Обозначения: ЧГ - частичный гемолиз, ПГ - полный гемолиз.
Затем в пробирки добавляют физраствор до 0,60 мл общего объема жидкости, после чего в каждую пробирку вносят по 0,40 мл гемолитической системы.
Штатив с пробирками встряхивают и помещают в водяную баню при температуре 37 - 38 °C на 10 мин.
Штатив с пробирками извлекают из бани и немедленно проводят учет результатов реакции в проходящем свете.
Примечание. Для удобства в работе и получения более точной дозировки вначале можно приготовить необходимые разведения комплемента в десятикратных объемах. Для этого в дополнительный ряд пробирок вносят комплемент, разведенный 1:20, в дозах 0,2; 0,4; 0,6 и т.д. до 2,0 мл и добавляют в каждую пробирку недостающее до 2,0 мл количество физраствора, то есть соответственно 1,8; 1,6; 1,4 мл и т.д. Из каждой пробирки дополнительного ряда переносят по 0,2 мл жидкости в соответствующую пробирку ряда для титрования (из первой пробирки - в первую, из второй - во вторую и т.д.). Данный перенос жидкости можно выполнять аппаратом Флоринского.
Затем в пробирки добавляют физраствор по 0,4 мл и далее продолжают работу как описано выше.
Титром комплемента считают наименьшее его количество (наибольшее разведение), при котором в течение 10 мин. при температуре 37 - 38 °C наступает полный гемолиз 0,2 мл 23% взвеси эритроцитов барана в присутствии 0,2 мг гемолитической сыворотки в общем объеме жидкости 1,0 мл. В примере, представленном в таблице, титр комплемента равен 0,10.
В реакцию берут комплемент в дозе, большей его титра на один интервал (например, при титре 0,10 берут 0,12).
Количество комплемента для постановки реакции определяют по формуле:
, гдеX - количество основного раствора комплемента, необходимое для постановки реакции, мл;
Д - доза комплемента, большая его титра на один интервал, мл;
П - количество пробирок в реакции;
20 - кратность разведения комплемента при титрации.
Например: в реакции должно быть 200 пробирок, титр комплемента (по табл.) равен 0,10. Следовательно, количество основного раствора комплемента для постановки реакции равно:
![]() Необходимое количество рабочего раствора комплемента для постановки реакции равно 40 мл (по 0,2 мл рабочего раствора в каждую из 200 пробирок), отсюда - к 1,2 мл основного раствора комплемента следует добавить 38,8 мл физраствора.
4.2. Постановка реакции
Каждую пробу инактивированной сыворотки крови в разведении 1:10 исследуют в двух рядах пробирок с антигеном и без антигена. Для этого в первый и второй ряд пробирок штатива вносят по 0,02 мл испытуемой сыворотки и добавляют по 0,18 мл физраствора, затем в пробирки первого ряда вносят по 0,2 мл рабочего раствора антигена, в пробирки второго ряда - по 0,2 мл физраствора.
Одновременно ставят следующие контроли: позитивная и негативная сыворотки в разведении 1:10 с антигеном и без антигена, антиген без сыворотки, антиген без сыворотки и комплемента, гемсистема с физраствором. Штатив с пробирками встряхивают, и во все пробирки, за исключением пробирки контроля без комплемента, вносят по 0,2 мл рабочего раствора комплемента. Штатив встряхивают и помещают в водяную баню при температуре 37 - 38 °C на 20 мин.
Затем во все пробирки вносят по 0,4 мл гемсистемы, встряхивают и вновь помещают в водяную баню при той же температуре на 20 мин.
Штатив с пробирками извлекают из бани и оставляют при температуре 4 - 8 °C на 14 - 16 час.
4.3. Учет и оценка результатов реакции
Реакцию учитывают по степени гемолиза эритроцитов в крестах, определяемых по шкале гемолиза эритроцитов:
"++++" - полная задержка гемолиза эритроцитов (0% гемолиза);
"+++" - гемолиз 25% эритроцитов;
"++" - гемолиз 50% эритроцитов;
"+" - гемолиз 75% эритроцитов;
"-" - полный гемолиз эритроцитов (100%).
