"Методические рекомендации по доклиническому изучению репродуктивной токсичности фармакологических средств N 98/304"
(утв. Минздравом РФ 29.04.1998)

Методические рекомендации одобрены Фармакологическим государственным комитетом Минздрава России (Протокол N 8 от 3 июля 1997 г.) и утверждены Управлением государственного контроля лекарственных средств и медицинской техники Минздрава России 18 декабря 1997 г.

Составители: член-корр. РАМН, профессор Б.И.Любимов - НИИ фармакологии РАМН, канд. мед. наук Н.М.Смольникова - НИИ фармакологии РАМН, канд. биол. наук И.В.Голованова - ЦХЛС-ВНИХФИ, канд. мед. наук А.М.Скосырева - АО Биотехнология, канд. мед. наук Е.М.Чиркова - МНПКК Биотики, докт. мед. наук, профессор А.Г.Рудаков - Фармакологический государственный комитет Минздрава России, канд. мед. наук О.Л.Верстакова - ГИДКЭЛ Минздрава России.

Рецензенты: канд. мед. наук А.А.Голубцов (РЦДКИНВ), канд. мед. наук В.М.Иванова (ВНЦ БАВ), канд. биол. наук И.А.Зеленина (МГУ им. М.В.Ломоносова), канд. биол. наук Н.М.Онацкий (НИЦ ТБП), докт. биол. наук В.Н.Швец (НПЦ МБ), докт. мед. наук, профессор Е.В.Арзамасцев (РКНПК), докт. биол. наук, профессор С.С.Либерман (ЦХЛС-ВНИХФИ), докт. мед. наук, профессор Т.А.Гуськова (ЦХЛС-ВНИХФИ), канд. мед. наук Р.Д.Сюбаев (ГИДКЭЛ).

Настоящие "Методические рекомендации" составлены с учетом многолетнего опыта работы ряда учреждений, занимающихся изучением влияния химических соединений на процессы репродукции, анализа отечественной и зарубежной литературы, рекомендаций ВОЗ "Принципы оценки риска нарушений развития плода в связи с воздействием химических веществ во время беременности", требований FDA (США), материалов СРМР (ЕС), MHW (Япония), материалов согласительной конференции от июля 1993 года по координации доклинических токсикологических испытаний в странах Европы, Японии и США.

Изучение репродуктивной токсичности включает разделы: влияние на генеративную функцию, изучение эмбрио- и фетотоксического действия, регистрируемого в антенатальном и постнатальном периодах развития, а также, при необходимости, изучение возможного неблагоприятного действия фармакологического вещества на потомство в период грудного вскармливания.

1.1. Задачей этого этапа исследований является выявление возможного отрицательного действия фармакологического вещества на стадии прогенеза (формирование мужских и женских гамет), нарушений полового поведения и транспорта продуктов зачатия.

1.2. Изучению должны подвергаться все новые оригинальные фармакологические вещества. Исключение может быть сделано для веществ с противоопухолевой активностью, если их применение ограничивается только онкологической практикой и для веществ, рекомендуемых по жизненным показаниям. Исследуются также вспомогательные вещества, не разрешенные для медицинского применения.

1.3. К моменту начала тестирования необходимо располагать сведениями о физико-химических свойствах вещества, дозах (летальная, эффективная, рекомендуемая для клинических испытаний), признаках интоксикации, специфических для данного вещества, рекомендуемых способах введения, профиле фармакологического действия, показаниях и схемах применения препарата в клинике. Желательно также иметь данные о фармакокинетике фармакологического вещества.

1.4. Изучению подлежит субстанция фармакологического вещества. В тех случаях, когда использование субстанции не обеспечивает преимущества перед лекарственной формой в отношении возможности использования широкого диапазона доз и удобства введения препарата экспериментальным животным, целесообразно проводить изучение репродуктивной токсичности лекарственной формы. При комбинации нескольких лекарственных веществ в одной лекарственной форме, следует изучить комбинацию в целом только в том случае, если один из компонентов в этом плане не изучен.

