Собранные до распускания в зимне-весенний период (январе-апреле) и высушенные листовые почки дикорастущих деревьев березы повислой (березы бородавчатой) - Betula pendula Roth. (Betula verrucosa Ehrh.) и березы пушистой - Betula pubescens Ehrh., сем. березовых - Betulaceae.
Внешние признаки. Цельное сырье. Почки удлиненно-конические, заостренные или притупленные, часто клейкие. Почечные чешуи расположены черепицеобразно, плотно прижаты по краям, слегка реснитчатые (нижние короче верхних и иногда с несколько отстающими кончиками); длина почек 3-7 мм, в поперечнике - 1,5-3 мм. Цвет почек коричневый, у основания иногда зеленоватый. Запах бальзамический, приятный. Вкус водного извлечения слегка вяжущий, смолистый.
Микроскопические признаки. Цельное сырье. При рассмотрении поперечных срезов почки должно быть видно полуобъемлющее по типу почкосложение. В центре видны крупные зачатки 2-3 листьев. Характер листосложения - складчатый. Между фрагментами крупных складчатых чешуи локализованы поперечные сечения мелких, не складчатых, ровной формы, сложенных пополам фрагментов зачатков листьев. На срезах в базальной части, рядом с основанием почки, складчатые фрагменты зачатков листьев отсутствуют. В центре поперечного среза базальной части почки заметны фрагменты 2 черешков. Поперечные сечения черешков округлые с углублением в верхней части. Проводящие элементы черешка представлены одним закрытым коллатеральным пучком С-образной формы.
Поверхность зачатков листьев, их черешков и кроющих чешуи опушена щитковидными железками. Головки железок многоклеточные округлые 8-, 9-клеточные. Клетки головки тонкостенные, прозрачные, с каплями эфирного масла. Ножка железки крупная, многоклеточная, состоит из овальных или слегка вытянутых клеток, заполненных коричневым содержимым.
Помимо щитковидных железок на поверхности зачатков листьев имеются простые одноклеточные бичевидные волоски с сильно утолщенной, иногда лигнифицированной клеточной стенкой. Протопласт бичевидных волосков аморфный, коричневого или темно-желтого цвета.
Кроющие чешуи почек опушены слабее. На поперечных срезах кроющих чешуи должны быть видны простые бичевидные волоски, локализованные по краю. Железки конусовидной формы на кроющих чешуях локализованы у их основания. Клетки, составляющие головку конусовидных железок, образуют головку от самого основания трихомы. Ножка железки на продольном срезе - треугольной формы и состоит из мелких, слегка вытянутых клеток, заполненных коричневым содержимым.
Мезофилл зачатков листьев на поперечном срезе однороден и представлен тонкостенными клетками округлой, иногда продолговатой формы, с зернистым протопластом желто-зеленого цвета. Эпидермис зачатков листьев тонкостенный, слабо кутинизированный. Непосредственно под эпидермой в мезофилле локализованы многочисленные друзы и кристаллы оксалата кальция. В мезофилле зачатков листьев, ближе к базальной части почки, имеются многочисленные проводящие пучки коллатерального типа. Проводящие элементы ксилемы на поперечном срезе имеют многоугольную форму, их стенки лигнифицированы.
Эпидермис чешуи с внешней стороны сильно кутинизирован. Полости клеток пигментированы. Под эпидермисом локализован блок пластинчатой колленхимы. На внешней и внутренней поверхностях почечных чешуи, в эпидермисе, изредка встречаются сформированные чечевички. Этот признак характерен особенно для краевых чешуи. Мезофилл кроющих чешуи состоит из более крупных, чем у зачатков листьев, округлых клеток. Протопласт клеток мезофилла пигментирован. Характер пигментации зависит от локализации чешуи. В мезофилле краевых чешуи пигментация сильнее. Мезофилл внутренних чешуи практически не пигментирован.
Проводящие пучки кроющих чешуи мелкие, с малым количеством проводящих элементов.
При рассмотрении чешуи почки с поверхности должно быть видно, что клетки эпидермиса наружной стороны чешуи более толстостенные, чем внутренней, стенки клеток эпидермиса наружной стороны чешуи утолщаются по направлению от основания к верхушке и краям чешуи.
