"МУК 4.1.2158-07. 4.1. Методы контроля. Химические факторы. Определение остаточных количеств антибиотиков тетрациклиновой группы и сульфаниламидных препаратов в продуктах животного происхождения методом иммуноферментного анализа. Методические указания"
(утв. Роспотребнадзором 18.01.2007)

1. Методические указания разработаны ГУ НИИ питания РАМН: Тутельян В.А. (руководитель), Хотимченко С.А., Шевелева С.А., Ефимочкина Н.Р., Барбер Н.В., Григорьев А.М.; ФГУЗ "Центр государственного санитарно-эпидемиологического надзора в г. Москве" (Иванова Л.И., Кругликова Т.А.).

2. Рекомендованы к утверждению Комиссией по государственному санитарно-эпидемиологическому нормированию Российской Федерации.

3. Утверждены и введены в действие 18 января 2007 г. Руководителем Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации Г.Г. Онищенко.

4. Введены впервые.

1.1. Настоящие Методические указания устанавливают методы определения остаточных количеств антибиотиков тетрациклиновой группы и сульфаниламидных препаратов в пищевом сырье и пищевых продуктах животного происхождения (в мясе и мясопродуктах; в птице и птицепродуктах; в молоке и молочных продуктах) на основе твердофазного иммуноферментного анализа.

1.2. Методические указания предназначены для органов и учреждений Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, осуществляющих контроль качества и безопасности продовольственного сырья и пищевых продуктов, а также могут быть использованы для проведения производственного контроля другими испытательными лабораториями, аккредитованными в порядке, установленном Правительством Российской Федерации. Методические указания не могут быть применены для арбитражных исследований.

2.1. Среди контаминантов продовольственного сырья и пищевых продуктов важное место занимают остатки антимикробных ветеринарных препаратов, используемых для лечения и профилактики инфекционных заболеваний животных и птицы, в том числе антибиотики тетрациклиновой группы и сульфаниламидные препараты. При их поступлении в организм человека могут возникать аллергические реакции, дисбиотические изменения микрофлоры кишечника, а также происходит формирование антибиотикоустойчивых форм микроорганизмов.

Для определения остаточных количеств антибиотиков в пищевых продуктах в настоящее время в основном применяют микробиологические методы, которые являются сравнительно простыми и дешевыми, однако, отличаются недостаточной специфичностью результатов.

2.2. Для скрининга пищевых продуктов на загрязненность антибактериальными препаратами, в том числе сульфаниламидами, целесообразно использовать методы иммунохимического анализа, обеспечивающие высокую специфичность и точность, при этом предпочтительнее применять методы твердофазного иммуноферментного анализа (далее - ИФА), которые являются высокочувствительными.

2.3. При определении методом ИФА в соответствии с настоящими Методическими указаниями антибиотиков тетрациклиновой группы предел обнаружения их составляет от 0,0015 мг/кг до 0,15 мг/кг в зависимости от вида продукта; для сульфаниламидных препаратов - от 0,002 мг/кг до 0,02 мг/кг в зависимости от вида продукта.

3.1. Отбор пищевых образцов для исследования осуществляется в соответствии с требованиями ГОСТ 7269-79 "Мясо", ГОСТ 7202.0-74 "Мясо птицы", ГОСТ 3622-68 "Молоко и молочные продукты".

3.2. Отобранные образцы продуктов герметично упаковывают в полиэтиленовые мешки, стеклянные банки с притертыми крышками, маркируют и нумеруют. Образцы доставляют в лабораторию для анализа сразу же после отбора проб. В случае необходимости допускается хранить при температуре 4 +/- 2 °С в течение времени не более срока годности пищевых продуктов или замораживать до температуры минус 10 - 12 °С и хранить не более 2 недель.

3.3. К исследованию скоропортящихся образцов следует приступать в день их доставки в лабораторию.

Базовым принципом для количественного определения антибиотиков тетрациклиновой группы в пищевых продуктах является твердофазный конкурентный иммуноферментный анализ на полистироловых планшетах. Метод основан на конкуренции свободного антибиотика из исследуемых образцов и антибиотика, предварительно адсорбированного на твердой фазе (лунке планшета) в составе белкового конъюгата, за центры связывания специфичных к тетрациклинам антител во вносимом растворе. После отделения не связавшихся реагентов количество антител, прореагировавших с иммобилизованным антигеном, определяют с помощью вторичных антивидовых антител, меченных пероксидазой хрена. Количество связавшегося с антителами конъюгата вторичных антител определяют с помощью субстрат-хромогенной смеси. При этом количество определяемого антибиотика, содержащегося в исследуемом образце, обратно пропорционально регистрируемой оптической плотности продукта ферментативной реакции.