1.5. Изучаемое вещество необходимо вводить тем способом, который предусмотрен при клиническом применении. При пероральном способе применения вещество следует вводить зондом. Желательно предусмотреть дополнительную группу животных для выяснения обратимости эффекта в случае его обнаружения.

1.6. Исследование можно проводить как на линейных, так и на нелинейных крысах. Вещество испытывают не менее, чем в 2х-3х дозах. Дозы тестируемого вещества рассчитывают на единицу массы тела. В качестве высшей используется максимальная, при которой не отмечается выраженного токсического действия на животных. Эту дозу определяют, учитывая токсикологическую характеристику вещества (ЛД 50, кумулятивные свойства и др.). В большинстве случаев в качестве максимальной дозы может использоваться высшая доза, принятая в опытах по изучению хронической токсичности. Исключение составляют вещества, изменяющие характер своего действия при беременности. Низшая доза близка к терапевтической дозе, рекомендуемой для клинических испытаний в пересчете на животное.

Самцам препарат вводят в течение 60 дней, самкам - 15 дней. Затем животных спаривают с интактными самками и самцами, формируя три группы, включая интактных животных.

Рекомендуется иметь в каждой группе к началу спаривания не менее 16-20 самцов и 20-30 самок, у которых перед началом опыта проверен эстральный цикл. Самок подсаживают к самцам в соотношении 2:1, сроком на 2 эстральных цикла. Оплодотворение регистрируют с помощью вагинальных мазков. Половину ссаженных самок подвергают эвтаназии на 17-21 день беременности, на вскрытии подсчитывают количество желтых тел в яичниках, мест имплантаций в матке и количество живых и погибших плодов. На основании этих данных определяют уровень пред- и постимплантационной смертности зародышей.

Другую половину самок оставляют до родов и наблюдают за физическим развитием потомства до окончания вскармливания (выживаемость, масса). Предимплантационную смертность определяют по разности между количеством желтых тел в яичниках и количеством мест имплантации в матке; постимлантационную смертность по разности между количеством мест имплантаций и количеством живых плодов. Для оценки способности к оплодотворению и зачатию вычисляют индекс, характеризующий отношение числа беременных животных к числу ссаженных в процентах.

1.7. Необходимо иметь в виду, что подавление репродуктивной функции при длительном введении некоторых фармакологических веществ может быть обусловлено не только нарушениями гаметогенеза, но и многими другими причинами (изменение эндокринной функции половых желез, гипофиза, надпочечников, поражение гипоталамуса, центров головного мозга и т.п.). Поэтому, если под влиянием тестируемого вещества возникают нарушения плодовитости животных, необходимо выяснить, зависит ли это от патологии спермато- или оогенеза, либо от других причин, - используя существующие методы выявления повреждающего действия фармакологических веществ на спермато- и оогенез. Выбор конкретных методов исследования проводится экспериментатором. Ряд рекомендуемых методов приведен в приложении.

1.8. При статистической обработке за единицу наблюдения принимают помет, т.е. результаты, полученные при вскрытии одной самки. Сведения о методах статистического анализа, использованных при обработке результатов, должны быть указаны в отчете.

2.1. Под эмбриотоксическими свойствами понимают способность того или иного вещества оказывать токсическое действие на развивающиеся зародыши. Эмбриотоксичность может проявляться как в повышении уровня эмбриональной смертности (эмбриолетальное действие), так и в виде анатомических, гистологических, цитологических, биохимических, нейрофизиологических отклонений от нормы, проявляющихся до или после рождения (тератогенное действие). Кроме того, эмбрио- и фетотоксичность может проявляться в изменении массы тела, краниокаудального размера плодов, задержке оссификации скелета (общая задержка развития), увеличении перинатальной смертности.