На верхушке и по краю чешуи эпидермис опушен простыми одноклеточными волосками; по краю они более толстостенные и значительной длины. Устьица располагаются с наружной стороны чешуи. Сквозь эпидермис внутренней стороны просвечивают узкие проводящие пучки со спиральными элементами ксилемы и многочисленные мелкие друзы. У внутренних чешуи стенки клеток эпидермиса утолщены только в нижней части чешуи.
На зубцах края зачатков листьев локализованы крупные конусообразные железки, аналогичные описанным ранее для кроющих чешуи. Поверхность зачатков листьев густо опушена многочисленными крупными железками коричневого цвета в различных стадиях развития.
С нижней стороны эпидермиса листового зачатка наблюдаются устьица. По жилкам зачатка листьев и его краям, особенно у основания листочков, расположены простые одноклеточные бичевидные волоски, аналогичные волоскам чешуи. Сквозь эпидермис просвечивают друзы оксалата кальция.
![]() ![]() Рисунок - Березы почки.
1 - фрагмент эпидермиса кроющей чешуи с устьицами (400х);
2 - фрагмент эпидермиса с железками (400х); 3 - простой
бичевидный волосок; 4 - друзы оксалата кальция;
5 - фрагмент поперечного среза кроющей чешуи
с конусовидной железкой (400х)
1. Тонкослойная хроматография
Приготовление растворов.
Раствор стандартного образца (CO) Судана красного G. Около 0,0025 г CO Судана красного G растворяют в 10 мл спирта 96%. Срок годности раствора 6 мес. при хранении в прохладном, защищенном от света месте.
Анисового альдегида раствор. Смешивают последовательно: 0,5 мл анисового альдегида, 10 мл уксусной кислоты ледяной, 85 мл спирта 96% и 5 мл серной кислоты концентрированной. Срок годности раствора 30 суток при хранении в прохладном, защищенном от света месте.
Около 0,5 г сырья измельченного до однородной массы помещают в колбу со шлифом вместимостью 100 мл, прибавляют 10 мл спирта 70% и нагревают с обратным холодильником на кипящей водяной бане в течение 15 мин. Колбу с содержимым охлаждают до комнатной температуры, после чего ее выдерживают в морозильной камере при температуре минус 18 °С в течение не менее 1 ч. Содержимое колбы быстро фильтруют через бумажный фильтр (испытуемый раствор).
На линию старта аналитической хроматографической пластинки на полимерной подложке размером 10x10 см наносят 10 мкл испытуемого раствора и 3 мкл раствора CO Судана красного G.
Пластинку с нанесенными пробами сушат на воздухе, помещают в камеру, предварительно насыщенную в течение не менее 30 мин смесью растворителей толуол-этилацетат-муравьиная кислота безводная (95:5:2), и хроматографируют восходящим способом. После того как фронт растворителей пройдет 80-90% длины пластинки от линии старта, ее вынимают из камеры, сушат до удаления следов растворителей.
Пластинку обрабатывают анисового альдегида раствором и выдерживают в сушильном шкафу при температуре 100-105 °С в течение 2-3 мин и просматривают при дневном свете.
На хроматограмме раствора CO Судана красного G должна обнаруживаться зона судана розового, розово-фиолетового или фиолетового цвета.
На хроматограмме испытуемого раствора должны обнаруживаться 4 зоны адсорбции фиолетового, сине-фиолетового или серо-фиолетового цвета ниже зоны на хроматограмме CO Судана красного G, зона адсорбции розового, розово-фиолетового или фиолетового цвета на уровне зоны Судана красного G, одна зона адсорбции фиолетового, сине-фиолетового или серо-фиолетового цвета чуть выше зоны Судана красного G; допускается обнаружение других зон адсорбции (липофильные соединения).
Влажность. Цельное сырье - не более 10%.
Зола общая. Цельное сырье - не более 4%.
Зола, нерастворимая в хлористоводородной кислоте. Цельное сырье - не более 0,7%.
Другие части березы (веточки, в том числе отделенные от почек при анализе, сережки и пр.). Цельное сырье - не более 8%.
Почки, тронувшиеся в рост и распустившиеся. Цельное сырье - не более 2%.
Органическая примесь. Цельное сырье - не более 1%.
Минеральная примесь. Цельное сырье - не более 0,5%.
Тяжелые металлы. В соответствии с требованиями ОФС "Определение содержания тяжелых металлов и мышьяка в лекарственном растительном сырье и лекарственных растительных препаратах".
