<8> Пункт 585 приложения 3 СанПиН 3.3686-21.
<9> Пункты 453 - 460 СанПиН 3.3686-21.
5.1.1. У больных (подозрительных на заболевание), вне зависимости от клинической формы болезни, производят отбор крови, мочи, мазка слизистой зева. Дополнительно, в зависимости от клинической формы болезни, должен быть проведен отбор содержимого абсцессов, пунктатов лимфоузлов, мокроты, гнойного отделяемого язв, рвотных масс, полостных экссудатов, цереброспинальной жидкости.
5.1.2. От умерших с подозрением на мелиоидоз или сап производят отбор материала кожных поражений, увеличенных лимфатических узлов, измененных участков легких, печени и селезенки, мозга и кровь.
5.1.3. Забор крови для исследований проводят с соблюдением правил асептики и мер индивидуальной защиты. Кровь забирают из локтевой вены в количестве 20 мл одноразовым шприцем, 5 мл засевают в 50 мл жидкой питательной среды. Оставшуюся часть крови распределяют по двум пробиркам: 10 мл в пробирку с антикоагулянтом - 6%-м раствором ЭДТА в отношении 1 : 20 к объему крови (гепарин использовать нельзя!); 5 мл - для получения сыворотки для постановки серологических реакций.
5.1.4. Отделяемое из зева забирают натощак или через 3 - 4 часа после еды. Аккуратно прижимая язык шпателем, вводят тампон между дужками миндалин и язычком (нельзя касаться тампоном губ, щек, языка) и собирают материал с задней поверхности глотки, миндалин и участков воспаления или изъязвления слизистой. Тампон с материалом помещают в стерильную пробирку или пробирку с транспортной или питательной средой.
5.1.5. Перед взятием отделяемого язв осторожно очищают кожу вокруг пораженного места, при необходимости удаляют некротические массы, гной. Прокатывая тампон по раневой поверхности от центра к периферии в течение 5 - 10 с, абсорбируют материал на тампон.
5.1.6. Моча берется с соблюдением правил асептики - средняя порция или моча из катетера.
5.1.7. Отбор проб всех видов материала осуществляют в стерильную пластиковую посуду, соответствующую объему проб. Емкости с пробами маркируют, обрабатывают снаружи дезинфицирующим раствором, упаковывают в полиэтиленовый пакет с застежкой-молнией и помещают в контейнер для транспортировки биологического материала. Поверхность стола после упаковки проб обрабатывают дезинфицирующим раствором. Контейнер с упакованным материалом опечатывают и отправляют в лабораторию с нарочным на специально выделенном транспорте с соблюдением температурного режима в интервале от плюс 8 °C до плюс 15 °C.
Отобранный материал должен быть доставлен на лабораторное исследование в течение 2 часов. При длительной транспортировке материала в лаборатории необходимо использовать транспортные среды.
5.1.8. Упаковку и транспортирование клинического (секционного) материала осуществляют в соответствии с требованиями к порядку передачи и транспортирования (в части безопасной упаковки, маркировки и оформления документации) ПБА I - IV групп <10>. На отправляемые для лабораторного исследования пробы клинического или секционного материала оформляют направления в соответствии с рекомендуемыми образцами (приложения 1, 2 к настоящим МУ). Направление заполняется в 2 экземплярах. Один экземпляр вкладывается в контейнер, второй - передается с нарочным.
--------------------------------
5.2. Отбор и направление материала от животных. Отбор материала от животных производится специалистами в области ветеринарии <11>. Порядок диагностических мероприятий регламентирован Ветеринарными правилами <12>.
--------------------------------
<11> Статья 1.1 Федерального закона от 14.05.1993 N 4979-1 "О ветеринарии".
<12> Приказ Минсельхоза России от 28.06.2017 N 311 "Об утверждении Ветеринарных правил осуществления профилактических, диагностических, ограничительных и иных мероприятий, установления и отмены карантина и иных ограничений, направленных на предотвращение распространения и ликвидацию очагов сапа" (зарегистрирован Минюстом России 31.07.2017, регистрационный N 47585).
У больных (подозрительных на заболевание) мелиоидозом животных возбудитель может быть выделен из содержимого абсцессов, мокроты, гнойного отделяемого язв, рвотных масс. При острой септической форме возбудитель обнаруживается в крови, моче, цереброспинальной жидкости и полостных экссудатах.