2.2. Исследованию на наличие эмбриотоксических свойств должны подвергаться все новые фармакологические вещества, которые могут быть назначены женщинам в период беременности, а также все неиспользовавшиеся раннее в медицинской практике соединения, которые в качестве вспомогательных веществ включаются в лекарственную форму новых или уже применяемых лекарств. Положения, изложенные в пунктах 1.3, 1.4 должны соблюдаться и при изучении эмбриотоксического действия.

2.3. Изучаемые вещества необходимо вводить тем же способом, который предусмотрен при клиническом применении. При пероральном способе применения вещество следует вводить зондом. По возможности следует избегать внутрибрюшинного введения вещества.

2.4. Экспериментальные исследования должны включать изучение состояния плодов к концу антенатального периода развития.

2.5. Поскольку чувствительность зародыша к токсическому действию фармакологических веществ зависит от стадии развития, и при этом зародыши, находящиеся на одной стадии развития могут различаться в чувствительности к действию различных по структуре веществ, сроки введения вещества беременным самкам должны охватывать весь период беременности.

2.6. Дозы тестируемого вещества рассчитывают на единицу массы тела самки. Наиболее целесообразным, с точки зрения последующей интерпретации результатов, следует проводить тестирование вещества, используя не менее двух-трех доз (см. п. 1.6).

2.7. У всех без исключения млекопитающих часть зародышей погибает до или после имплантации, а у некоторых зародышей спонтанно возникают аномалии развития. Поэтому в лабораториях, проводящих тестирование, необходимо иметь данные по так называемому "обобщенному" контролю: данные, полученные на интактных животных, использовавшихся в качестве контрольных в предыдущих исследованиях, при сохранении стабильных условий их содержания.

2.8. Основные опыты проводят на крысах. В случае необходимости получения дополнительной информации используют второй вид животных - кролики, хомяки, мини-свиньи и др. При выборе вида животного необходимо учитывать фармакокинетические параметры и видовую чувствительность изучаемого лекарственного вещества.

2.9.1. ТЕСТИРОВАНИЕ НА КРЫСАХ. Каждая группа крыс, как в опыте, так и в контроле должна состоять не менее, чем из 15-20 беременных животных. Первым днем беременности считают день обнаружения сперматозоидов в вагинальном мазке. В опытах используют виргинных самок линейных, гибридных или рандомбредных животных.

2.9.2. Тестируемое вещество вводят самкам один раз в сутки, желательно в одно и то же время. При отсутствии указаний о выраженной индукции или ингибировании ферментов возможно введение лекарственных веществ с 1 по 19 день беременности в 2х-3х дозах (п. 1.6) Возможна и следующая схема введения препарата: с 1 по 6 (доимплантационный период), с 6 по 16 (органогенез), и с 16 по 19 дни беременности (фетогенез). В этом случае изучаемое вещество вводят с 6 по 15 дни беременности в 2х-3х дозах, в остальные сроки можно ограничиться введением одной высшей дозы (при отсутствии эффекта). Если по техническим причинам невозможно ввести вещество в течение указанных сроков (например, при внутривенном введении), экспериментатор может воспользоваться схемой введения, предусматривающей 3-х или 4-х дневное непрерывное введение вещества, учитывая при этом условия, изложенные в п. 2.5.

Крысам контрольной группы в эти же сроки следует вводить растворители, используемые при приготовлении раствора или суспензии тестируемого вещества. Кроме того, может быть образована группа интактных беременных самок.

В ряде случаев, по усмотрению исследователя, целесообразно использование сравнительного контроля, т.е. животных, которым вводят уже применяемый в клинической практике препарат, близкий к изучаемому по химической структуре или аналогичный по профилю фармакологического действия. Для оценки реактивности экспериментальных животных можно использовать позитивный контроль при введении животным какого-либо эталонного тератогена (салициловокислый натрий, циклофосфамид и др.) в дозе, оказывающей эффект примерно у 50% зародышей.