Для иммуноферментного определения тетрациклина могут быть использованы промышленно изготовленные наборы, метрологические характеристики которых не ниже указанных в настоящем документе после процедуры стандартизации их относительно данного метода.

Примечание. Набор рассчитан на проведение анализа в 2 повторностях: 42 исследуемых образца и 6 калибровочных проб (всего 96 определений на один планшет).

5.2.1. Специфичность метода

Метод анализа при использовании набора "Ридаскрин Тетрациклин" характеризуется показателем специфичности <*>, составляющим для:

Тетрациклина - 100%

Хлортетрациклина - 100%

Окситетрациклина - 10%

Миноциклина - 125%

Ролитетрациклина - 110%

Демеклоциклина - 35%

Доксициклина - 5%.

--------------------------------

<*> Гарантируется изготовителем.

5.2.2. Чувствительность метода

Предел обнаружения тетрациклина и хлортетрациклина в молоке - 0,0015 мг/кг, мясе - 0,006 мг/кг, окситетрациклина в молоке - 0,015 мг/кг, в мясе - 0,06 мг/кг.

Показатель извлекаемости составляет более 70%, в т.ч. в молоке - 75 +/- 5%, в мясе и мясопродуктах - 85 +/- 15%.

При искусственном загрязнении проб молока 5 мкг/л тетрациклина или 100 мкг/л окситетрациклина степень извлечения составляет 90 +/- 10%.

5.3.1. При проведении испытаний следует использовать реагенты и компоненты, входящие в один и тот же набор. Разбавление или замена реагентов, использование реагентов из набора с другим номером партии может привести к потере чувствительности или ошибке определения.

5.3.2. Хранить наборы следует при температуре в пределах от 2 до 8 °С. Категорически не допускается хранение при минусовой температуре и замораживание реагентов набора. Для хранения неиспользованных стрипов (лунок) их упаковывают в оригинальный фольгированный пакет вместе с имеющимся осушителем в плотно закрытом виде.

5.3.3. Следует избегать попадания прямых солнечных лучей на флакон с раствором хромогена из-за его светочувствительности.

5.3.4. В случае окрашивания раствора хромогена его применение для анализа не рекомендуется, поскольку окрашивание раствора хромогена является признаком порчи.

Стоп-реагент содержит в своем составе серную кислоту, поэтому следует избегать контакта стоп-реагента с кожей.

Отбор образцов для анализа ведется в соответствии с п. 3 данного документа. Образцы, предназначенные для анализа, должны храниться в холодильнике, в темном месте.

7.1.1. Подготовка проб молока

Молоко объемом 5 куб. см охладить до температуры 6 +/- 2 °С, перенести в центрифужную пробирку, центрифугировать при температуре 4 - 10 °С в течение 15 мин. при эффективности центрифугирования 4000 g <*>. Удалить верхний слой жира и перенести аликвоту обезжиренного молока в новую чистую пробирку. Смешать обезжиренное молоко с буфером N 1 в соотношении 1:10. Для анализа использовать 0,05 куб. см разведенного обезжиренного молока с буфером на 1 лунку планшета. Коэффициент разбавления - 10.

--------------------------------

<*> Эффективность центрифугирования измеряется в g и зависит от скорости и радиуса вращения (см. технический паспорт имеющейся центрифуги). Например, при использовании центрифуги ОПН-8 с угловым ротором эффективности 4000 g соответствует скорость вращения ротора около 7000 об./мин.

7.1.2. Подготовка проб мяса

7.1.2.1. Приготовление реагентов для пробоподготовки

7.1.2.2. Приготовление проб

Пробу мяса измельчить с использованием лабораторного гомогенизатора. Далее 5 г гомогенизированной пробы поместить в чистую центрифужную пробирку, смешать с 25 куб. см буфера Макллвейна и встряхивать в шейкере в течение 30 мин. Полученную суспензию охладить до температуры 15 °С и центрифугировать в течение 10 мин. при эффективности центрифугирования 4000 g. Отобрать пипеткой верхний слой в чистую пробирку и повторить с оставшейся пробой экстракцию с 25 куб. см буфера Макллвейна. После этого объединить супернатанты (50 куб. см) и профильтровать раствор через гофрированный фильтр.