Учитывают результаты РСК проб сыворотки крови в пробирках без антигена. При любой степени задержки гемолиза в пробирке без антигена проба сыворотки крови не учитывается и подлежит повторному исследованию.
Реакцию считают положительной при задержке гемолиза в "+++" или "++++", и сомнительной при реакции в "++". Реакция считается отрицательной при задержке гемолиза в "+" или полном гемолизе эритроцитов. Кровь от животных с сомнительной реакцией исследуют повторно через 2 - 3 недели. При этом животных неблагополучных по паратуберкулезу хозяйств, с сывороткой крови которых получен дважды сомнительный результат РСК, считают положительно реагирующими, а благополучных - отрицательно.
Результаты РСК отмечают в ведомости проб сыворотки крови словами: положительная, отрицательная или сомнительная. В случае получения положительного результата РСК дальнейшие мероприятия проводятся в соответствии с п. 3.3, 5.1.1 и 5.2.1 Правил по профилактике и ликвидации паратуберкулеза животных.
Патологоанатомические изменения при паратуберкулезе обнаруживаются преимущественно в заднем участке тонкого отдела кишечника, реже в толстых кишках, а также в мезентериальных лимфатических узлах.
Степень патологических изменений не всегда соответствует тяжести клинического проявления болезни, а при наличии изменений возбудитель не всегда обнаруживается при бактериоскопическом исследовании материала. Возможны резко выраженные патологические изменения у животных, не имеющих клинических признаков болезни.
5.1. У крупного рогатого скота патологические изменения находят, главным образом, в заднем отрезке тощей и подвздошной кишках. Стенки кишок плотные, утолщены, просвет сужен, на разрезе выступает выраженная продольная и поперечная складчатость слизистой оболочки, отдельные складки гиперемированы, на других поверхность может быть бугристая, покрыта вязкой слизью. В кишках содержится небольшое количество желтоватой жидкости, пищевых масс почти нет. Илеоцекальная заслонка набухшая, темно-вишневого или багрово-красного цвета. В слепой кишке изменения выражены слабее, ободочная кишка поражается редко, в прямой кишке изменений нет. Мезентериальные лимфатические узлы и лимфатические узлы области илеоцекального соединения увеличены, набухшие, на разрезе влажные. Поверхность разреза бело-желтая. Иногда наблюдаются отеки серозной оболочки кишечника и брыжейки. Лимфатические сосуды утолщены.
5.2. У овец и коз в тощей и подвздошной кишках утолщение стенки и складчатость слизистой оболочки отмечается непостоянно, изменения могут быть выражены очень слабо. Серозные оболочки кишечника и брыжейки могут быть отечны, а лимфатические сосуды плотные, в виде тяжей. Мезентериальные лимфатические узлы увеличены, на разрезе сочные, белого или желтовато-белого цвета. В лимфатических узлах могут быть инкапсулированные очаги, иногда обызвествленные.
5.3. У верблюдов изменения сходны с таковыми у крупного рогатого скота, но могут быть более распространенными и тяжелыми. Наблюдается атрофия тонкого отдела кишечника, особенно двенадцатиперстной кишки, стенка которой сильно истончена. Вместе с тем, отмечаются очаговые утолщения стенки тонких кишок и диффузное утолщение стенки всего толстого отдела кишечника. В патологический процесс вовлекаются сычуг и сетка.
Мезентериальные лимфатические узлы сильно увеличены (до размера кулака взрослого человека). У отдельных животных обнаруживают изменения на слизистой оболочке глоточного кольца и гортани, на слизистой сетки в виде плотных узелков. Подчелюстные, заглоточные и паховые лимфатические узлы могут быть также сильно увеличены. В селезенке под капсулой и в толще паренхимы обнаруживают большое количество плотных узелков серо-белого цвета. Печень несколько увеличена, глинистого цвета. Селезенка и печень могут быть пронизаны тяжами.
6.1. Для прижизненного бактериоскопического исследования готовят по 4 - 6 мазков из комочков слизи и обрывков слизистой оболочки кишечника, обнаруживаемых в фекалиях животных, подозреваемых в заболевании.