Материал для исследования от животных с подозрением на сап - выделения из носовой полости, отделяемое язв, пунктаты лимфоузлов, мокрота, испражнения.
При вскрытии трупов животных для исследования на оба возбудителя забирают фрагменты органов (селезенка, печень, легкое), лимфатических узлов, кровь, костный мозг.
Порядок и температурные режимы направления проб на исследование соответствуют описанным в п.п. 5.1.7 - 5.1.8.
5.3. Отбор и направление материала из объектов окружающей среды осуществляются в соответствии с требованиями к проведению мероприятий по предупреждению распространения инфекционных болезней на территории Российской Федерации <13>.
--------------------------------
<13> Пункты 582, 586 СанПиН 3.3686-21.
Отбор проб объектов окружающей среды, представляющих собой твердые субстраты (почва, подстилочный материал, продукты растениеводства), осуществляют в стерильные контейнеры или пакеты с застежкой-молнией объемом не менее 25 мл. Инструмент для отбора проб очищается и обрабатывается 70%-м этанолом после отбора каждого образца.
Отбор проб воды осуществляют в стерильные герметично закрывающиеся контейнеры объемом не менее 250 мл.
Порядок и температурные режимы направления проб на исследование соответствуют описанным в п.п. 5.1.7 - 5.1.8.
6.1. Все работы с материалом, подозрительным на зараженность возбудителями мелиоидоза и сапа, проводятся в соответствии с санитарно-эпидемиологическими требованиями к обеспечению безопасности при работе с ПБА <14>.
--------------------------------
<14> Глава IV СанПиН 3.3686-21.
6.2. Световая микроскопия мазков и мазков-отпечатков исследуемого материала проводится с использованием окраски по Граму.
6.3. МФА используют при индикации возбудителей мелиоидоза и сапа в нативном материале и после "подращивания" материала на средах обогащения. Приготовление, окрашивание иммуноглобулинами диагностическими флуоресцирующими мелиоидозными или сапными, просмотр мазков и оценку результатов осуществляют в соответствии с инструкцией по применению препарата.
При работе с чистыми культурами типичных штаммов возбудителей мелиоидоза или сапа метод позволяет выявлять 5 x 104 м.к./мл, в бактериальных смесях - от 5 x 105 до 1 x 106 м.к./мл, в объектах внешней среды - от 5 x 105 до 5 x 106 м.к./мл в зависимости от характера исследуемого объекта, его обсемененности посторонней микрофлорой.
На этапе экспресс-анализа используют МФА с контрастированием неспецифического свечения микрообъектов. При идентификации чистых культур микроорганизмов контрастирование не применяют.
6.4. Для выявления специфических антител к возбудителям мелиоидоза и сапа в сыворотке крови больных (подозрительных на заболевание) мелиоидозом и сапом используют непрямые варианты МФА и РНГА. Исследования проводят в соответствии с инструкциями по применению диагностических препаратов.
6.5. ПЦР. Исследования проводят в соответствии инструкциями по применению диагностических препаратов.
из исследуемого материала
7.1. Все работы с культурами, подозрительными на принадлежность к видам B. pseudomallei и B. mallei, проводятся в соответствии с санитарно-эпидемиологическими требованиями к обеспечению безопасности при работе с ПБА <15>.
--------------------------------
<15> Глава IV СанПиН 3.3686-21.
7.2. Для бактериологического исследования на мелиоидоз и сап используют питательные среды и их компоненты, зарегистрированные в установленном порядке <16> (приложение 3 к настоящим МУ). Каждая серия питательных сред должна быть проверена на ростовые свойства <17>.
--------------------------------
<16> Статья 38 Федерального закона от 21.11.2011 N 323-ФЗ.
<17> МУК 4.2.2316-08 "Методы контроля бактериологических питательных сред", утвержденные руководителем Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации 18.01.2008.
7.2.1. Для выделения возбудителей используют плотные и жидкие полноценные питательные среды с добавлением 4% глицерина. При выделении возбудителя мелиоидоза в качестве ингибиторов посторонней микрофлоры используют полимиксин B (50 ЕД/мл) и гентамицин (4 мкг/мл). При выделении возбудителя сапа в качестве ингибитора посторонней микрофлоры используют только полимиксин B (30 ЕД/мл).