7.1.2.3. Очистка раствора методом твердофазной экстракции

Из полученного по п. 7.1.2.2 фильтрата отобрать 5 куб. см и очистить раствор методом твердофазной экстракции на колонке RIDA(R) C18 следующим образом:

- предварительно колонку промывают 3 куб. см метанола (этанола) со скоростью 1 капля в секунду: при отсутствии устройства для твердофазной экстракции можно использовать разовый пластиковый шприц на 5 куб. см;

- промыть колонку 2 куб. см дистиллированной воды со скоростью 1 капля в секунду;

- пропустить через колонку 5 куб. см подготовленного раствора исследуемой пробы со скоростью 15 капель в минуту;

- промыть колонку 3 куб. см дистиллированной воды со скоростью 1 капля в секунду;

- удалить из колонки остатки жидкости и сушить колонку в токе воздуха или азота 2 мин.;

- адсорбированные на колонке вещества осторожно, со скоростью 15 капель в минуту, элюировать 2 куб. см 20 мМ раствора щавелевой кислоты в метаноле (этаноле) в чистую пробирку;

- элюат разбавить буфером N 1 в 10 раз (1:9), например, смешав 0,05 куб. см элюата и 0,45 куб. см буфера N 1. Раствор готов к испытанию в ИФА. Для анализа используют 0,05 куб. см раствора.

Перед использованием набора довести температуру всех реагентов до комнатной температуры в пределах 20 - 25 °С, а после использования охладить все оставшиеся реагенты до температуры 4 +/- 2 °С.

В процессе выполнения анализа нельзя допускать высыхания лунок планшета. На всех стадиях инкубации следует избегать воздействия прямого солнечного света. При инкубации планшета рекомендуется закрыть его непрозрачным экраном.

Все разведения реагентов и расчеты представлены для проведения анализа на одном планшете. Построение калибровочной кривой необходимо проводить для каждой серии определений.

7.2.1. Приготовление стандартных растворов

Подготовку стандартных растворов проводят только в стеклянной посуде, не допускается использование пластиковой посуды.

Для подготовки к использованию стандартных растворов тетрациклина концентраты растворов, входящие в состав набора, разбавляют буфером N 1 или буфером N 2 в нижеприведенных пропорциях. После разбавления необходимо тщательно перемешать готовые растворы:

Буферный раствор N 1 используется для разведения стандартных растворов при исследовании проб мяса и мясопродуктов, птицы и птицепродуктов.

Буферный раствор N 2 используется для разведения стандартных растворов при исследовании проб молока.

Перед использованием буферного раствора N 2, использующегося при исследовании проб молока, следует энергично перемешать раствор с помощью встряхивателя типа "вортекс".

Для каждой серии исследований следует готовить свежие стандартные растворы.

7.2.2. Подготовка моющего буферного раствора

7.2.3. Подготовка раствора антител

Раствор антител к тетрациклину (флакон с черной крышкой), входящий в состав набора "Ридаскрин", поставляется в готовом к употреблению виде. Перед употреблением достаточно вскрыть флакон.

7.2.4. Подготовка раствора конъюгата

Раствор конъюгата с ферментом (флакон с красной крышкой) также готов для использования. Перед употреблением достаточно открыть флакон.

7.2.5. Подготовка микротитровального планшета

Перед выполнением анализа из планшета следует извлечь необходимое количество стрипов. Остальные стрипы следует тщательно упаковать в фольгированный пакет вместе с осушителем, закрыть застежку пакета и поместить на хранение при температуре (4 +/- 2) °С.

Вставить в рамку планшета стрипы (лунки) в количестве, необходимом для выполнения всех запланированных определений в двух повторностях. Записать координаты лунок, предназначенных для стандартных растворов и подготовленных исследуемых растворов. Пример формы записи показан на рис. 1.

7.3.1. Добавить по 0,05 куб. см стандартных растворов и подготовленных растворов исследуемых образцов в соответствующие пары лунок.

7.3.2. Добавить по 0,05 куб. см раствора антител в каждую лунку, перемешать вручную легкими круговыми движениями рамки планшета по поверхности стола, избегая попадания смеси в соседние лунки, и оставить на инкубацию в течение 1 часа при комнатной температуре в пределах 20 - 25 °С.