От убитых или павших животных готовят по 4 - 6 мазков из участков кишечника или мезентериальных лимфоузлов, имеющих изменения, сходные с паратуберкулезными.
6.2. Мазки подсушивают на воздухе, фиксируют над пламенем горелки и окрашивают по методу Циля-Нильсена. Микобактерии паратуберкулеза в мазках представляют собой мелкие тонкие палочки красного цвета, располагающиеся кучками, частоколами по три и более.
6.3. При обнаружении хотя бы в одном из мазков красных палочек характерного строения и расположения, результаты бактериоскопии считают положительными.
В случае отсутствия в мазках красных палочек, или при обнаружении единичных, отдельно лежащих палочек, результаты бактериоскопии считают отрицательными.
Лабораторный диагноз на паратуберкулез ставят на основании положительных результатов бактериоскопического и гистологического исследования. При необходимости проводят бактериологическое исследование.
7.1. Кусочки лимфатических узлов и отдельно соскобы (ткань) слизистой оболочки и подслизистого слоя кишечника в количестве 4 - 5 г измельчают ножницами на кусочки по 2 - 3 мм, помещают в разные стерильные ступки, покрытые стерильной, пергаментной бумагой. Лимфатические узлы заливают 3% раствором серной кислоты в соотношении 1:10, а слизистую оболочку кишечника 6% раствором этой же кислоты и выдерживают 10 - 15 минут. Затем раствор кислоты сливают, а материал заливают в зависимости от концентрации серной кислоты на 5 или 10 минут соответственно стерильным физиологическим раствором в таком же объеме. Физиологический раствор сливают, кусочки материала растирают и суспендируют в небольшом количестве стерильного физиологического раствора.
Материал высевают на одну из следующих питательных сред с добавлением 2% фактора роста (экстракта из M. phlei): модифицированную казеиновую среду Дюбо-Смита, яичные среды Петраньяни, Левенштейна-Йенсена и ФАСТ-ЗЛ. Посевы выдерживают в термостате при 38 +/- 0,5 °C в течение 3 мес.
При сильном обсеменении тканей M. paratuberculosis рост возбудителя появляется через 18 - 20 суток, при слабом - через 45 - 90. Культуры вырастают в виде мельчайших плоских колоний светло-кремового или светло-желтого цвета с неровными краями. В дальнейшем они увеличиваются и принимают бугристый вид.
Для идентификации выделенную культуру высевают на вышеуказанные среды с фактором роста и без него. Возбудитель паратуберкулеза в первых генерациях размножается на питательных средах только в присутствии фактора роста.
Микобактерии паратуберкулеза не патогенны для лабораторных животных.
7.2. Питательные среды для бактериологического исследования.
Приготовление спиртового экстракта M. phlei по методу Смита (модификация ВГНКИ)
M. phlei выращивают на синтетической питательной среде Сотона или 2А в течение 10 - 14 суток до получения пышного роста на поверхности среды. Затем культуру отделяют от жидкой части среды путем пропускания через двойной бумажный фильтр, промывают 2 - 3 раза стерильной дистиллированной водой, отжимают фильтровальной бумагой, обрабатывают в аппарате Коха 30 мин. при 80 °C и подсушивают в термостате и течение 10 - 12 часов.
Высушенную культуру микобактерий в количестве 20 г помещают в стерильную ступку и тщательно растирают, затем приливают 150 мл этилового спирта. Полученную смесь переливают в круглодонную колбу и проводят спиртовую экстракцию фактора роста (микобактина) кипячением на водяной бане с обратным холодильником. Полученный экстракт (примерно 100 - 130 мл) ярко-желтого цвета сливают в сборную колбу, а к биомассе дважды приливают по 150 мл спирта и отгонку повторяют. Полученный экстракт (300 - 350 мл) оставляют на ночь для осаждения, на следующий день надосадочную жидкость пропускают через бумажный фильтр и сливают в колбу. Затем проводят отгонку спирта из экстракта путем кипячения в водяной бане с прямым холодильником. Полученную вязкую красновато-оранжевую жидкость (объемом примерно 3 - 6 мл) смешивают с 50% раствором глицерина из расчета: к 2 мл "концентрата" приливают 40 мл глицерина. Устанавливают pH - 7,6, жидкость прогревают в кипящей водяной бане 10 мин., затем горячий раствор переливают в делительную воронку и оставляют на ночь.