Радионуклиды. В соответствии с требованиями ОФС "Определение содержания радионуклидов в лекарственном растительном сырье и лекарственных растительных препаратах".
Остаточные количества пестицидов. В соответствии с требованиями ОФС "Определение содержания остаточных пестицидов в лекарственном растительном сырье и лекарственных растительных препаратах".
Микробиологическая чистота. В соответствии с требованиями ОФС "Микробиологическая чистота".
Количественное определение. Цельное сырье: сумма флавоноидов в пересчете на лютеолин - не менее 2,5%; эфирного масла - не менее 0,2%.
Сумма флавоноидов
Приготовление растворов.
Раствор CO лютеолина. Около 0,02 г (точная навеска) CO лютеолина помещают в мерную колбу вместимостью 50 мл, прибавляют 35 мл спирта 96% и растворяют при нагревании (70-80 °С). Содержимое колбы охлаждают до комнатной температуры, доводят объем раствора спиртом 96% до метки и тщательно перемешивают (раствор А СО лютеолина). Срок годности раствора 30 сут.
1,0 мл раствора А CO лютеолина помещают в мерную колбу вместимостью 50 мл, прибавляют 2 мл алюминия хлорида спиртового раствора 2% и 1 каплю уксусной кислоты разбавленной 30%, доводят объем спиртом 96% до метки и перемешивают (раствор Б CO лютеолина). Срок годности раствора 30 сут.
Аналитическую пробу сырья измельчают до величины частиц, проходящих сквозь сито с отверстиями размером 3 мм. Около 1,0 г (точная навеска) измельченного сырья помещают в колбу с притертой пробкой вместимостью 100 мл и прибавляют 40 мл спирта 70%. Колбу закрывают пробкой, взвешивают с погрешностью
1,0 мл раствора А испытуемого раствора помещают в мерную колбу вместимостью 50 мл, прибавляют 2 мл алюминия хлорида спиртового раствора 2% и 1 каплю уксусной кислоты разбавленной 30%, доводят объем спиртом 96% до метки и перемешивают (раствор Б испытуемого раствора).
Оптическую плотность раствора Б испытуемого раствора измеряют через 30 мин на спектрофотометре при длине волны 400 нм в кювете с толщиной слоя 10 мм. В качестве раствора сравнения используют раствор состоящий из 1 мл раствора А испытуемого раствора и 1 капли уксусной кислоты разбавленной 30%, доведенный спиртом 96% до метки в мерной колбе вместимостью 50 мл.
Параллельно измеряют оптическую плотность раствора Б CO лютеолина в тех же условиях. В качестве раствора сравнения используют раствор состоящий из 1 мл раствора А CO лютеолина, 1 капли уксусной кислоты разбавленной 30%, доведенный спиртом 96% до метки в мерной колбе вместимостью 50 мл.
Содержание суммы флавоноидов в пересчете на лютеолин в абсолютно сухом сырье в процентах (X) вычисляют по формуле:
,где: A - оптическая плотность раствора Б испытуемого раствора;
A0 - оптическая плотность раствора Б CO лютеолина;
a - навеска сырья, г;
a0 - навеска CO лютеолина, г;
P - содержание основного вещества в CO лютеолина, %;
W - влажность сырья, %.
Допускается содержание суммы флавоноидов в пересчете на лютеолин вычислять с использованием удельного показателя поглощения комплекса лютеолина с алюминия хлоридом по формуле:
,где: A - оптическая плотность раствора Б испытуемого раствора;
a - навеска сырья, г;
W - влажность сырья, %.
Эфирное масло
В соответствии с требованиями ОФС "Определение содержания эфирного масла в лекарственном растительном сырье и лекарственных растительных препаратах" (метод 1; навеска 10,0 или 20,0 г измельченного сырья до величины частиц, проходящих сквозь сито с отверстиями размером 3 мм, время перегонки 2 ч).
Упаковка, маркировка и транспортирование. В соответствии с требованиями ОФС "Упаковка, маркировка и транспортирование лекарственного растительного сырья и лекарственных растительных препаратов".
Хранение. В соответствии с требованиями ОФС "Хранение лекарственного растительного сырья и лекарственных растительных препаратов".
Вернуться в "Каталог нормативных документов"
Источник информации: https://internet-law.ru/documents/prod/gosudarstvennaya-farmakopeya/5/farma_52345.html
На правах рекламы:
|