7.2.2. Оптимальной средой для выделения возбудителя мелиоидоза из нестерильных в норме проб является агар Эшдауна (триптиказо-соевый агар, содержащий 4% глицерина, 4 мг/л гентамицина, 5 мг/л кристаллвиолета и 50 мг/л нейтрального красного) (приложение 4 к настоящим МУ). В связи с наличием отдельных штаммов B. pseudomallei, чувствительных к гентамицину, посев исследуемого материала следует проводить параллельно на среду Эшдауна с гентамицином и без него.
7.3. Выделение возбудителей мелиоидоза и сапа из проб клинического (секционного) материала.
7.3.1. Гемокультура. Асептически полученную кровь (2 мл) засевают в триптиказо-соевый бульон с 4% глицерина, одновременно делая посев на триптиказо-соевый агар с 4% глицерина и агар Эшдауна (только для возбудителя мелиоидоза). Бульонные посевы инкубируют при плюс 37 °C в течение 48 часов. Поверхностный бактериальный рост (захватывая поверхностную пленку) по 0,1 мл пересевается на триптиказо-соевый агар с 4% глицерина и агар Эшдауна (только для возбудителя мелиоидоза). Посевы инкубируют при плюс 37 °C в течение 96 часов, ежедневно контролируя рост.
7.3.2. Респираторные выделения, мазки, гной, отделяемое язв. Производят посев растиранием небольшого количества исследуемого образца на триптиказо-соевый агар с 4% глицерина и полимиксином, для возбудителя мелиоидоза дополнительно производят высев на агар Эшдауна (с добавлением и без гентамицина) и селективный бульон Эшдауна. Посевы инкубируют при плюс 37 °C в течение 48 часов (триптиказо-соевый агар) и 96 часов (агар Эшдауна) с ежедневным контролем роста.
Посевы на селективный бульон Эшдауна инкубируют при плюс 37 °C в течение 48 часов, затем 0,01 мл с поверхности бульона рассевают на агар Эшдауна, далее инкубируют при 37 °C в течение 48 - 96 часов с ежедневным контролем роста.
7.3.3. Моча. Бактериологическое исследование мочи проводят для выделения возбудителя мелиоидоза. Нативную мочу в объеме 0,1 мл высевают растиранием на 2 чашки агара Эшдауна (с добавлением и без гентамицина). Концентрированную мочу (центрифугировать 5 мин при 3 000 об./мин, супернатант удаляют, осадок суспендируют в остатке жидкости) в объеме 0,05 мл высевают растиранием на 2 чашки агара Эшдауна (с добавлением и без гентамицина). Посевы инкубируют при плюс 37 °C в течение 96 часов с ежедневным контролем роста.
7.3.4. Секционный материал. Посевы секционного материала осуществляют методом мазков-отпечатков с последующим рассевом на триптиказо-соевый агар с 4% глицерина и полимиксином, для возбудителя мелиоидоза дополнительно производят высев на агар Эшдауна (с добавлением и без гентамицина) и селективный бульон Эшдауна. Посевы инкубируют при плюс 37 °C в течение 48 часов (триптиказо-соевый агар) и 96 часов (агар Эшдауна) с ежедневным контролем роста.
Посевы на селективный бульон Эшдауна инкубируют при плюс 37 °C в течение 48 часов, затем 0,05 мл с поверхности бульона рассевают на агар Эшдауна, далее инкубируют при плюс 37 °C в течение 96 часов с ежедневным контролем роста.
7.4. Выделение возбудителя мелиоидоза из объектов окружающей среды.
7.4.1. Почва, подстилка, твердое растительное сырье. К образцу массой около 10 г добавляют 10 мл стерильного физиологического раствора с полимиксином B (50 ЕД/мл), тщательно перемешивают на встряхивателе в течение 30 с и инкубируют при плюс 42 °C в течение 48 часов. По окончании инкубации калиброванной петлей на 0,01 мл осторожно снимают пленку с поверхности жидкости и рассевают на 2 чашки с агаром Эшдауна (с гентамицином и без гентамицина). Инкубируют при плюс 42 °C в течение 7 суток с ежедневным контролем роста.
7.4.2. Вода. Проводят предварительное обогащение исследуемой пробы, для чего к 2 мл образца добавляют 10 мл бульона Эшдауна с полимиксином B (50 ЕД/мл), инкубируют при плюс 42 °C в течение 48 часов. Параллельно производят высев 0,2 мл исследуемой пробы на 2 чашки с агаром Эшдауна (с гентамицином и без гентамицина), инкубируют при плюс 42 °C в течение 7 суток с ежедневным контролем роста.