На следующий день из делительной воронки сливают нижнюю светлую часть жидкости (pH - 7,0), разливают в ампулы и стерилизуют при 120 °C в течение 20 мин. Экстракт (микобактин) хранится длительное время.
Синтетическая среда Сотона (ингредиенты и приготовление)
Аспарагин - 5 г
Аммоний лимоннокислый двузамещенный - 2 г
Калий фосфорнокислый двузамещенный - 5 г
Магний сернокислый - 0,5 г
Железо сернокислое закисное - 0,05 г
Глицерин - 50 мл
Лимонная кислота - 4 г
Цинк сернокислый - 0,1 г
Дистиллированная вода - до 1 л
В дистиллированной воде, подогретой до 70 - 80 °C, последовательно растворяют аспарагин, аммоний лимоннокислый двузамещенный, калий фосфорнокислый двузамещенный, сернокислый магний, железо сернокислое закисное, глицерин. Затем добавляют водный 25% раствор аммиака до pH - 7,0 и кипятят 1 час, после чего добавляют лимонную кислоту и сернокислый цинк, аммиаком устанавливают pH 7,2 - 7,3. Питательную среду охлаждают до 50 °C, пропускают через бумажный фильтр, разливают в 0,5 литровые флаконы и стерилизуют при 120 °C в течение 30 мин.
Среда 2А (ингредиенты и приготовление)
Аспарагин - 5 г
Сернокислая магнезия - 0,5 г
Калия фосфат двузамещенный - 1,5 г
Цитрат железа - 0,05 г
Цитрат натрия - 1,5 г
Глюкоза - 5 г
Глицерин - 50 г
Крахмал - 0,1 г
Нитрат аммония - 1,5 г
Дистиллированная вода - до 1000 мл
Вещества растворяют в дистиллированной воде, подогретой до температуры 60 - 70 °C, в произвольном порядке, устанавливают pH - 5,6 - 5,8, среду стерилизуют при 120 °C в течение 30 мин.
Модифицированная казеиновая питательная среда Дюбо-Смита
а) Состав среды:
Однозамещенный фосфорнокислый калий - 1 г
Двузамещенный фосфорнокислый натрий - 6,25 г
Сернокислый магний - 0,01 г
Хлористый калий - 0,0005 г
Сернокислый цинк - 0,0001 г
Сернокислая медь - 0,0001 г
Лимоннокислое аммонийное железо - 0,05 г
Аспарагин - 1 г
Гидролизат казеина - 80 мл
Спиртовый экстракт микобактерий тимофеевой травы - 20 мл
Дистиллированная вода - до 1000 мл
Агар Дифко - 1,5%
Стерильная инактивированная сыворотка крупного рогатого скота - 20%
Пенициллин - 50 ЕД/мл
б) Приготовление гидролизата казеина.
Нагревают до 28 °C 1 л водопроводной воды и добавляют 84 г казеина. Едким калием устанавливают pH раствора равный 8,0. Раствор подогревают на водяной бане при температуре 28 °C в течение 3 часов, снова доводят pH до 8,0, затем добавляют 2 г панкреатина и 2 мл хлороформа. Полученную смесь переливают в бутыль, закрывают резиновой пробкой и оставляют при комнатной температуре. Спустя 10 дней содержимое бутыли фильтруют через полотно, устанавливают pH 7,4, разливают по флаконам и стерилизуют при 120 °C в течение 30 мин. Гидролизат может храниться при комнатной температуре длительное время.
в) Приготовление солевых компонентов.