2.9.3. Во время эксперимента следует наблюдать за состоянием и поведением беременных самок, регулярно, не реже одного раза в неделю, взвешивать животных для выявления возможного токсического действия изучаемого вещества.

2.9.4. Результаты оцениваются после эвтаназии и вскрытия самок. Вскрытие проводят на 20-й день беременности.

2.9.5. Показателями эмбриотоксичности служат: пред- и постимплантационная эмбриональная смертность, морфологические (анатомические) пороки развития, а так же общая задержка развития плодов. Предимплантационную смертность определяют по разности между количеством желтых тел в яичниках и количеством мест имплантации в матке; постимлантационную смертность по разности между количеством мест имплантаций и количеством живых плодов. При оценке тератогенного действия рекомендуется сначала подсчитать количество плодов с аномалиями, заметными при внешнем осмотре, а затем разделить плоды на 2 группы и у одних плодов исследовать состояние внутренних органов, у других - состояние скелета. Кроме того, плоды взвешивают и определяют их краниокаудальный размер.

2.9.6. При статистической обработке за единицу наблюдения принимают помет, т.е. результаты, полученные при вскрытии одной самки. Сведения о методах статистического анализа, использованных при обработке результатов, должны быть указаны в отчете.

2.9.7. ТЕСТИРОВАНИЕ НА КРОЛИКАХ. Исследования проводят на виргинных самках. Каждая группа (в опыте и контроле) должна состоять не менее, чем из 12 беременных крольчих.

2.9.8. Изучаемое вещество рекомендуется вводить с 6 по 18 дни беременности (период органогенеза), один раз в сутки, в высшей дозе (п. 2.3). Группы контрольных животных должны быть такими же, как указано в п. 2.9.2. Вопрос о том, использовать субстанцию или лекарственную форму, решается так, как указано в п. 1.4. Результаты оценивают после эвтаназии и вскрытия самок.

Вскрытие проводят на 27-28 день беременности. Можно прибегать и к хирургическому извлечению плодов у живых крольчих.

2.9.9. Показателями эмбриотоксичности служат те же показатели, что и у крыс (п. 2.9.5). Статистическую обработку результатов проводят так же, как изложено в п. 2.9.6.

3.1. Целью исследований, проводимых на этом этапе, является выявление нарушений эмбрионального развития, проявляющихся только в постнатальном периоде жизни.

3.2. Исследование проводят на виргинных самках линейных, гибридных или рандомбредных животных. Как в подопытной, так и в контрольной группах должно быть получено потомство не менее, чем от 10 самок. Изучаемое вещество вводят самкам 1 раз в сутки с 6 дня беременности и до родов (период органо- и фетогенеза) в дозе, близкой к максимальной (п. 1.6).

Контрольная группа самок должна получать в эти же сроки растворитель, используемый при введении препарата. Во время введения препарата необходимо регистрировать состояние и поведение самок, динамику массы тела, продолжительность беременности, течение родов. За 3-4 дня до родов беременных самок следует рассадить по одной в клетку и обеспечить их подходящей подстилкой для устройства гнезда. В каждом помете оставляют по 6-8 новорожденных (желательно одинаковое количество самок, самцов). На 25-30 день после рождения крысят отсаживают от матерей.

3.3. Исследования следует начинать вскоре после рождения, но не раньше, чем через 24 часа и, по возможности, продолжать до 2-х месячного возраста. Оценка включает следующие типы исследований: общие наблюдения за физическим развитием потомства; изучение скорости созревания сенсорно-двигательных рефлексов в период вскармливания самкой; изучение двигательного и эмоционального поведения и способности к координации движений у потомства после окончания вскармливания; изучение обучаемости и памяти: выработка условных рефлексов как с положительным, так и с отрицательным подкреплением и сохранение полученных навыков. В исследованиях 1-3 типа должны быть обследованы все животные. При формировании групп для исследований 4 типа от каждого помета можно взять в группу по 2 животных. Программа изучения постнатального развития определяется экспериментатором с учетом фармакологических и токсических свойств изучаемого лекарственного вещества. Примерный перечень тестов указан в Приложении. В некоторых случаях он может быть расширен для получения дополнительной информации (изучение влияния на клеточный состав крови, проведение биохимических, патоморфологических исследований, спаривание с последующим изучением потомства F1, F2 генераций и др.).