При инкубации пробы с обогащением необходимо обеспечить доступ воздуха (если крышка завинчивающаяся, она должна быть закрыта неплотно, либо используется корковая или ватно-марлевая пробка). По окончании инкубации калиброванной петлей на 0,01 мл осторожно снимают пленку с поверхности среды обогащения и рассевают на 2 чашки с агаром Эшдауна (с гентамицином и без гентамицина). Инкубируют при плюс 42 °C в течение 7 суток с ежедневным контролем роста.
7.5. Выделение возбудителя мелиоидоза методом биопроб.
7.5.1. При выделении возбудителя мелиоидоза исследуемые кровь, цереброспинальную жидкость, экссудат из серозных полостей вводят в объеме 0,5 - 1,0 мл двум золотистым хомякам подкожно. Материал из абсцессов, отделяемого ран, рвотных масс, измельченные кусочки внутренних органов (печень, селезенка, почки, легкие) суспендируют в 2 - 3 мл 0,85%-го раствора NaCl, после отстаивания надосадочную жидкость вводят животным подкожно по 0,5 - 1,0 мл.
7.5.2. Исследуемую воду вводят по 2,0 мл внутрибрюшинно пяти золотистым хомякам. При анализе сильно загрязненной воды и почвы (надосадочная жидкость) объем инъекции составляет 1,0 мл. Заражение проводят подкожно.
7.5.3. Мелиоидоз у золотистых хомяков протекает в острой септицемической форме, заканчивающейся к 4 - 5-му дню летально. Культуру возбудителя мелиоидоза выделяют посевом внутренних органов павших животных (измененные части тканей легких, селезенки, печени, кровь, лимфатические узлы) на плотные питательные среды с 4% глицерина. За выжившими животными наблюдают не менее 20 суток, после чего их забивают, вскрывают и исследуют бактериологически (посев из паренхиматозных органов и крови на плотные питательные среды с 4% глицерина). Отбор подозрительных колоний производят после 48 - 72 часов инкубации при температуре плюс 37 °C.
7.6. Выделение возбудителя сапа методом биопроб.
7.6.1. Биологический метод высокоэффективен для диагностики острого сапа и малоэффективен при хроническом сапе.
7.6.2. Для постановки биопробы при диагностике сапа используют золотистых хомяков или морских свинок.
7.7. Кусочки органов животных или людей измельчают в физиологическом растворе (см. п. 7.5.1 МУ). Экстракт в объеме 0,5 мл вводят биопробным животным подкожно в область бедра. При исследовании подозрительных культур животных заражают внутрибрюшинно. Срок наблюдения за биопробными животными до 21 суток, в типичных случаях падеж биопроб происходит в первые 10 суток после инфицирования.
7.8. Павших или забитых биопробных животных вскрывают и исследуют бактериологически для выделения культуры возбудителя. С этой целью из органов делают высевы на полноценные питательные среды с добавлением 4% глицерина и полимиксина B (30 ЕД/мл).
8.1. Все работы с культурами B. pseudomallei и B. mallei проводятся в соответствии с санитарно-эпидемиологическими требованиями к обеспечению безопасности при работе с ПБА <18>.
--------------------------------
<18> Глава IV СанПиН 3.3686-21.
8.2. Характер роста возбудителя мелиоидоза на плотных питательных средах. B. pseudomallei на кровяном агаре, агаре Мюллера-Хинтона, триптиказо-соевом агаре образует небольшие, гладкие полупрозрачные кремовые колонии (S-форма); к 48 часам они достигают диаметра 1 - 3 мм и начинают диссоциировать (теряют прозрачность, становятся серовато-белыми с металлическим блеском, поверхность шероховатая). R-форма: серовато-желтые или серовато-белые непрозрачные колонии диаметром 2 - 4 мм с морщинистой поверхностью и неровным зубчатым краем. Гемолиз отсутствует. В отдельных случаях появляются мукоидные колонии, иногда образуются микроколонии. Для B. pseudomallei характерно присутствие на одной чашке разных типов колоний. При сливном росте наблюдается непрозрачный с металлическим блеском налет, приподнимающийся над поверхностью агара. Растет на шаре МакКонки. На селективном агаре Эшдауна B. pseudomallei через 24 часа образует мелкие бледно-розовые колонии; на вторые сутки розовато-фиолетовые плоские; на третьи-четвертые сутки (иногда раньше) наблюдается прогрессия к образованию R-форм (сухие, морщинистые колонии причудливой формы разных оттенков фиолетового или пурпурного цветов). Возможно также образование других типов колоний B. pseudomallei - гладкие и блестящие, слизистые или мукоидные с различными оттенками фиолетового цвета. Характерным признаком колоний возбудителя мелиоидоза является наличие металлического блеска. Часто присутствует характерный землистый запах.
