"ГОСТ EN 14122-2020. Межгосударственный стандарт. Продукция пищевая. Определение содержания витамина B1 методом высокоэффективной жидкостной хроматографии"
(введен в действие Приказом Росстандарта от 24.04.2024 N 534-ст)

Цели, основные принципы и общие правила проведения работ по межгосударственной стандартизации установлены ГОСТ 1.0 "Межгосударственная система стандартизации. Основные положения" и ГОСТ 1.2 "Межгосударственная система стандартизации. Стандарты межгосударственные, правила и рекомендации по межгосударственной стандартизации. Правила разработки, принятия, обновления и отмены"

1 ПОДГОТОВЛЕН Научно-производственным республиканским унитарным предприятием "Белорусский государственный институт стандартизации и сертификации" (БелГИСС) на основе собственного перевода на русский язык англоязычной версии стандарта, указанного в пункте 5

2 ВНЕСЕН Государственным комитетом по стандартизации Республики Беларусь

3 ПРИНЯТ Межгосударственным советом по стандартизации, метрологии и сертификации (протокол от 30 июня 2020 г. N 131-П)

За принятие проголосовали:

4 Приказом Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии от 24 апреля 2024 г. N 534-ст межгосударственный стандарт ГОСТ EN 14122-2020 введен в действие в качестве национального стандарта Российской Федерации с 1 ноября 2024 г. с правом досрочного применения

5 Настоящий стандарт идентичен европейскому стандарту EN 14122:2014 "Продукты пищевые. Определение витамина B₁ методом высокоэффективной жидкостной хроматографии" ("Foodstuffs - Determination of vitamin B₁ by high performance liquid chromatography", IDT).

Европейский стандарт разработан техническим комитетом по стандартизации CEN/TC 275 "Анализ пищевых продуктов. Горизонтальные методы" Европейского комитета по стандартизации (CEN).

При применении настоящего стандарта рекомендуется использовать вместо ссылочного европейского стандарта соответствующий ему межгосударственный стандарт, сведения о котором приведены в дополнительном приложении ДА

6 ВЗАМЕН ГОСТ EN 14122-2013

Предупреждение - Применение настоящего стандарта может быть связано с проведением опасных операций, использованием вредных веществ, опасного оборудования. В задачи настоящего стандарта не входит решение всех вопросов безопасности, связанных с его применением. Ответственность за соблюдение техники безопасности и установление необходимых ограничений при применении настоящего стандарта несет его пользователь.

Настоящий стандарт устанавливает метод определения содержания витамина B₁ в пищевой продукции с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) с применением ферментативной обработки и предколоночной или послеколоночной дериватизации. Данный метод был валидирован в двух межлабораторных исследованиях. В первом исследовании проводился анализ проб цельнозерновой муки, сухого молока/сухого молока, полученного методом распылительной сушки, смеси лиофилизированных овощей и лиофилизированной свиной печени в пределах от 0,295 до 0,807 мг/100 г. Во втором исследовании анализировали пробы раствора для энтерального питания, пищевой продукции для детского питания с овощами, сухого молока, цельнозерновой муки с фруктами, дрожжей, продуктов переработки зерна, шоколадного порошка и биологически активной добавки к пище в диапазоне от 0,11 до 486 мг/100 г. Содержание витамина B₁ представляет собой массовую долю общего тиамина, включая его фосфорилированные производные.

Для получения более подробной информации о валидации см. раздел 8 и приложение B.

В настоящем стандарте использована нормативная ссылка на следующий стандарт [для датированных ссылок применяют только указанное издание ссылочного стандарта, для недатированных - последнее издание (включая все изменения)]:

EN ISO 3696, Water for analytical laboratory use - Specification and test methods (ISO 3696) (Вода для лабораторного анализа. Технические требования и методы испытаний)

Тиамин извлекают из пищевой продукции путем кислотного гидролиза с последующим дефосфорилированием, используя ферментативную обработку, и определяют его количество методом ВЭЖХ с предколоночной или послеколоночной дериватизацией до тиохрома. Для количественной оценки используют метод внешнего стандарта. Для получения дополнительной информации см. [1] - [7].