Необходимо иметь в виду, что введение некоторых веществ во время беременности может неблагоприятно влиять на поведение самок, приводя к нарушению лактации, угасанию материнских инстинктов и т.п. В связи с этим может возникать необходимость перекрестного вскармливания потомства.

3.4. Для некоторых фармакологических веществ, применяемых во время грудного вскармливания, желательно изучение их влияния на развитие потомства. Исследования проводят при введении вещества самкам с 1 дня после родов до окончания вскармливания (25 день). Состояние потомства оценивают, как и при изучении постнатального развития (п. 3.3.).

3.6. При статистической обработке полученных результатов в качестве независимой переменной используют среднее значение соответствующего показателя для отдельного помета. В связи с этим, при формировании групп для отдельных серий испытаний желательно, чтобы соблюдалось равное представительство от каждого помета. При этом необходимо предусмотреть возможность раздельного анализа результатов для самок и самцов. В отчете должны быть представлены сведения об использовавшихся методиках статистического анализа.

4.1. Представляемый в Фармакологический Государственный комитет Минздрава России отчет должен включать цифровые данные в форме таблиц, содержащих основные сведения, необходимые для суждения о наличии или отсутствии у изучаемого препарата неблагоприятного действия на внутриутробное развитие и процессы репродукции. Форма некоторых таблиц представлена в Приложении.

4.2. При описании аномалий развития следует руководствоваться общепринятой терминологией. Если трудно описать какую-либо из аномалий развития, следует представить фотографию плода с этой аномалией.

4.3. В заключительной части отчета необходимо дать оценку результатам тестирования по следующим направлениям:

- оценка результатов, полученных при изучении влияния препарата на генеративную функцию;

- оценка результатов, полученных при обследовании потомства в конце антенатального периода развития;

- оценка результатов, полученных при обследовании потомства в постнатальном периоде развития.

4.4. Общее заключение о наличии или отсутствии повреждающего действия лекарственного средства на репродуктивную функцию и внутриутробное развитие.

1.1. Эвтаназия подопытных животных и получение эмбрионального материала. Эвтаназию самок осуществляют дислокацией шейных позвонков. Вскрывают брюшную полость, вырезают матку, переносят в чашку Петри с физиологическим раствором. Вскрывают рога матки, подсчитывают количество живых, мертвых, резорбированных плодов, обследуют слизистую матки, отмечая места имплантации. Вынимают плоды, освобождают их из оболочек. В яичниках подсчитывают количество желтых тел беременности.

1.2. Наружный осмотр, взвешивание плодов. Все живые плоды каждого помета обследуют под бинокулярным микроскопом типа МБС для обнаружения внешних видимых аномалий развития. После этого плоды взвешивают, отмечают состояние каждого плода и описывают аномалии, указывают массу каждого плода и суммарную массу плодов помета.

После наружного осмотра плодов, регистрации всех аномалий и взвешивания, плоды каждого помета делят на две группы. Одну группу плодов (около 1/3) фиксируют в жидкости Буэна и используют для изучения внутренних органов. Остальных плодов фиксируют в 96 град. этаноле и используют для изучения состояния скелета.

1.3. Исследование внутренних органов плодов по методике Вильсона в модификации отдела эмбриологии НИИЭМ АМН СССР.