Взвешивают однозамещенный фосфорно-кислый калий, двузамещенный фосфорно-кислый натрий, сернокислый магний и растворяют в 100 - 250 мл дистиллированной воды в литровой колбе. В другой колбе, в таком же объеме воды при подогревании поочередно растворяют аспарагин и лимоннокислое аммиачное железо, этот раствор смешивают с раствором указанных выше солей, а затем прибавляют хлористый кальций, сернокислый цинк и сернокислую медь.
г) Порядок составления среды.
В колбу с растворами солей и аспарагина добавляют 80 мл гидролизата казеина, 20 мл микобактина, дистиллированной воды до 1 литра и полученный раствор пропускают через бумажный фильтр.
Устанавливают соляной кислотой pH - 6,5, разливают равномерно по флаконам, добавляют 1,5% агара и стерилизуют при 120 °C в течение 20 мин. Такой полуфабрикат длительно хранится при комнатной температуре.
Перед употреблением к расплавленному в водяной бане полуфабрикату добавляют 20% стерильной, инактивированной при 50 °C в течение часа сыворотки крови крупного рогатого скота и пенициллин.
Готовую среду разливают по пробиркам, скашивают и выдерживают при комнатной температуре в течение суток.
Яичные среды готовят только в стерильной посуде: добавление яичной массы, фильтрацию и разлив производят в боксе. Для приготовления яичных питательных сред используют только свежие куриные яйца со сроком хранения не более 5 суток. Яйца предварительно тщательно моют щеткой в теплой воде с мылом, смачивают спиртом и обжигают, затем разбивают стерильным пинцетом, выливают содержимое и стерильную банку (большую колбу) с бусами или битым стеклом и энергично встряхивают после внесения каждого яйца.
Среда Петраньяни (ингредиенты и приготовление)
Молоко цельное - 300 мл
Крахмал картофельный - 12 г
Пептон - 2 г
Картофель очищенный, мелко нарезанный - 2 клубня размером с яйцо.
Ингредиенты тщательно смешивают в колбе и варят на слабом огне до образования клейстера. К охлажденной до 50 °C смеси добавляют 8 цельных яиц и 2 желтка, 24 мл глицерина и 20 мл 2% стерильного водного раствора малахитовой зелени. Хорошо смешивают, фильтруют через воронку с двойным слоем марли, разливают по пробиркам (4 - 5 мл в каждую) и стерилизуют при 120 °C в течение 20 мин.
Среда Левенштейна-Йенсена (ингредиенты и приготовление)
а) Солевой раствор
Однозамещенный фосфорнокислый калий - 2,4 г
Сернокислый магний - 0,34 г
Лимоннокислый магний - 0,6 г
Аспарагин - 3,6 г
Глицерин х.ч. - 12 мл
Вида дистиллированная - до 600 мл
Соли растворяют в указанной последовательности, раствор стерилизуют 2 ч текучим паром или в автоклаве в течение 15 мин при температуре 120 °C.
б) Яичная масса.
Приготавливают 1000 мл однородной суспензии из свежих яиц. Для этого яйца, вымытые в проточной воде с мылом, в количестве 20 - 25 штук кладут в 70% спирт на срок не менее 1 часа, затем разбивают в стерильную круглодонную колбу с бусами (из каждого десятка яиц отбрасывают два белка), хорошо размешивают и фильтруют через стерильную марлю.
в) Водный 2% раствор малахитовой зелени.
2 г малахитового зеленого растворяют в 100 мл дистиллированной воды. Стерилизуют в автоклаве в течение 30 мин. при 120 °C.
г) Приготовление среды.
В колбу, содержащую 30 г картофельного крахмала, добавляют 600 мл солевого раствора, смесь нагревают, постоянно взбалтывая, на кипящей бане до вязкой консистенции. К охлажденной до температуры 45 - 60 °C смеси добавляют 1 л яичной массы и 20 мл 2% водного раствора малахитовой зелени, тщательно перемешивают, избегая появления пузырьков воздуха, фильтруют через ватно-марлевый фильтр, разливают в пробирки по 4 - 5 мл, скашивают и сворачивают дважды при 85 °C в течение 20 мин.