Для проведения анализа, если не указано иное, используют только реактивы признанной аналитической чистоты и воду не ниже первой степени чистоты по EN ISO 3696 или бидистиллированную воду.

4.1 Метанол для ВЭЖХ, массовая доля w(CH₃OH) >= 99,8%.

4.2 Раствор уксусной кислоты, молярная концентрация c(CH₃COOH) = 0,02 моль/дм³.

4.3 Изобутанол, w(C₄H₁₀O) >= 98%.

4.4 Дигидрофосфат натрия, w(NaH₂PO₄) >= 99,8%.

4.5 Соляная кислота, w(HCl) = 36%.

4.6 Раствор соляной кислоты, c(HCl) = 0,1 моль/дм³.

4.7 Раствор серной кислоты, c(H₂SO₄) = 0,05 моль/дм³.

4.8 Гидроксид натрия, w(NaOH) >= 99%.

4.9 Раствор гидроксида натрия, массовая концентрация .

4.10 Раствор гидроксида натрия, .

4.11 Гексацианоферрат (III) калия, w{K₃[Fe(CN)₆]} >= 99%.

4.12 Раствор гексацианоферрата (III) калия, .

4.13 Щелочной раствор гексацианоферрата (III) калия (для предколоночной дериватизации), .

2,0 см³ раствора гексацианоферрата (III) калия (см. 4.12) помещают в мерную колбу вместимостью 50 см³ и объем содержимого колбы доводят до метки раствором гидроксида натрия (см. 4.9). Раствор готовят в день проведения испытания.

4.14 Щелочной раствор гексацианоферрата (III) калия (для послеколоночной дериватизации), .

2,5 см³ раствора гексацианоферрата (III) калия (см. 4.12) помещают в мерную колбу вместимостью 50 см³ и объем содержимого колбы доводят до метки раствором гидроксида натрия (см. 4.10).

4.15 Фермент или смесь ферментов, способные высвобождать витамин B₁ из пищевой продукции в виде свободного тиамина.

Примечание 1 - Для получения прецизионных данных, указанных в таблице B.1, была использована така-диастаза, произведенная компанией Pfaltz and Bauer <1>. Для получения прецизионных данных, указанных в таблицах B.2 и B.3, была использована смесь из ячменя и така-диастазы, произведенной Serva <1>.

--------------------------------

<1> Информация о поставщиках така-диастазы Pfaltz & Bauer, Уотербери, СТ 06708, США (N T00040) и Serva приведена для удобства пользователей настоящего стандарта и не является рекламой CEN указанной продукции. Допускается использовать аналогичную продукцию при условии обеспечения идентичных результатов.

Примечание 2 - Проблему неполного дефосфорилирования можно решить с помощью раздельного количественного определения ТМФ (тиамина монофосфата), см. [7].

4.16 Раствор ацетата натрия, c(CH₃COONa·3H₂O) = 2,5 моль/дм³.

4.17 Раствор ацетата натрия, c(CH₃COONa·3H₂O) = 0,5 моль/дм³.

4.18 Подвижные фазы ВЭЖХ.

Примеры соответствующих смесей с объемными долями метанола (см. 4.1) от 10% до 50% в воде или использования фосфатного или ацетатного буфера представлены в приложениях A и C. Также представлен вариант подвижной фазы с использованием ион-парного реагента.

4.19 Раствор фосфатный буферный (pH 3,5), c(KH₂PO₄) = 9,0 ммоль/дм³.

4.20 Тетраэтиламмоний хлорид, w(C₈H₂₀NCl) >= 98%.

4.21 Натрия гептансульфонат, w(C₇H₁₅NaO₃S) >= 98%.

4.22 Раствор ацетатный буферный (pH 4,0), c(CH₃COOH) = 50 ммоль/дм³.