Исследования проводят на плодах, которые фиксировали в жидкости Буэна не менее 1 недели. Плод укрепляют на пробковом столике и, при помощи безопасной бритвы, разрезом параллельно нижней челюсти отделяют голову от туловища. Первый разрез головы проводят перпендикулярно нижней челюсти непосредственно за вибрисами. На этом срезе видно состояние нижней челюсти, переднего отдела твердого неба и носовой полости. Второй разрез проводится через середину глазных яблок и охватывает обонятельные луковицы. На третьем разрезе изучают состояние головного мозга: коры больших полушарий, боковых, третьего и четвертого желудочков. Срез проводят через большой поперечный диаметр черепа. Четвертый разрез проходит параллельно третьему. Исследуют мозжечок и продолговатый мозг. Пятый разрез идет через гортань, пищевод, спинной мозг, сосуды и слюнные железы. Шестым разрезом отсекается шея от туловища. Разрез проводят перед передними лапами. Видны пищевод, трахея, спинной мозг, крупные сосуды. Седьмой разрез проходит через органы грудной клетки непосредственно за передними конечностями. На разрезе видны: сердце, легкие, бронхи, пищевод, спинной мозг. Восьмой разрез проводят по середине между седьмым разрезом и пупочным кольцом. Осматривают печень, а затем осторожно удаляют ее пинцетом и исследуют состояние диафрагмы. Девятый разрез проходит ниже пупочного кольца. Видны кишечник, поджелудочная железа. Осторожно удалив петли кишечника и печень, можно наблюдать органы таза: почки, мочеточники, мочевой пузырь, прямую кишку, внутренние половые органы. Необходимо обратить внимание на почки (возможность гидронефроза), матку с придатками и тестикулы.

1.4. Метод висцерального исследования органов плодов по Стейплсу. После внешнего осмотра живых плодов на наличие аномалий развития, определения массы и краниокаудального размера, производят декапитацию. Декапитированный плод фиксируют, глазными ножницами разрезают переднюю брюшную стенку и грудь вдоль левого края грудины. Пинцетом удаляют вилочковую железу и исследуют топографию и состояние крупных сосудов, отходящих от сердца (правая и левая подключичные артерии, общая сонная артерия, нисходящая аорта и легочная артерия). Обращают внимание на их форму и размеры. Пинцетом фиксируют сердце за ушко правого предсердия, рассекают сердце ножницами двумя разрезами от верхушки к основанию (1 - правее, 2 - левее межжелудочковой перегородки) и исследуют состояние межжелудочковой перегородки и клапанов. Затем исследуют состояние легких (количество долей) и органов брюшной полости. После извлечения печени, определяют состояние диафрагмы, а удалив петли кишечника, осматривают надпочечники, почки, мочеточники и мочевой пузырь. Почки разрезают на уровне почечных лоханок и исследуют их. Определяют абсолютную и относительную массу вилочковой железы, сердца, почек. Устанавливают пол плода и изучают топографию половых органов.

1.5. Окрашивание скелета ализарином (методика Доусона, модифицированная в отделе эмбриологии НИИЭМ АМН СССР).

Плоды фиксируют в 96 град. этаноле не менее 7 дней. Объем спирта должен превышать объем фиксируемых плодов в 10 раз. После фиксации у плодов удаляют внутренности и погружают в 1% раствор КОН для просветления мягких тканей. Время пребывания плодов в этом растворе определяют эмпирически (примерно 1-2 суток). Когда становятся видны закладки костей, плоды вынимают, промывают водопроводной водой и перенося их в раствор А (150 мл глицерина, 300 мл дистиллированной воды и 10 г КОН), к которому добавляют несколько капель раствора Б (1% раствор ализарина красного) до появления светло-фиолетового окрашивания. Через 3-5 суток окостеневшие участки скелета окрашиваются в красно-фиолетовый цвет. Для обесцвечивания мягких тканей плоды переносят в раствор А на 7-14 дней, затем их проводят через смеси глицерина, спирта и воды с целью обезвоживания (1:2:7, 2:2:6, 4:4:2, равные части спирта и глицерина, чистый глицерин с добавлением 1-2 капель формалина). В чистом глицерине плоды могут храниться. Плоды изучают под микроскопом МБС, учитывают аномалии скелета, количество точек окостенения в различных костных образованиях.

