 см3.
5.8 Стандартный раствор для тонкослойной хроматографии, объемная доля холестерола/холестанола 1,0 мг/см3 в ацетоне или бетулина - 5,0 мг/см3 в ацетоне.
Примечание 1 - Холестерол и холестанол имеют одинаковое значение Rf (0,35) в ТСХ, тогда как значение Rf для бетулина составляет 0,30 (см. рисунок A.1).
Примечание 2 - Для гидрогенизированных масел, которые могут содержать холестанол, рекомендуется использовать бетулин (пик 17 в таблице 1).
5.10 Силилирующий реактив, приготовленный добавлением 50 мкл 1-метилимидазола к 1 см3 N-метил-N-(триметилсилил)гепта-фторбутирамида (MSHFBA).
Примечание - В продаже имеются готовые реактивы. Другие реактивы для силилирования, например бис-триметилсилил-трифторацетамид с 1% триметилхлорсилана, также доступны и могут применяться, если в качестве внутреннего стандарта используют холестанол. Однако в отношении бетулина принимают специальные меры предосторожности, чтобы гарантировать силилирование обеих гидроксильных групп бетулина. В противном случае бетулин может иметь два пика на хроматограмме.
Используют стандартное лабораторное оборудование и, в частности, следующее.
6.2 Холодильник обратный со шлифом для установки в колбу (6.1).
6.3 Колонка стеклянная с пробкой из политетрафторэтилена (ПТФЭ), фильтром из пористого стекла, вместимостью 100 см3, длиной 25 см, внутренним диаметром 1,5 см.
6.4 Испаритель ротационный, снабженный вакуумным насосом и водяной баней, поддерживающей температуру 40 °C.
6.5 Резервуар стеклянный для элюирования с притертой стеклянной крышкой, пригодный для использования пластин размером 20 x 20 см.
6.7 Термостат, поддерживающий температуру (105 +/- 3) °C.
6.8 Эксикатор с эффективным осушителем для хранения пластин.
6.9 Виалы реакционные вместимостью от 0,3 до (1,0 - 1,5) см3 с винтовыми крышками и тефлоновым уплотнителем для приготовления производных стеролов.
6.10 Газовый хроматограф для капиллярных колонок с инжектором для ввода проб с делением потока, пламенно-ионизационным детектором и подходящим регистратором.
6.11 Колонка капиллярная, изготовленная из плавленого кварца или стекла, длиной от 25 до 60 м, внутренним диаметром от 0,20 до 0,25 мм, неподвижная фаза SE-54 (или эквивалентная неполярная фаза с температурным пределом не менее 280 °C - 300 °C); толщина пленки приблизительно 0,1 мкм.
Примечание - Лучшее разрешение пиков достигается при толщине пленки 0,1 мкм.
6.12 Микрошприц для газовой хроматографии для введения проб объемом 1 мкл.
6.13 Весы аналитические, позволяющие взвешивать с точностью до 0,001 г и с ценой деления 0,0001 г.
7.1 Отбор проб
Отбор проб не является предметом метода, приведенного в настоящем стандарте. Рекомендуемый метод отбора проб приведен в ISO 5555 [1].
Важно, чтобы в лабораторию была доставлена репрезентативная проба. которая не была повреждена или изменена во время транспортирования или хранения.
7.2 Приготовление пробы для испытания
Готовят пробу для испытания в соответствии с ISO 661.
Готовят суспензию 10 г оксида алюминия (5.4) в 20 см3 этанола (5.3) и выливают взвесь в стеклянную колонку (6.3). Дают оксиду алюминия осесть и растворителю стечь из колонки до тех пор, пока уровень растворителя не достигнет верхнего уровня слоя оксида алюминия.
Взвешивают с точностью до 1 мг приблизительно 250 мг испытуемой пробы в колбе вместимостью 25 см3 (6.1) и продолжают по 8.3.
Для жиров и масел с низким содержанием стеролов (например, менее 2000 мг на килограмм) или по другим причинам массу испытуемой пробы следует увеличить в три раза. Соответственно вносят корректировки для реактивов и используемого оборудования.