4.23 Стандартные вещества.

4.23.1 Тиамина хлорид гидрохлорид, w(C₁₂H₁₇ClN₄OS·HCl) >= 99%.

Используется для метода внешнего стандарта, см. 6.3.

4.23.2 Тиамина монофосфат хлорид, w(C₁₂H₁₇ClN₄O₄PS) >= 98%.

Используется для проверки ферментов, см. 6.2.2.

4.23.3 Тиамина пирофосфат хлорид (кокарбоксилаза), w(C₁₂H₁₉ClN₄O₇P₂S) >= 98%.

Используется для проверки ферментов, см. 6.2.2.

4.24 Основные растворы

4.24.1 Основной раствор тиамина хлорида гидрохлорида, .

Растворяют точно взвешенное количество стандартного вещества тиамина хлорида гидрохлорида (см. 4.23.1) в определенном объеме соответствующего растворителя, например 10 мг стандартного вещества витамина B₁ в 100 см³ раствора соляной кислоты (см. 4.6). Срок хранения раствора - четыре недели при температуре 4 °C.

4.24.2 Основной раствор тиамина монофосфата, .

Растворяют точно взвешенное количество тиамина монофосфата хлорида (см. 4.23.2) в определенном объеме соответствующего растворителя, например 10 мг тиамина монофосфата хлорида в 100 см³ раствора соляной кислоты (см. 4.6). Срок хранения раствора - четыре недели при температуре минус 20 °C.

4.24.3 Основной раствор тиамина пирофосфата, .

Растворяют точно взвешенное количество тиамина пирофосфата хлорида (см. 4.23.3) в определенном объеме соответствующего растворителя, например 10 мг тиамина пирофосфата хлорида в 100 см³ раствора соляной кислоты (см. 4.6).

4.24.4 Определение точной концентрации тиамина хлорида гидрохлорида

10 см³ раствора тиамина хлорида гидрохлорида (см. 4.24.1) переносят в мерную колбу вместимостью 100 см³ и объем содержимого колбы доводят до метки раствором соляной кислоты (см. 4.6). Оптическую плотность данного раствора измеряют на УФ-спектрометре (см. 5.1) при максимальной длине волны 247 нм (A₂₄₇) в кювете с длиной оптического пути 1 см, используя раствор соляной кислоты (см. 4.6) в качестве раствора сравнения. Массовую концентрацию раствора тиамина хлорида гидрохлорида , мкг/см³, рассчитывают по формуле

где - молярный коэффициент поглощения тиамина хлорида гидрохлорида при максимальной длине волны 247 нм . Данное значение рассчитывается исходя из коэффициента экстинкции в 0,1 моль/см³ HCl [8], [7] и молярной массы M = 337,21. Значение округляют до четырех значащих цифр;

M - молярная масса, г/моль. Значение равно 337,21;

A₂₄₇ - значение оптической плотности раствора тиамина хлорида гидрохлорида.

4.25 Стандартные растворы

4.25.1 Стандартный раствор тиамина хлорида гидрохлорида, .

В мерную колбу вместимостью 100 см³ переносят пипеткой от 1 до 10 см³ раствора тиамина хлорида гидрохлорида (см. 4.24.1) и объем содержимого колбы доводят до метки подходящим растворителем, например раствором соляной кислоты (см. 4.6). Раствор можно хранить в течение месяца при температуре 4 °C в темном месте.

4.25.2 Стандартный раствор тиамина монофосфата, .

В мерную колбу вместимостью 100 см³ переносят пипеткой от 1 до 10 см³ раствора тиамина монофосфата (см. 4.24.2) и объем содержимого колбы доводят до метки подходящим растворителем, например раствором соляной кислоты (см. 4.6). Раствор можно хранить в течение месяца при температуре 4 °C в темном месте.

4.25.3 Стандартный раствор тиамина пирофосфата, .