7.3.3. Вылить жидкость из лунок, перевернув рамку планшета, и выбить капли жидкости, оставшиеся в лунках, путем энергичного троекратного постукивания рамки с лунками по столу, накрытому фильтровальной бумагой. Наполнить лунки 0,25 куб. см раствора фосфатного моющего буфера и снова удалить раствор из лунок. Выбить капли жидкости, как описано выше. Повторить процедуру промывки лунок раствором фосфатного буфера еще два раза.

7.3.4. Добавить в каждую лунку по 0,1 куб. см раствора конъюгата. Тщательно перемешать вручную и оставить на инкубацию в течение 15 мин. при комнатной температуре в пределах 20 - 25 °С.

7.3.5. Вылить жидкость из лунок, перевернув рамку, и тщательно выбить капли жидкости, оставшиеся в лунках, путем троекратного постукивания рамки с лунками по столу, накрытому фильтровальной бумагой. Наполнить лунки 0,25 куб. см раствора фосфатного буфера и снова опорожнить лунки. Выбить капли жидкости, как описано выше. Повторить процедуру промывки лунок раствором фосфатного буфера еще два раза.

7.3.6. Добавить по 0,05 куб. см субстрата и по 0,05 куб. см хромогена в каждую лунку. Тщательно перемешать и инкубировать при комнатной температуре в пределах 20 - 25 °С в течение 15 мин. в темноте.

7.3.7. Добавить в каждую лунку по 0,1 куб. см стоп-реагента и перемешать вручную. В течение 60 мин., не более, после добавления стоп-реагента измерить оптическую плотность в каждой лунке при 450 нм (бланк или нулевое считывание по воздуху), используя фотометр планшетный.

Примечание. Если величина оптической плотности, измеренной в лунке с нулевым стандартом, составляет значение ниже 0,6 - это может быть признаком порчи реагентов. В таком случае следует заменить реагенты и повторить процедуру.

По величинам относительного поглощения, вычисленным для стандартных растворов и соответствующим известным значениям концентрации тетрациклина в мкг/кг (мкг/л), строится калибровочная кривая в полулогарифмической системе координат. При правильно проведенном определении калибровочная кривая должна быть почти линейна в диапазоне 0,15 - 1,35 мкг/кг (рис. 2 - не приводится).

Концентрация тетрациклина в растворах исследуемых образцов в мкг/кг (или мкг/л) определяется по калибровочной кривой соответственно относительному поглощению, измеренному и вычисленному для этих растворов.

Для того, чтобы вычислить концентрацию тетрациклина в исследуемой исходной пробе, величину концентрации тетрациклина, полученную по калибровочной кривой, следует умножить на соответствующий коэффициент разбавления. При выполнении пробоподготовки и анализа в полном соответствии с приведенной методикой коэффициент разбавления имеет следующие значения:

Молоко - 10;

Мясо - 40.

Окончательный результат исследования выражают в мг/кг или мг/л, для чего величины, полученные в мкг/кг или мкг/л, делят на 1000.

9.1. За окончательный результат измерения принимают среднее арифметическое результатов двух параллельных определений. Окончательный результат округляют до второго десятичного знака.

9.2. Метрологические характеристики иммуноферментного метода определения антибиотиков тетрациклиновой группы в продуктах питания животного происхождения (молоке, мясе) - табл. 1.

9.3. Если расхождение результатов двух параллельных определений (сходимость и воспроизводимость) превышает требования по п. 9.2, то повторно проводят два новых параллельных определения.

Сущность метода и принципиальная схема определения сульфаметазина с помощью иммуноферментного анализа в основном соответствует описанию, приведенному в п. 4, для антибиотиков тетрациклиновой группы. Отличие состоит в использовании первичных антител захвата, адсорбированных на поверхности планшета, неконъюгированных вторичных анти-видовых антител и сульфаметазина, конъюгированного с пероксидазой. Дополнительно предусмотрена процедура качественного определения сульфаниламидных препаратов в мясных и молочных продуктах, а также метод экспрессного определения количества сульфаниламидов в молоке с использованием тест-системы "Ридаскрин Фаст Сульфаметазин".

В состав набора входят материалы и реагенты в количестве, достаточном для выполнения 96 определений (включая калибровку по стандартным растворам).

В состав набора входят материалы и реагенты в количестве, достаточном для выполнения 48 определений (включая калибровку по стандартным растворам).

Наборы "Ридаскрин Сульфаметазин" и "Ридаскрин Фаст Сульфаметазин".