1.6. Методы изучения развития потомства в постнатальном периоде жизни.

1.7. Для морфологического изучения семенников их фиксируют в 10% формалине или жидкости Карнуа, заливают в парафин, приготовляют поперечные срезы толщиной 6-7 микрон, окрашивают гематоксилином и эозином. Морфологическую оценку состояния сперматогенного эпителия проводят по следующим количественным показателям:

а) индекс сперматогенеза = SUM А : 100, где: А - число стадий в каждом канальце; 100 - число подсчитанных канальцев. Индекс сперматогенеза подсчитывают по 4-х бальной системе, фиксируют в канальце наличие сперматогоний, сперматоцитов 1 и 2 порядка, сперматид и сперматозоидов;

б) среднее количество нормальных сперматогоний в каждом канальце (подсчитывают 20 канальцев);

в) относительное количество канальцев с 12-й стадией мейоза (метафаза 2-го деления созревания, подсчитывают в 100 канальцах).

Для исследования функционального состояния сперматозоидов обычно используют суспензию, полученную при продольном разрезе придатка семенника. Методика стандартизована по количеству (2 мл) физиологического раствора и времени перемешивания (2 мин.) при комнатной температуре. Это позволяет проводить оценку функции сперматозоидов по следующим показателям: характер и продолжительность их движения; относительное количество патологических форм сперматозоидов; концентрация сперматозоидов в хвостовой части эпидидимиса. Возможно также определение относительного количества живых сперматозоидов и их резистентности осмотической и кислотной.

1.8. Для морфологического изучения яичников их фиксируют в жидкости Карнуа, заключают в парафин, приготовляют срезы по типу топографических, через весь орган, толщиной 6 микрон, окрашивают гематоксилином и эозином. Эвтаназию животных проводят в стадии эструс или проэструс, что необходимо для последующего подсчета структурно-функциональных элементов в яичнике.

Регистрируют:

- примордиальные фолликулы и фолликулы с одним слоем гранулезных клеток;

- фолликулы с двумя и более слоями гранулезных клеток;

- зрелые фолликулы (граафовы пузырьки);

- атретические тела и атрезирующие фолликулы;

- желтые тела;

- общее количество генеративных форм.

Указанные элементы подсчитывают по всей поверхности среза. Фолликулы примордиальные и с одним слоем гранулезных клеток учитывают в каждом 10 срезе и результат умножают на 10, фолликулы зрелые с двумя и более слоями гранулезных клеток, атретические тела подсчитывают в каждом 5 срезе, желтые тела фиксируют в срединном срезе. При количественной оценке микроструктуры яичника регистрируют только фолликулы, содержащие ядро и ядрышко.

Список литературы:

1. Гуськова Т.А. Оценка безопасности лекарственных средств на стадии доклинического изучения. Химико-фармацевтический журнал, 1990, 7, стр. 10-15.

2. Кирющенков А.П., Тараховский М.Л. Влияние лекарственных средств на плод. Москва, 1990, 286 с.

3. Методические указания по изучению эмбриотоксического действия фармакологических веществ и влияния их на репродуктивную функцию. Москва, Фармакологический комитет, 1986. 25 с.

4. Принципы оценки риска для потомства в связи с воздействием химических веществ в период беременности. ВОЗ. Женева, 1986 156 с.

5. Торчинский А.М. Доклиническое изучение тератогенных свойств лекарственных препаратов: возможности увеличения информативности результатов эксперимента. Докт. дисс. Москва, 1990.

6. Beltrame D., Mazue J. Reprodactive toxicology guidelines:comparison and application. Ann. Ist. Super Sanita, 1993, v. 29, 1, 3-4.

7. ICH Harmonised Tripartite Guideline Recommended for Adoption at Step 4 of the ISH Process on 24 June 1993 by the ICH Steering Committee.