В мерную колбу вместимостью 100 см³ переносят пипеткой от 1 до 10 см³ раствора тиамина пирофосфата (см. 4.24.3) и объем содержимого колбы доводят до метки, например, раствором соляной кислоты (см. 4.6). Раствор можно хранить в течение месяца при температуре 4 °C в темном месте.

Используют стандартное лабораторное оборудование, стеклянную посуду, в том числе оборудование, перечисленное ниже:

5.1 УФ-спектрометр, пригодный для измерения оптической плотности при определенной длине волны (247 нм) с соответствующими кюветами с длиной оптического пути 1 см.

5.2 Автоклав или нагревательный прибор, автоклав для экстракции проб, например электрического типа, работающий под давлением, со считывающим устройством давления или температуры, плитка электрическая или водяная баня.

5.3 Система ВЭЖХ

Система ВЭЖХ состоит из насоса, устройства для ввода проб, флуоресцентного детектора с длиной волны возбуждения и эмиссии, установленных на уровнях 366 и 435 нм соответственно (см. приложение C), а также устройства для обработки данных, например интегратора.

5.4 Колонка для ВЭЖХ

5.4.1 Общие положения

Допускается использовать колонку другого внутреннего диаметра и длины, заполненную сорбентом с размером частиц, отличным от указанных в настоящем стандарте. Условия хроматографического разделения подбирают применительно к используемой колонке для обеспечения сопоставимости результатов анализов. Критерием пригодности аналитической колонки является отделение пика тиамина от пиков других компонентов матрицы пробы <2> на уровне базовой линии.

--------------------------------

<2> Подходящие силикагелевые наполнители для колонок, имеющиеся в продаже: Si 60, Si, Si и 100 DIOL. Подходящие наполнители колонок для обращенно-фазовой хроматографии: ODS, radial C18, LC-18-DB и ODS. Информация приведена для удобства пользователей настоящего стандарта и не является рекламой CEN указанной продукции.

5.4.2 Колонка для ВЭЖХ при анализе с использованием предколоночного окисления

Аналитические колонки, например 60 RP Select B <2>, размер частиц 5 мкм, диаметр от 4,0 до 4,6 мм, длина от 100 до 250 мм.

5.4.3 Колонка для ВЭЖХ при анализе с использованием послеколоночного окисления

Аналитические колонки, например LC-18-DB <2>, размер частицы 5 мкм, диаметр от 4,0 до 4,6 мм, длина от 100 до 250 мм.

5.5 Фильтровальное устройство

Фильтрация подвижной фазы, а также раствора анализируемой пробы через мембранный фильтр с размером пор 0,45 мкм до использования или ввода проб продлевает срок службы колонок.

5.6 Послеколоночный реакторный насос и трубка для дериватизации, подходящая система подачи реактива, T-образная соединительная трубка и трубка для дериватизации (например, 10 м x 0,33 мм).

Гомогенизируют анализируемую пробу. Твердую продукцию измельчают в соответствующей мельнице и перемешивают. Перед измельчением пробу рекомендуется охладить, чтобы не подвергать ее воздействию высоких температур в течение длительного времени.

В конической колбе взвешивают от 2 до 10 г анализируемой пробы с точностью до 1 мг. Добавляют от 60 до 200 см³ раствора соляной (см. 4.6) или серной кислоты (см. 4.7). Значение pH раствора не должно быть выше 2,0. Накрывают колбу предметным стеклом и автоклавируют пробу для испытания при температуре 121 °C в течение 30 мин или нагревают ее при температуре 100 °C в течение 60 мин.

Исследования, проводимые Европейским бюро стандартов (BCR), показали, что можно применять обширный диапазон условий для кислотного гидролиза (температура от 95 °C до 130 °C, продолжительность от 15 до 60 мин), при этом чем выше температура, тем меньше продолжительность гидролиза.