Специфичность

Перекрестная чувствительность наборов реагентов наборов "Ридаскрин Сульфаметазин" и "Ридаскрин Фаст Сульфаметазин" составляет:

Чувствительность

Предел обнаружения сульфаметазина с помощью набора "Ридаскрин Сульфаметазин" составляет 0,001 мг/кг (мг/л). С учетом коэффициента разбавления предел обнаружения составляет 0,01 мг/л в молоке, 0,002 мг/кг - в мясе и субпродуктах.

Предел обнаружения сульфаметазина с помощью набора "Ридаскрин Фаст Сульфаметазин" составляет 0,005 мг/кг (мг/л). С учетом коэффициента разбавления предел обнаружения сульфаметазина в молоке с помощью набора "Ридаскрин Фаст Сульфаметазин" составляет 0,01 мг/кг (мг/л).

Извлекаемость

Для проб молока степень извлечения сульфаметазина составляет 99% (при коэффициенте вариации 4,7%).

Для проб мяса степень извлечения сульфаметазина составляет 95% (при коэффициенте вариации 4,9%).

Все рекомендации, приведенные в п. 5.3 для тест-наборов "Ридаскрин Тетрациклин", аналогичны для наборов "Ридаскрин Сульфаметазин" и "Ридаскрин Фаст Сульфаметазин".

11.1.1. Приготовление буфера N 1

Буфер N 1 входит в набор в виде концентрата (20х).

Перед выполнением исследования необходимо разбавить буфер N 1 дистиллированной водой в 20 раз, например, смешать 50 мл буфера и 950 мл дистиллированной воды. Рекомендуется разбавлять буфер в 1 этап.

Срок хранения разбавленного буфера нанесен на этикетку флакона с концентрированным буфером при условии хранения при температуре 4 +/- 2 °С.

11.1.2. Приготовление буфера N 2

Буфер N 2 используется для приготовления стандартных растворов сульфаметазина при анализе проб молока. Для приготовления буферного раствора N 2 к 1 мл концентрата буфера N 2 (флакон с белой крышкой) следует добавить 9 мл разбавленного буферного раствора N 1 (по п. 11.1.1) и тщательно перемешать (например, при помощи шейкера типа "Вортекс"). Мутность раствора не влияет на результат определения, однако осадок на дне флакона после перемешивания должен быть распределен в объеме раствора.

Отбор проб для анализа ведется в соответствии с разделом 3. Образцы, предназначенные для анализа, должны храниться в холодильнике, в темном месте. Перед анализом пробы должны быть тщательно перемешаны.

11.3.1. Обезжиренное молоко

Пробу обезжиренного молока смешать с буфером N 1, приготовленным в соответствии с п. 11.1.1, в соотношении 1:9. Например, смешать 0,05 куб. см молока и 0,45 куб. см буфера N 1.

Для анализа использовать 0,05 куб. см раствора на 1 лунку планшета.

11.3.2. Молоко с содержанием жира 1% и более

Пробу молока объемом 5 куб. см охладить до +8 °С, перенести в стеклянную центрифужную пробирку, центрифугировать при температуре в пределах 8 - 12 °С в течение 10 мин. при 3000 g (см. примечание к п. 7.1.1). При отсутствии центрифуги с охлаждением допускается охлаждение пробы перед центрифугированием до температуры 4 °С.

Удалить верхний слой жира и перенести аликвоту обезжиренного молока в новую чистую пробирку и смешать с буфером N 1 в отношении 1:9, например, смешать 0,05 куб. см молока и 0,45 куб. см буфера N 1. Для анализа использовать 0,05 куб. см раствора на 1 лунку планшета.

11.4.1. Приготовление реагентов для пробоподготовки

При исследовании образцов мяса для пробоподготовки необходимо подготовить следующие реагенты:

1. Этилацетат

2. Н-гексан

3. Ацетонитрил

4. Дистиллированная вода.

11.4.2. Пробоподготовка для качественного определения сульфаметазина

Исследуемую пробу мяса освободить от жировой ткани, взвесить 1 г мяса и добавить 10 куб. см буфера N 1, гомогенизировать пробу с использованием миксера или лабораторного гомогенизатора. Полученную пробу гомогенизированного мяса при комнатной температуре центрифугировать в течение 10-ти минут при 4000 g (см. примечание к п. 7.1.1). Отобрать супернатант с помощью пипетки Пастера (избегая попадания жира в пипетку). Для анализа использовать 0,05 куб. см супернатанта на лунку планшета.