К навеске (8.2) добавляют точно 1,00 см3 раствора внутреннего стандарта (5.2). Добавляют 5 см3 спиртового раствора гидроксида калия (5.1) и несколько гранул ("кипелок") для предотвращения выброса содержимого. Вставляют обратный холодильник (6.2) в колбу и поддерживают содержимое в состоянии слабого кипения в течение 15 мин. Прекращают нагревание. Немедленно добавляют к горячему содержимому колбы 5 см3 этанола (5.3) и перемешивают или встряхивают до гомогенизации.
Пипеткой вносят 5 см3 этого раствора в подготовленную колонку с оксидом алюминия (8.1). Элюат собирают в круглодонную колбу вместимостью 50 см3 (6.1) и дают стекать до тех пор, пока уровень растворителя не достигнет верхнего уровня слоя оксида алюминия. Неомыляемые вещества элюируют сначала 5 см3 этанола (5.3), а затем 30 см3 диэтилового эфира (5.5) со скоростью потока примерно 2 см3/мин. Растворители из колбы удаляют с помощью ротационного испарителя (6.4).
ПРЕДУПРЕЖДЕНИЕ - Для этой процедуры необходима колонка с оксидом алюминия. Ее не допускается заменять колонками с диоксидом кремния или другими колонками, или экстракцией растворителем.
Неомыляемые вещества, полученные по 8.3, растворяют в небольшом количестве (приблизительно 0,5 см3) диэтилового эфира (5.5). Раствор наносят на пластинку линией на расстоянии 2 см от нижнего края пластины ТСХ (5.6) с помощью микрошприца (6.6). Оставляют зазор не менее 3 см от каждого бокового края пластины. Наносят 5 мкл стандартного раствора ТСХ (5.8) в виде пятна на расстоянии 1,5 см от края пластины. В резервуар для элюирования (6.5) наливают примерно 100 см3 элюирующего растворителя (5.7). Пластину помещают в резервуар и элюируют до тех пор, пока растворитель не достигнет ее верхнего края. Пластину вынимают из резервуара и дают растворителю испариться в вытяжном шкафу.
Примечание - Количественный перенос материала (8.3) на пластину ТСХ на этом этапе не требуется. Допускается использовать автоматическое устройство для нанесения полос. Насыщения камеры не требуется.
8.5 Выделение стеролов
Опрыскивают пластины метанолом (5.9) до тех пор, пока зоны стерола (и бетулина) не станут белыми на полупрозрачном (более темном) фоне. Холестанол является частью зоны
(см. рисунок A.1). Размечают зоны на высоте пятен стандартного раствора на 2 мм выше и на 4 мм ниже видимых зон (см. рисунок A.1). Полностью соскребают эту часть слоя с помощью шпателя и количественно собирают силикагель в небольшой стакан.Примечание 1 - Более широкое поле у нижнего края видимых зон (4 мм против 2 мм у верхнего края) - это мера предосторожности, чтобы избежать частичной потери бетулина на этом этапе. В подсолнечном масле можно обнаружить три полосы (
, и бетулин).Примечание 2 - Бетулин, если его используют в качестве внутреннего стандарта, появляется немного ниже зоны стеролов (см. рисунок A.1).
К собранному силикагелю добавляют 0,5 см3 этанола. Силикагель экстрагируют в стакане трижды порциями по 5 см3 диэтилового эфира (5.5) и фильтруют в колбу (6.1). Объединенные эфирные экстракты упаривают на ротационном испарителе (6.4) примерно до 1 см3 и переносят оставшийся раствор в реакционную виалу (6.9). Выдувают растворитель из виалы потоком азота.
8.6 Получение триметилсилиловых эфиров стеролов
Добавляют 100 мкл реактива для силилирования (5.10) в реакционную виалу (6.9), содержащую выделенные стеролы. Закрывают виалу и нагревают ее в течение 15 мин в термостате при температуре (105 +/- 3) °C. Дают виале остыть до комнатной температуры и вводят раствор непосредственно в газовый хроматограф (6.10).
8.7 Газовая хроматография
Оптимизируют температурную программу и скорость потока газа-носителя так, чтобы полученные хроматограммы были подобны хроматограммам на рисунках A.2 - A.7. Проверяют разделение с помощью фракций силилированных стеролов, полученных из известных масел, как показано на рисунках A.2 - A.7.