8.3. B. pseudomallei представляет собой прямые или слегка изогнутые грамотрицательные биполярные палочки с закругленными концами размером 2 - 6 x 0,5 - 0,8 мкм, могут встречаться также коккобациллярные и нитевидные формы микроба. Биполярность может быть не выражена или отсутствовать у клеток молодых или старых культур, культивированных при дефиците питательных веществ.
8.4. Характер роста возбудителя сапа на плотных питательных средах. B. mallei на кровяном агаре, агаре Мюллера-Хинтона, триптиказо-соевом агаре на вторые сутки образует гладкие, серые, полупрозрачные колонии без пигмента. На средах с желчными кислотами, например, МакКонки, в большинстве случаев рост отсутствует; к концу вторых суток могут образоваться очень мелкие микроколонии.
8.5. B. mallei представляет собой небольшие прямые или слегка изогнутые грамотрицательные палочки размером от 1,5 - 3 x 0,5 - 1 мкм с закругленными концами. В старых культурах могут присутствовать кокковидные и нитевидные формы клеток.
8.6. Родо- и группоспецифичные диагностические признаки. При отборе культур, подозрительных на принадлежность к видам B. pseudomallei и B. mallei, учитывают их агглютинацию агглютинирующими сыворотками в титре не менее 1 : 200, отсутствие способности к образованию диффундирующего пигмента на плотных питательных средах, положительную каталазную активность, положительную цитохромоксидазную активность (может варьировать у B. mallei), способность к окислению глюкозы без ферментации, наличие аргининдегидролазы, отсутствие лизин- и орнитиндекарбоксилазы, отсутствие признака ассимиляции L-арабинозы.
8.7. Видоспецифические диагностические признаки. При дифференциации видов B. pseudomallei и B. mallei учитывают следующие признаки:
- рост при плюс 42 °C: B. pseudomallei - рост при 42 °C имеется; B. mallei - рост при плюс 42 °C отсутствует;
- подвижность (оценивается по характеру роста при посеве уколом в 0,4%-й агар): B. pseudomallei - подвижна; B. mallei - неподвижна;
- устойчивость к полимиксину, гентамицину и амоксициллину/клавуланату: B. pseudomallei устойчива к полимиксину и к гентамицину (отдельные штаммы к гентамицину чувствительны) - зона ингибирования роста отсутствует - и чувствительна к амоксициллину/клавуланату (диаметр зоны ингибирования роста >= 50 мм); B. mallei устойчива к полимиксину (зона ингибирования роста отсутствует) и чувствительна к гентамицину и амоксициллину/клавуланату (приложение 5 к настоящим МУ).
8.8. Идентификация возбудителей мелиоидоза и сапа с использованием микробиологических анализаторов. В коммерческих автоматизированных и полуавтоматизированных микробиологических анализаторах могут быть использованы идентификационные биохимические наборы для грамотрицательных неферментирующих микроорганизмов.
8.8.1. Диагностическая специфичность при идентификации B. pseudomallei и B. mallei с использованием коммерческих автоматизированных и полуавтоматизированных биохимических анализаторов не превышает 85%. В связи с чем определение видовой принадлежности подозрительных изолятов с использованием коммерческих систем биохимической идентификации не может считаться окончательным и требует подтверждения методом ПЦР и/или другими молекулярно-генетическими методами.
8.8.2. Биохимическая идентификация B. mallei большинством коммерческих микрообъемных систем не предусмотрена. При проведении идентификации B. pseudomallei следует учитывать, что около 15% штаммов возбудителя мелиоидоза имеют атипичные биохимические профили и могут быть идентифицированы как B. cepacia, Pseudomonas fluorescens, P. aeruginosa или Chromobacterium violaceum.
8.8.3. Микрообъемными тест-системами около 30% штаммов B. thailandensis идентифицируются некорректно как B. pseudomallei. По спектру биохимической активности B. thailandensis практически идентична B. pseudomallei за исключением способности ассимилировать L-арабинозу, в связи с чем результаты теста на утилизацию арабинозы следует учитывать с повышенным вниманием.