11.4.3. Пробоподготовка для количественного определения сульфаметазина

Исследуемую пробу мяса освободить от жировой ткани и гомогенизировать пробу мяса с использованием лабораторного гомогенизатора. Далее 5 г гомогената поместить в чистую центрифужную пробирку, смешать с 20 куб. см 84%-го раствора ацетонитрила в воде и встряхивать на шейкере в течение 10 мин. Полученную суспензию центрифугировать при температуре 15 °С в течение 10 мин. при 3000 g. Разбавить 3 куб. см супернатанта с 3 куб. см дистиллированной воды. Добавить к раствору 4,5 куб. см этилацетата и встряхивать на шейкере в течение 10 мин. Центрифугировать раствор при температуре 15 °С в течение 10 минут при 3000 g. Этилацетатный слой перенести в другую пробирку и испарить экстракт досуха с помощью микроиспарителя.

Растворить сухой остаток в 1,5 куб. см разбавленного буфера N 1. Для обезжиривания раствора добавить в пробирку 1,5 куб. см гексана и встряхивать на шейкере в течение 5 мин. Центрифугировать раствор, как описано выше. С помощью пипетки Пастера удалить полностью гексановый слой. Для анализа использовать 0,05 куб. см оставшейся в пробирке водной фазы на лунку планшета.

Построение калибровочной кривой необходимо проводить для каждой серии определений при использовании стрипов (лунок) одного тест-набора.

11.5.1. Приготовление стандартных растворов

Для приготовления стандартных растворов сульфаметазина концентраты растворов, входящие в состав набора, следует разбавить готовым буфером N 1 или готовым буфером N 2 в нижеприведенных пропорциях. После разбавления необходимо тщательно перемешать готовые растворы. Для разбавления нельзя использовать пластиковую посуду, необходимо использовать только стеклянную посуду.

Для каждой серии исследований следует готовить свежие стандартные растворы.

11.5.1.1. Приготовление стандартных растворов при количественном определении сульфаметазина:

Буферный раствор N 1, приготовленный по п. 11.1.1, используется для разведения стандартных растворов при исследовании проб мяса и мясопродуктов, птицы и птицепродуктов.

Буферный раствор N 2, приготовленный по п. 11.1.2, используется только для разведения стандартных растворов при исследовании проб молока. Перед использованием буфера N 2 следует энергично перемешать раствор с помощью встряхивателя типа "вортекс".

11.5.1.2. Приготовление стандартных растворов при качественном определении сульфаметазина

При проведении качественного определения сульфаметазина используют только два стандартных раствора:

Стандарт 1: 0,05 куб. см концентрата N 1 смешивают с 0,45 куб. см буферного раствора - концентрация сульфаметазина - 0 мг/кг (отрицательный контроль).

Стандарт 4: 0,05 куб. см концентрата N 4, содержащего 9 мкг/л сульфаметазина, смешивают с 0,45 куб. см буферного раствора (положительный контроль).

11.5.2. Приготовление раствора конъюгата

Конъюгат сульфаметазина с ферментом (флакон с красной крышкой) поставляется в концентрированном виде. Поскольку разбавленный раствор конъюгата имеет ограниченную стабильность, следует готовить раствор непосредственно перед проведением анализа. Перед разбавлением концентрированного раствора конъюгата следует осторожно встряхнуть содержимое флакона.

Для приготовления готового к использованию раствора конъюгата следует разбавить концентрат конъюгата готовым буферным раствором N 1 в отношении 1:11 (например, смешать 200 мкл концентрата конъюгата с 2 мл готового буфера N 1 - данного количества раствора конъюгата достаточно для 4 стрипов (32 лунки)).

11.5.3. Приготовление раствора антител

Антитела к сульфаметазину (флакон с черной крышкой) поставляются в концентрированном виде. Поскольку разбавленный раствор антител имеет ограниченную стабильность, следует готовить раствор по потребности. Перед разбавлением концентрата антител необходимо осторожно встряхнуть содержимое флакона.

Для приготовления готового раствора антител следует разбавить концентрат готовым буферным раствором N 1 в отношении 1:11; например, смешать 200 мкл концентрата антител с 2 мл готового буфера N 1 - данного разведения достаточно для 4 стрипов (32 лунки).

Вставить в рамку планшета стрипы (лунки) в количестве, необходимом для выполнения всех запланированных определений. Записать координаты лунок, предназначенных для стандартных растворов и подготовленных исследуемых растворов. Пример формы записи приведен на рис. 3 - 4.

12.1. Добавить по 0,05 куб. см стандартных растворов и подготовленных растворов исследуемых образцов в соответствующие лунки.