Примечание 1 - Следующие параметры были протестированы и признаны подходящими (см. хроматограммы в приложении A): колонка для газовой хроматографии: SE-54, длина 50 м, внутренний диаметр 0,25 мм, толщина пленки 0,10 мкм; газ-носитель H2, скорость потока газа-носителя 36 см/с, разделение 1:20, детектор/инжектор 320 °C, температурный режим от 245 °C до 265 °C со скоростью 5 °C/мин, изотерма при температуре 265 °C в течение 40 мин; объем вводимой пробы - 1 мкл. Допускается использовать капиллярные колонки эквивалентного качества.
Примечание 2 - Для проверки времени удерживания допускается использовать стандартный раствор, содержащий холестерол, кампестерол, стигмастерол и ситостерол. Используют холостой анализ для проверки на возможное загрязнение (например, холестеролом) от растворителей, стеклянных стенок, фильтров, отпечатков пальцев и т.д.
9.1 Идентификация стеролов
Для идентификации стеролов, присутствующих в испытуемой пробе, определяют относительное время удерживания (RRT) путем деления времени удерживания (RT) рассматриваемого стерола на RT холестерола и/или бетулина. В таблице 1 приведены RRT различных стеролов, вычисленные относительно холестерола (RRTC) и бетулина (RRTB), с использованием стационарной фазы SE-54.
Примечание - Значения RRT в таблице 1 (определенные в условиях, указанных в примечании 1 к 8.7) приведены только как вспомогательные для идентификации индивидуальных стеролов и для иллюстрации последовательности элюирования (см. также рисунок A.1). Фактическое значение RRT может несколько отличаться от RRT, приведенного в таблице 1, поскольку RRT зависит от условий проведения испытания (тип и длина колонки для газожидкостной хроматографии, температурный режим и качество стационарной фазы).
Таблица 1
стеролов и бетулина с помощью RRT (стационарная фаза SE-54)
9.2 Состав стеролов
Массовую долю wi индивидуального стерола i, г/100 г (%), вычисляют по формуле
, (1)где Ai - площадь пика стерола i;
9.3 Определение общего содержания стеролов
Для целей данного метода предполагается, что коэффициенты отклика всех стеролов и бетулина равны.
Примечание - В ходе нескольких испытаний силилированные стеролы и силилированный бетулин в равных количествах дали одинаковый отклик детектора при использовании пламенно-ионизационного детектора в этих условиях.
Общее содержание стеролов w, мг/кг жира, вычисляют по формуле
, (2)где mIS - масса внутреннего стандарта (холестанола), внесенного в пробу, мг;
AIS - площадь пика внутреннего стандарта;
m - масса навески, г.
Для вычисления общего содержания стеролов рассматривают все пики стеролов, начиная с холестерола и заканчивая
(пик 16), но без эритродиола и уваола (пики X и Y).10.1 Межлабораторные испытания
Подробная информация о межлабораторных испытаниях для оценки прецизионности метода приведена в приложении B. Значения, полученные в результате этих межлабораторных испытаний, могут быть неприменимы к диапазонам концентраций и матрицам, отличающимся от приведенных.
10.2 Предел повторяемости
Предел повторяемости r - это число, меньшее или равное значению абсолютного расхождения между двумя результатами испытаний, полученными в условиях повторяемости, с вероятностью 95%.
Условия повторяемости - это условия, при которых независимые результаты испытаний получены одним и тем же методом на идентичных испытуемых объектах в одной и той же лаборатории одним и тем же оператором с использованием одного и того же оборудования в течение коротких промежутков времени.
10.3 Предел воспроизводимости
Предел воспроизводимости R - это число, меньшее или равное значению абсолютного расхождения между двумя результатами испытаний, полученными в условиях воспроизводимости, с вероятностью 95%.
Условия воспроизводимости - это условия, при которых независимые результаты испытаний получены одним и тем же методом на идентичных испытуемых объектах испытаний в разных лабораториях разными операторами, использующими разное оборудование в течение коротких промежутков времени.
Протокол испытаний должен содержать следующее:
a) всю информацию, необходимую для полной идентификации образца;
b) использованный метод отбора проб, если он известен;
c) использованный метод испытаний со ссылкой на настоящий стандарт;
d) все рабочие детали, не указанные в настоящем стандарте или рассматриваемые как необязательные, вместе с подробностями любых случаев, которые могли повлиять на результат(ы) испытания;
e) полученные результаты испытаний или окончательный результат, если соблюдены условия повторяемости.