8.8.4. Автоматические системы биохимической идентификации ошибочно идентифицируют возбудителей сапа и мелиоидоза в 15% случаев. Штаммы B. mallei могут ложно определяться как B. cepacia и Stenotrophomonas maltophilia, а B. pseudomallei - как виды комплекса B. cepacia, реже - как C. violaceum, P. aeruginosa, P. fluorescens, P. alcaligenes, Aeromonas salmonicida, Shewanella putrefaciens, Comamonas testosterone и Sphingomonas paucimobilis.
8.8.5. У штаммов B. pseudomallei, некорректно идентифицированных как B. cepacia, в 97% случаев присутствует сочетание активной D-целлобиазы с отрицательными результатами одного или более тестов на активность L-пролинариламидазы, тирозинариламидазы и
.8.8.6. Автоматические системы биохимической идентификации, не содержащие в перечне идентифицируемых видов B. thailandensis, идентифицируют этот микроорганизм как B. pseudomallei.
8.9. Идентификация возбудителей мелиоидоза и сапа с использованием масс-спектрометрического профилирования клеточных белков. Времяпролетная масс-спектрометрия с матрично-активированной лазерной десорбцией/ионизацией позволяют существенно сократить время и повысить эффективность проведения диагностических исследований. Коммерческие стандартные конфигурации идентификационных баз данных для идентификации микроорганизмов с помощью масс-спектрометрии в референс-центре по мониторингу за мелиоидозом и сапом, а также в центрах верификации диагностической деятельности <19> дополнены референсными масс-спектрами суммарных клеточных белков B. pseudomallei и B. mallei, что обеспечивает близкую к 100% корректность идентификации изолятов патогенных буркхольдерий.
--------------------------------
8.9.1. Культуры возбудителей мелиоидоза и сапа для проведения масс-спектрометрии следует выращивать на агаре Luria не более 24 часов при 37 °C; экстракция белков для масс-спектрометрического профилирования проводится смесью муравьиной кислоты и ацетонитрила после обработки этанолом <20>.
--------------------------------
<20> Раздел 5.1 МР 4.2.0089-14 "Использование метода времяпролетной масс-спектрометрии с матрично-активированной лазерной десорбцией/ионизацией (MALDI-ToF MS) для индикации и идентификации возбудителей I - II групп патогенности", утвержденных руководителем Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации 24.04.2014.
8.10. МФА и РНГА. Для идентификации возбудителей мелиоидоза и сапа используются наборы реагентов для выявления B. pseudomallei и B. mallei, зарегистрированные в установленном порядке (приложение 6 к настоящим МУ). Исследования проводят в соответствии с инструкциями по применению диагностических препаратов.
8.11. Идентификация возбудителей мелиоидоза и сапа с использованием молекулярно-генетических методов. Для идентификации возбудителей мелиоидоза и сапа методом ПЦР используются наборы реагентов для выявления ДНК B. pseudomallei и B. mallei, зарегистрированные в установленном порядке (приложение 6 к настоящим МУ). Постановку ПЦР и учет результатов проводят в соответствии с методическими указаниями <21> и согласно инструкциям по использованию наборов реагентов.
--------------------------------
<21> МУ 1.3.2569-09 "Организация работы лабораторий, использующих методы амплификации нуклеиновых кислот при работе с материалом, содержащим микроорганизмы I - IV групп патогенности", утвержденных руководителем Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации 22.12.2009.
индикации и лабораторной диагностики мелиоидоза и сапа
9.1. Этап I (с момента поступления материала на исследование):
- приготовление мазков, окраска фиксированных мазков по Граму и иммуноглобулинами диагностическими флуоресцирующими мелиоидозными или сапными моноклональными;
- постановка ПЦР;
- постановка серологических реакций для обнаружения антигенов и специфических антител к возбудителям сапа и мелиоидоза;
- заражение биопробных животных (золотистые хомяки или морские свинки подкожно в область бедра или внутрибрюшинно);
- посев на плотные и жидкие питательные среды с 4% глицерина (кровь, пунктаты лимфоузлов, полостные экссудаты, цереброспинальная жидкость);
- посев на плотные и жидкие питательные среды с 4% глицерина и ингибиторами посторонней микрофлоры (мокрота, содержимое абсцессов, отделяемое язв, рвотные массы, моча, секционный материал).