После охлаждения до комнатной температуры к экстракту добавляют раствор ацетата натрия (см. 4.16) или (см. 4.17) до достижения значения pH, оптимального для действия, предполагаемого к использованию фермента, и добавляют подходящее количество фермента или смеси ферментов (см. 4.15). Инкубируют полученную смесь в течение промежутка времени и при температуре, оптимальных для используемого фермента или смеси ферментов. После охлаждения до комнатной температуры переносят раствор в мерную колбу, используя дистиллированную воду или другой соответствующий растворитель, и доводят раствор анализируемой пробы до заданного объема V_ts.

Для каждого используемого фермента необходимо установить оптимальное значение pH, оптимальные продолжительность и температуру инкубирования.

Для установления оптимальных условий дефосфорилирования проводят процедуру ферментативной обработки проб с добавленным известным количеством тиамина монофосфата хлорида (см. 4.23.2) или тиамина пирофосфата хлорида (см. 4.23.3), а также проб, аналогичных исследуемой пробе по составу матрицы и являющихся аттестованными образцами сравнения.

Количество тиамина, внесенное с ферментом или смесью ферментов (4.15), должно учитываться при расчете результата.

Примечание - Для определения прецизионности результатов испытаний, указанных в таблицах B.1, B.2 и B.3, для дефосфорилирования использовали така-диастазу и смесь из ячменя и така-диастазы при следующих условиях. Значение pH экстракта довели раствором ацетата натрия (см. 4.16 или 4.17) до 4,0 и 4,5 соответственно и добавили 100 мг така-диастазы и 10 мг на грамм пробы. Смесь инкубировали при температуре от 37 °C до 45 °C в течение от 4 до 24 ч, см. [5], [10], [16].

При необходимости раствор анализируемой пробы (см. 6.2.2) фильтруют через фильтровальную бумагу или мембранный фильтр с размером пор 0,45 мкм или центрифугируют. Полученный раствор является раствором анализируемой пробы для окисления (см. 6.3.2 или 6.3.3).

Допускается проводить предколоночное (см. 6.3.2) или послеколоночное (см. 6.3.3) окисление.

Пипеткой переносят по 1 см³ ферментативно обработанной пробы (см. 6.2.3), стандартного раствора (см. 4.25.1) или холостого раствора, т.е. раствора соляной кислоты (см. 4.6) или раствора серной кислоты (см. 4.7), в зависимости от того, какой из них использовался в соответствии с 6.2.1, в подходящие стеклянные флаконы или колбы, добавляют 1 см³ щелочного раствора гексацианоферрата (III) калия (см. 4.13). Взбалтывают раствор анализируемой пробы в течение фиксированного периода времени (10 с), дают отстояться в течение установленного периода времени (1 мин).

С целью удаления из раствора анализируемой пробы веществ, мешающих анализу, и предотвращения порчи колонки для ВЭЖХ рекомендуется нейтрализовать раствор анализируемой пробы (с помощью H₃PO₄) или выполнить очистку методом твердофазной экстракции (см. [5]).

После фильтрации через мембранный фильтр с размером пор 0,45 мкм получают раствор анализируемой пробы, пригодный для ввода в систему обращенно-фазовой ВЭЖХ (см. 6.3.2.2).

В качестве альтернативы допускается после окисления раствора проводить экстракцию порцией изобутанола (см. 4.3) объемом 1,5 см³, а полученный экстракт вводить в колонку.

Примечание - Окислительное преобразование тиамина в тиохром может быть ингибировано в некоторой пищевой продукции. Данное явление часто характерно для пищевой продукции, содержащей какао, но также может наблюдаться и в другой пищевой продукции. Если есть подозрение на наличие данной проблемы, рекомендуется проверить степень извлечения, добавив в экстракт пробы соответствующий объем стандартного раствора тиамина перед проведением процедуры окисления.

В систему ВЭЖХ вводят одинаковые соответствующие объемы стандартных растворов, а также растворов анализируемой и холостой проб (см. 6.3.2.1). Идентифицируют тиохром путем сравнения времени удерживания индивидуальных пиков на хроматограммах раствора анализируемой пробы и стандартного раствора. Идентификация пиков также может быть выполнена путем добавления определенного количества стандартного вещества в раствор анализируемой пробы.