(справочное)
![]() Примечание - Зоны проявляются белыми на прозрачном фоне. Заштрихованная область соскоблена; следует обратить внимание на более широкое поле внизу (4 мм против 2 мм вверху). Значения Rf полос: бетулин - 0,30;
- 0,33; - 0,35; метилстеролы - 0,45; тритерпены - 0,53.1 - тритерпены; 2 - метилстеролы; 3 - холестанол
и
; 4 - ; 5 - бетулин;6 - стартовая линия
![]() Примечание - Идентификацию номеров пиков проводят в соответствии с таблицей 1. Условия - как указано в примечании 1 к 8.7.
масла (проба A)
![]() Примечание - Идентификацию номеров пиков проводят в соответствии с таблицей 1. Условия - как указано в примечании 1 к 8.7.
Рисунок A.3 - ГЖХ-хроматограмма стеролов из рафинированного
подсолнечного масла (проба B)
![]() Примечание - Идентификацию номеров пиков проводят в соответствии с таблицей 1. Условия - как указано в примечании 1 к 8.7.
Рисунок A.4 - ГЖХ-хроматограмма стеролов из рафинированного
сафлорового масла (проба C)
![]() Примечание - Идентификацию номеров пиков проводят в соответствии с таблицей 1. Условия - как указано в примечании 1 к 8.7.
Рисунок A.5 - ГЖХ-хроматограмма стеролов из рафинированного
рапсового масла (проба D)
![]() Примечание - Идентификацию номеров пиков проводят в соответствии с таблицей 1. Условия - как указано в примечании 1 к 8.7.
Рисунок A.6 - ГЖХ-хроматограмма стеролов из рафинированного
пальмового масла (проба E)
![]() Примечание - Идентификацию номеров пиков проводят в соответствии с таблицей 1. Условия - как указано в примечании 1 к 8.7.
(справочное)
Прецизионность метода была подтверждена двумя международными межлабораторными испытаниями, организованными Германией в 2011/2012 и 1996/1997 годах. Статистическую оценку проводили в соответствии с [2] и [3].
Обозначение пробы:
Таблица B.1
Статистические результаты по определению общего содержания
стеролов (мг/кг)
Таблица B.2
Статистические результаты по определению содержания
индивидуальных стеролов: холестерол (%)
Таблица B.3
Статистические результаты по определению содержания
индивидуальных стеролов: брассикастерол (%)
Таблица B.4
Статистические результаты по определению содержания
индивидуальных стеролов: сумма 24-метиленхолестерола
и кампестерола (%)
Таблица B.5
Статистические результаты по определению содержания
индивидуальных стеролов: кампестерол (%)
Таблица B.6
Статистические результаты по определению содержания
индивидуальных стеролов: кампестанол (%)
Таблица B.7
Статистические результаты по определению содержания
индивидуальных стеролов: стигмастерол (%)
Таблица B.8
Статистические результаты по определению содержания
индивидуальных стеролов:
(%)
Таблица B.9
Статистические результаты по определению содержания
индивидуальных стеролов:
(%)
Таблица B.10
Статистические результаты по определению содержания
индивидуальных стеролов: клеростерол (%)
Таблица B.11
Статистические результаты по определению содержания
индивидуальных стеролов:
(%)
Таблица B.12
Статистические результаты по определению содержания
индивидуальных стеролов:
(%)
Таблица B.13
Статистические результаты по определению содержания
индивидуальных стеролов:
(%)
Таблица B.14
Статистические результаты по определению содержания
индивидуальных стеролов:
(%)
Таблица B.15
Статистические результаты по определению содержания
индивидуальных стеролов:
(%)
(справочное)
МЕЖГОСУДАРСТВЕННЫМ СТАНДАРТАМ
Таблица ДА.1
--------------------------------
<*> В Российской Федерации действует ГОСТ Р 52501-2005 (ИСО 3696:1987) "Вода для лабораторного анализа. Технические условия".
Вернуться в "Каталог нормативных документов"
Источник информации: https://internet-law.ru/documents/prod/gost_gosudarstvennyj-standart/26/gost_17262.html
На правах рекламы:
|
|||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||