9.2. Этап II (2 - 24 часа от начала исследования):
- учет результатов ПЦР и серологических реакций;
- выдача предварительного положительного ответа на основании наличия в мазках нативного материала мелких полиморфных грамотрицательных палочек, их специфического свечения при окраске мазка иммуноглобулинами диагностическими флуоресцирующими мелиоидозными или сапными моноклональными, положительного результата ПЦР.
9.3. Этап III (24 - 72 часа от начала исследования) <22>:
--------------------------------
<22> Скорость роста возбудителя сапа значительно ниже, чем у возбудителя мелиоидоза, в связи с чем может потребоваться продление до 14 суток инкубации первичных посевов материала проб, предварительно положительных на B. mallei по результатам экспресс- и ускоренных тестов.
- просмотр посевов нативного материала на плотных питательных средах;
- бактериоскопия мазков из подозрительных колоний (окраска по Граму и иммуноглобулинами диагностическими флуоресцирующими мелиоидозными или сапными моноклональными);
- постановка ПЦР с материалом подозрительных колоний;
- отсев подозрительных колоний на плотные питательные среды с 4% глицерина для накопления культуры;
- подтверждение предварительного положительного ответа на основании наличия характерного роста на плотных питательных средах, наличия специфического свечения при окраске мазка из колонии иммуноглобулинами диагностическими флуоресцирующими мелиоидозными или сапными моноклональными, положительного результата ПЦР с материалом изолированной культуры.
9.4. Этап IV (4 - 7 суток от начала исследования):
Предварительную идентификацию выделенной культуры проводят по следующим тестам:
- характер роста на плотных питательных средах с 4% глицерина;
- морфология клеток, характер окраски по Граму и иммуноглобулинами диагностическими флуоресцирующими мелиоидозными или сапными моноклональными;
- агглютинация культур специфической мелиоидозной или сапной сывороткой;
- выявление видоспецифичных ДНК-мишеней методом ПЦР;
- вскрытие павших биопробных животных, посев органов и крови на плотные питательные среды, приготовление и просмотр мазков-отпечатков органов, постановка ПЦР с суспензиями органов.
9.5. Этап V (7 - 12 суток от начала исследования):
- учет результатов идентификации культур;
- просмотр посевов материала от павших биопробных животных;
- вскрытие забитых биопробных животных, при наличии характерных патоморфологических изменений посев органов и крови на плотные питательные среды, приготовление и просмотр мазков-отпечатков органов, постановка ПЦР с суспензиями органов;
- выдача окончательного положительного ответа на основании выделения чистой культуры мелиоидозного или сапного микробов из посевов нативного материала, результатов идентификации выделенных культур по фенотипическим признакам, положительных результатов серологических реакций, наличия ДНК возбудителей, а также на основании выделения идентичных культур от павших или забитых лабораторных животных.
9.6. Этан VI (12 - 14 суток от начала исследования):
- выдача окончательного положительного ответа "мелиоидоз неуточненный A 24.3 (или A 24.4)" <23> при наличии положительных результатов ПЦР с использованием не менее двух диагностических наборов, детектирующих отличающиеся видоспецифические мишени, наличии в эпиданамнезе посещения эндемичных по мелиоидозу регионов мира, при отсутствии в парных сыворотках больного нарастания титров специфических антител, отсутствии специфического роста на питательных средах при посеве нативного материала; для выдачи окончательного положительного ответа "сап A 24.0" настоящий пункт не предусмотрел <24>;
--------------------------------
<23> Пункт 23 приложения 11 СанПиН 3.3686-21.
<24> При мелиоидозе в 30% случаев отсутствует сероконверсия, эффективность культурального метода выделения возбудителя из исследуемого клинического материала не превышает 60%.
- выдача отрицательного ответа на основании отсутствия специфического роста на питательных средах при посеве нативного материала и органов забитых биопробных животных, отрицательных результатов ПЦР, отрицательных результатов иммуносерологических реакций с нативным материалом, отрицательных результатов биопробы, отсутствия в парных сыворотках больного нарастания титров специфических антител к возбудителям мелиоидоза или сапа.
мелиоидоза и сапа
10.1. Организация и проведение лабораторной диагностики мелиоидоза и сапа осуществляется в соответствии с требованиями к проведению мероприятий по предупреждению распространения инфекционных болезней на территории Российской Федерации <25>.