12.2. Добавить по 0,05 куб. см разбавленного раствора конъюгата в каждую лунку.

12.3. Добавить по 0,05 куб. см раствора антител в каждую лунку, перемешать вручную, легкими круговыми движениями по поверхности стола, избегая попадания смеси в соседние лунки, и оставить на инкубацию в течение 2-х часов при комнатной температуре в пределах 20 - 25 °С.

12.4. Вылить жидкость из лунок, перевернуть рамку планшета и выбить капли жидкости, оставшиеся в лунках, путем энергичного троекратного постукивания рамки с лунками по столу, накрытому фильтровальной бумагой. Наполнить лунки 0,25 куб. см дистиллированной воды и снова опорожнить лунки. Выбейте капельки жидкости, как описано выше. Повторите процедуру промывки лунок дистиллированной водой еще два раза.

12.5. Добавить в каждую лунку по 0,05 куб. см субстрата и по 0,05 куб. см хромогена. Осторожно перемешать и инкубировать при комнатной температуре в пределах 20 - 25 °С в течение 30 мин. в темноте.

12.6. Добавить в каждую лунку по 2 капли (0,1 куб. см) стоп-реагента и перемешать вручную. В течение 60 мин. после добавления стоп-реагента измерить оптическую плотность в каждой лунке при 450 нм ("бланк" или нулевое считывание по воздуху), используя фотометр планшетный.

Примечание. При качественном анализе допускается использовать по одной лунке на каждую исследуемую пробу продукта и стандартного раствора.

Определение количества сульфаметазина в исследованных пробах проводится аналогично описанному в п. 8 определению количества антибиотиков тетрациклиновой группы.

Калибровочная кривая также строится в полулогарифмической системе координат и должна быть почти линейна в диапазоне концентраций сульфаметазина 1 - 27 мкг/кг (пример - рис. 5 - не приводится).

Для того, чтобы вычислить концентрацию сульфаметазина в исследуемой исходной пробе, величину концентрации сульфаметазина, полученную по калибровочной кривой, следует умножить на соответствующий коэффициент разбавления. При выполнении пробоподготовки и анализа в полном соответствии с приведенной методикой коэффициент разбавления имеет следующие значения:

Молоко - 10;

Мясо - 2.

За окончательный результат измерения принимают среднее арифметическое результатов двух параллельных определений. Окончательный результат округляют до второго десятичного знака.

При качественном определении сульфаметазина результат определяется как положительный или отрицательный. Результат интерпретируется как отрицательный (концентрация сульфаметазина в исследуемом образце меньше 0,01 мг/кг), если оптическая плотность, измеренная в лунке с пробой, больше, чем порог интерпретации.

Порог интерпретации результата определяется как произведение оптической плотности лунки со стандартом N 4 на коэффициент, равный 1,2 (коэффициент 1,2 отражает потери сульфаметазина при упрощении пробоподготовки).

Результат интерпретируется как положительный (концентрация сульфаметазина в исследуемом образце больше 0,01 мг/кг), если оптическая плотность, измеренная в лунке с пробой, меньше, чем порог интерпретации.

14.1.1. Приготовление буфера N 1

Рекомендации по приготовлению буфера N 1 аналогичны приведенным в п. 11.1.1.

Отбор проб для анализа ведется в соответствии с п. 3. Образцы, предназначенные для анализа, должны храниться в холодильнике, в темном месте. Перед анализом пробы должны быть тщательно перемешаны.

14.3.1. Обезжиренное молоко

Пробу обезжиренного молока смешать с буфером N 1, приготовленным в соответствии с п. 11.1.1 в соотношении 1:1. Например, смешать 0,5 куб. см молока и 0,5 куб. см буфера N 1. Для анализа использовать 0,05 куб. см раствора на 1 лунку планшета.

14.3.2. Молоко с содержанием жира 1% и более

Пробу молока объемом 5 куб. см охладить до температуры 8 °С, перенести в стеклянную центрифужную пробирку, центрифугировать при температуре 8 - 12 °С в течение 10 мин. при 3000 g (см. примечание к п. 7.1.1). При отсутствии центрифуги с охлаждением допускается предварительное охлаждение пробы перед центрифугированием до температуры 4 °С.

Удалить верхний слой жира и перенести аликвоту обезжиренного молока в новую чистую пробирку и смешать с буфером N 1 в соотношении 1:1. Например, смешать 0,5 куб. см молока и 0,5 куб. см буфера N 1. Для анализа использовать 0,05 куб. см раствора на 1 лунку планшета.