Ниже приведены условия хроматографического анализа, которые обеспечивают удовлетворительное качество хроматографического разделения и количественного определения (см. приложение C для альтернативных условий ВЭЖХ и рисунок A.1 для примеров хроматограмм).

Окисление тиамина с образованием тиохрома осуществляют, применяя послеколоночную реакцию со щелочным раствором гексацианоферрата (III) калия (см. 4.14) в качестве дериватизирующего агента, который непрерывно добавляют (0,3 см³/мин) через T-образную соединительную трубку в элюент для ВЭЖХ.

Примечание - Одним из факторов, влияющих на этап послеколоночного окисления, является концентрация гидроксида натрия в реакционной смеси. Чрезмерно высокую концентрацию гидроксида натрия в дериватизирующем реагенте можно компенсировать уменьшением или увеличением скорости его подачи.

В систему ВЭЖХ вводят одинаковые соответствующие объемы стандартных растворов тиамина хлорида гидрохлорида (см. 4.25.1), а также растворов анализируемой пробы (см. 6.2.3). Идентифицируют тиохром путем сравнения времени удерживания индивидуальных пиков на хроматограммах раствора анализируемой пробы и стандартного раствора вещества (см. 4.25.1). Идентификация пиков также может быть выполнена путем добавления тиамина хлорида гидрохлорида в раствор анализируемой пробы.

Ниже приведены условия хроматографического анализа, которые обеспечивают удовлетворительное качество хроматографического разделения и количественного определения (см. приложение C для альтернативных условий ВЭЖХ и рисунок A.2 для примеров хроматограмм).

Примечание - При анализе проб некоторых видов пищевой продукции, например сырой свинины, на хроматограмме может присутствовать дополнительный пик 2(1-гидроксиэтил)тиамина, см. приложение D.

Для выполнения количественного определения методом внешнего стандарта интегрируют площади пиков (желательно) или определяют высоты пиков (допустимо) пробы, сравнивают результаты с соответствующими значениями тиохрома, используя градуировочный график. Проверяют линейность градуировочной зависимости.

Результат определения вычисляют, используя градуировочный график или соответствующие программы системы обработки данных, или приведенный ниже упрощенный способ вычисления. Рассчитывают массовую долю витамина B₁ в пересчете на тиамина хлорид гидрохлорид w, мг/100 г пробы, по формуле

где A_ts - площадь или высота пика тиохрома на хроматограмме раствора анализируемой пробы, выраженные в единицах площади или высоты;

A_st - площадь или высота пика тиохрома на хроматограмме стандартного раствора, выраженные в единицах площади или высоты;

V_ts - объем раствора анализируемой пробы (см. 6.2.2), см³;

- массовая концентрация стандартного раствора тиамина хлорида гидрохлорида (см. 4.25.1), мкг/см³;

m_s - масса пробы (см. 6.2.1), г;

100 - коэффициент пересчета массовой доли на 100 г;

1 000 - коэффициент пересчета мкг/100 г в мг/100 г.

Результат определения содержания витамина B₁, мг/100 г, представляют в пересчете на тиамина хлорид гидрохлорид (M = 337,28). При необходимости представления результата определения в виде содержания витамина B₁ в пересчете на тиамин (C₁₂H₁₇N₄OS, M = 265,37) полученный результат умножают на коэффициент 0,787, при пересчете на тиамина хлорид (C₁₂H₁₇ClN₄OS, M = 300,82) - на коэффициент 0,892.