--------------------------------
<25> Пункты 578 - 588 СанПиН 3.3686-21.
10.2. Отбор проб клинического материала от больных с подозрением на мелиоидоз или сап, а также секционного материала от умерших людей осуществляют МО <26>.
--------------------------------
<26> Пункт 585 СанПиН 3.3686-21.
10.3. Диагностические исследования на сап или мелиоидоз и лабораторные исследования полевого материала, а также взаимодействие между организациями осуществляется в соответствии с законодательством Российской Федерации <27>.
--------------------------------
к МУ 4.2.3744-22
(рекомендуемый образец)
на исследование клинического материала
к МУ 4.2.3744-22
(рекомендуемый образец)
на исследование секционного материала
к МУ 4.2.3744-22
ЛАБОРАТОРНОЙ ДИАГНОСТИКИ МЕЛИОИДОЗА И САПА
к МУ 4.2.3744-22
к МУ 4.2.3744-22
ДИСКО-ДИФФУЗИОННЫМ МЕТОДОМ <28>
--------------------------------
<28> МУК 4.2.1890-04 "Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам", утвержденные руководителем Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации 04.03.2004.
Критерии интерпретации результатов определения
чувствительности B. pseudomallei. Пограничные значения
диаметров зон подавления роста (мм) на агаре Мюллера-Хинтона
к МУ 4.2.3744-22
ПРИ ПРОВЕДЕНИИ ЛАБОРАТОРНОЙ ДИАГНОСТИКИ МЕЛИОИДОЗА И САПА
1. Федеральный закон от 30.03.1999 N 52-ФЗ "О санитарно-эпидемиологическом благополучии населения".
2. Постановление Правительства Российской Федерации от 16.04.2012 N 317 "О лицензировании деятельности в области использования возбудителей инфекционных заболеваний человека и животных (за исключением случая, если указанная деятельность осуществляется в медицинских целях) и генно-инженерно-модифицированных организмов III и IV степеней потенциальной опасности, осуществляемой в замкнутых системах".
3. Постановление Главного государственного санитарного врача Российской Федерации от 04.02.2016 N 11 "О представлении внеочередных донесений о чрезвычайных ситуациях санитарно-эпидемиологического характера".
4. Постановление Главного государственного санитарного врача Российской Федерации от 11.05.2007 N 27 "О реализации Международных медико-санитарных правил (2005)".
5. СанПиН 3.3686-21 "Санитарно-эпидемиологические требования по профилактике инфекционных болезней".
6. СанПиН 2.1.3684-21 "Санитарно-эпидемиологические требования к содержанию территорий городских и сельских поселений, к водным объектам, питьевой воде и питьевому водоснабжению населения, атмосферному воздуху, почвам, жилым помещениям, эксплуатации производственных, общественных помещений, организации и проведению санитарно-противоэпидемических (профилактических) мероприятий".
7. СП 2.1.3678-20 "Санитарно-эпидемиологические требования к эксплуатации помещений, зданий, сооружений, оборудования и транспорта, а также условиям деятельности хозяйствующих субъектов, осуществляющих продажу товаров, выполнение работ или оказание услуг".
8. Приказ Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека от 01.12.2017 N 1116 "О совершенствовании системы мониторинга, лабораторной диагностики инфекционных и паразитарных болезней и индикации ПБА в Российской Федерации".
9. МУК 4.2.2316-08 "Методы контроля бактериологических питательных сред".
10. МУ 1.3.2569-09 "Организация работы лабораторий, использующих методы амплификации нуклеиновых кислот при работе с материалом, содержащим микроорганизмы I - IV групп патогенности".
11. МУ 4.2.2495-09 "Определение чувствительности возбудителей опасных бактериальных инфекций (чумы, сибирской язвы, холеры, туляремии, бруцеллеза, сапа и мелиоидоза) к антибактериальным препаратам".
12. МУК 4.2.1890-04 "Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам".
13. МР 4.2.0089-14 "Использование метода времяпролетной масс-спектрометрии с матрично-активированной лазерной десорбцией/ионизацией (MALDI-ToF MS) для индикации и идентификации возбудителей I - II групп патогенности".
Вернуться в "Каталог нормативных документов"
Источник информации: https://internet-law.ru/documents/prod/metodicheskie-ukazaniya/1/mu_4.html
На правах рекламы:
|
||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||