14.3.3. Молоко сырое

Пробу молока объемом 5 куб. см охладить, центрифугировать и удалить верхний слой жира согласно п. 11.3.2, после чего перенести аликвоту обезжиренного молока в новую чистую пробирку и смешать с буфером N 1 в соотношении 1:3. Например, смешать 0,1 куб. см молока и 0,3 куб. см буфера N 1. Для анализа использовать 0,05 куб. см раствора на 1 лунку планшета.

Построение калибровочной кривой необходимо проводить для каждой серии измерений в отдельности.

14.4.1. Приготовление стандартных растворов при количественном определении сульфаметазина с использованием набора "Ридаскрин Фаст Сульфаметазин"

Для приготовления стандартных растворов сульфаметазина концентраты растворов, входящие в состав набора, следует разбавить буферным раствором N 2 в нижеприведенных пропорциях. После разбавления необходимо тщательно перемешать готовые растворы. Для разбавления необходимо использовать только стеклянную посуду, нельзя использовать пластиковую посуду.

Для каждой серии исследований следует готовить свежие стандартные растворы:

Вставить в рамку планшета стрипы (лунки) в количестве, необходимом для выполнения всех запланированных определений. Записать координаты лунок, предназначенных для стандартных растворов и подготовленных исследуемых растворов. Пример формы записи приведен на рис. 6.

14.3.1. Добавить по 0,05 куб. см стандартных растворов и подготовленных растворов исследуемых образцов в соответствующие лунки планшета.

14.3.2. Добавить по 0,05 куб. см раствора конъюгата в каждую лунку.

14.3.3. Осторожно, избегая образования пены, перемешать раствор антител, встряхнув несколько раз флакон, после чего добавить по 0,05 куб. см раствора антител в каждую лунку, перемешать вручную, легкими круговыми движениями по поверхности стола, избегая попадания смеси в соседние лунки, и оставить на инкубацию в течение 10 мин. (+/- 1 мин.) при комнатной температуре в пределах 20 - 25 °С.

14.3.4. Вылить жидкость из лунок, перевернуть рамку планшета и выбить капли жидкости, оставшиеся в лунках, путем энергичного троекратного постукивания рамки с лунками по столу, накрытому фильтровальной бумагой. Наполнить лунки 0,25 куб. см готового буфера N 1 и снова опорожнить лунки. Выбить капли жидкости, как описано выше. Повторить процедуру промывки буфером N 1 еще два раза.

14.3.5. Добавить в каждую лунку по 2 капли (0,1 куб. см) раствора хромогена/субстрата. Осторожно перемешать, как описано в п. 14.3.3, и инкубировать при комнатной температуре в пределах 20 - 25 °С в течение 5 мин. (+/- 0,5 мин.) в темноте. Не встряхивать планшет во время инкубации.

14.3.6. Добавить в каждую лунку по 2 капли (0,1 куб. см) стоп-реагента и перемешать вручную. В течение 10 мин. после добавления стоп-реагента измерить оптическую плотность в каждой лунке при длине волны 450 нм ("бланк" или нулевое считывание по воздуху), используя фотометр планшетный.

Определение количества сульфаметазина в исследованных пробах проводится аналогично описанному в п. 8 определению тетрациклина.

Калибровочная кривая также строится в полулогарифмической системе координат и должна быть почти линейна в диапазоне концентраций сульфаметазина 0,005 - 0,045 мг/кг (пример - рис. 7 - не приводится).

Для того, чтобы определить количество сульфаметазина в исследуемой исходной пробе, величину концентрации сульфаметазина, полученную по калибровочной кривой, следует умножить на соответствующий коэффициент разбавления. При выполнении пробоподготовки и анализа в соответствии с приведенной методикой коэффициент разбавления имеет следующие значения:

Обезжиренное молоко - 2

Молоко с массовой долей жира 1% и более - 2

Сырое молоко - 4.

15.1. За окончательный результат измерения принимают среднее арифметическое число результатов двух параллельных определений. Окончательный результат округляют до второго десятичного знака.

15.2. Метрологические характеристики иммуноферментного метода определения сульфаниламидных препаратов в продуктах питания животного происхождения (молоке, мясе) изложены в табл. 2.

15.3. Если расхождение результатов двух параллельных определений (сходимость и воспроизводимость) превышает требования по п. 15.2, то повторно проводят два новых параллельных определения.