Данные прецизионности для метода частично основываются на данных различных методов ВЭЖХ, применяемых для определения тиамина в ходе международного сравнительного исследования, организованного Европейской комиссией в рамках Программы стандартных измерений и испытаний на пробах цельнозерновой муки (CRM 121), сухого молока/сухого молока, полученного методом распылительной сушки (CRM 421), смеси лиофилизированных овощей (CRM 485) и лиофилизированной свиной печени (CRM 487). Статистические данные, полученные в ходе исследования, приведены в таблице B.1 (приложение B). Кроме того, данные прецизионности включают результаты совместного французского исследования проб раствора для энтерального питания, пищевой продукции для детского питания с овощами, сухого молока, цельнозерновой муки с фруктами, дрожжей, продуктов переработки зерна, шоколадного порошка и биологически активной добавки к пище. Результаты, полученные в ходе исследования, приведены в таблицах B.2 и B.3 (приложение B).

Абсолютная разность между двумя независимыми результатами испытаний, полученными при исследовании идентичного анализируемого материала одним и тем же оператором, использовавшим одно и то же оборудование в пределах самого короткого промежутка времени, не должна превышать предел повторяемости r более чем в 5% случаев.

Значения для тиамина хлорида гидрохлорида:

Абсолютная разность между двумя независимыми результатами испытаний, полученными при исследовании идентичного анализируемого материала в двух лабораториях, не должна превышать предел воспроизводимости R более чем в 5% случаев.

Значения для тиамина хлорида гидрохлорида:

Протокол испытания должен соответствовать требованиям EN ISO/IEC 17025 [17] и содержать следующие данные:

a) всю информацию, необходимую для идентификации пробы;

b) ссылку на настоящий стандарт или используемый метод;

c) дату и время отбора проб (если известно);

d) дату получения пробы;

e) дату проведения испытания;

f) результаты и единицы измерения, в которых выражены результаты;

g) любые особенности, которые наблюдались в ходе проведения испытания;

h) любые операции, не установленные в настоящем стандарте или рассматриваемые в качестве дополнительных, которые могли повлиять на результаты.

Примечание - Дополнительная хроматограмма для мяса/печени приведена в приложении D.

Данные, приведенные в таблице B.1, получены в результате межлабораторных испытаний [10], проведенных в соответствии с Руководством по аттестации образцов сравнения (EU SMT Certification Study Guidelines). Исследование было организовано Институтом исследования пищевой продукции, г. Норвич, Великобритания (Institute of Food Research, Norwich, UK), по заданию Бюро эталонов Европейского сообщества (EU Community Bureau of Reference). Данные, приведенные в таблицах B.2 и B.3, были получены в ходе межлабораторного испытания во Франции [5].

Примечание - В результате рассматриваемого международного сравнительного исследования данные были получены с использованием установленных методов и являются идентичными собственным систематическим процедурам анализа участвующих лабораторий с системами ВЭЖХ, описанными в приложении C.

Удовлетворительное качество хроматографического разделения и количественного определения обеспечивается при соблюдении следующих условий хроматографического анализа [10].

Как правило, содержание витамина B₁ рассматривалось как тиамин и его фосфатные производные. Однако использование метода послеколоночной дериватизации может показать два пика для тиамина и различимый пик дополнительного метаболита 2-(1-гидроксиэтил)тиамина (ГЭТ), в качестве подтверждения см. [11], [12] и рисунок D.1. Если используется метод предколоночной дериватизации, совместно элюируют два соединения - тиамин и ГЭТ.

Примечание - Информация о ВЭЖХ приведена в [7].

Относительное содержание ГЭТ по сравнению с тиамином зависит от типа пробы. В мясе и печени содержание ГЭТ составляет от 7% до 23% от содержания тиамина. В дрожжах содержание составляло 3,8%, в то время как в белой капусте, брокколи, овсяной муке, смеси для детского питания, сухом молоке и пшенице содержание было незначительным - ниже 2%, см. [7].

При проведении количественного определения витамина B₁ в пищевой продукции с помощью послеколоночной дериватизации рекомендуется включать отдельное количественное определение тиамина и ГЭТ при анализе проб мяса, а также проводить проверку на появление ГЭТ на хроматограмме при испытании других типов проб.

--------------------------------

<1> В Российской Федерации действует ГОСТ Р 52501-2005 (ИСО 3696:1987) "Вода для лабораторного анализа. Технические условия".