Среда ФАСТ-ЗЛ лиофилизированная (способ приготовления)
Во флакон с лиофилизированной средой ФАСТ-ЗЛ вливают 57 мл стерильной дистиллированной воды с pH 6,0 и 1,3 мл микобактина: энергично встряхивают и помещают в термостат с температурой нагрева 37 - 38 °C на 30 мин. с периодическим встряхиванием. Лиофилизированная среда должна полностью раствориться и представлять собой однородную жидкость светло-зеленого цвета консистенции молока.
После растворения сухой среды (30 - 40 мин) ее разливают при периодическом встряхивании флакона в стерильные бактериологические пробирки по 5 мл и укупоривают стерильными ватно-марлевыми пробками.
Пробирки в наклонном положении помещают в аппарат Коха с температурой нагрева 85 °C на 30 мин. для свертывания среды. Затем пробирки в том же положении выдерживают в термостате при температуре 37 - 38 °C в течение 18 - 20 часов и повторно прогревают при температуре 85 °C в течение 20 мин.
8.1. Для гистологического исследования отбирают пораженные участки кишечника и лимфатические узлы, которые фиксируют в 10% растворе формалина.
8.2. Гистологические изменения при паратуберкулезе характеризуются наличием пролифератов из эпителиоидных клеток, располагающихся диффузно и в виде гранулем в слизистой оболочке кишечника, а иногда и в подслизистом слое. Среди них иногда встречаются и гигантские клетки типа Лангганса.
Ворсинки слизистой оболочки увеличены, часто сливаются и имеют вид колбообразных вздутий. Некоторые ворсинки сдавлены и атрофированы. Либеркюновые железы также подвергаются атрофии.
В брыжеечных лимфатических узлах эпителиоидные клетки располагаются преимущественно в краевых и центральных синусах, а в лимфатических сосудах - в их стенках (продуктивный эндолимфангит).
У верблюдов аналогичные эпителиоидные пролифераты выявляют также в печени и селезенке.
В срезах, окрашенных по методу Циля-Нильсена, микобактерии паратуберкулеза обнаруживают в эпителиоидных и гигантских клетках и реже вне их. В отдельных случаях микобактерии обнаружить не удается.
8.3. Изменения при паратуберкулезе следует дифференцировать от туберкулеза, неспецифического катара, паразитарных очагов.
Туберкулез кишечника характеризуется обычно язвенными поражениями кишечной стенки и образованием в брыжеечных лимфатических узлах очагов с творожистым или обызвествленным содержимым, окруженных грануляционной тканью из эпителиоидных, лимфоидных и гигантских клеток. При окраске по методу Циля-Нильсена в содержимом очага могут быть обнаружены единичные красные палочки.
Паразитарные узелки определяют по нахождению паразита и эозинофильноклеточной пролиферации. При неспецифическом катаре кишечника отсутствуют пролифераты из эпителиоидных клеток в стенке кишки и лимфоузлах.
***
С утверждением данного Наставления утрачивают силу "Наставление по диагностике паратуберкулезного энтерита (паратуберкулеза) крупного рогатого скота" (приложение N 1 к Инструкции о мероприятиях по профилактике и ликвидации паратуберкулезного энтерита (паратуберкулеза), утвержденное ГУВ МСХ СССР 18 августа 1975 г., "Наставление по аллергической диагностике паратуберкулеза у овец", утвержденное ГУВ МСХ СССР 11 августа 1981 г., "Временное наставление по постановке реакции связывания комплемента для диагностики паратуберкулеза крупного рогатого скота и овец с антигеном Сибирского научно-исследовательского ветеринарного института", утвержденное ГУВ МСХ СССР 31 мая 1968 г.
***
Разработчики:
Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии (ВИЭВ),
Всероссийский государственный научно-исследовательский институт контроля, стандартизации и сертификации ветеринарных препаратов (ВГНКИ),
Департамент ветеринарии Минсельхоза РФ,
Центральная научно-методическая ветеринарная лаборатория.
Начальник отдела ветсанэкспертизы
и лабораторной диагностики
В.И.БЕЛОУСОВ
Вернуться в "Каталог нормативных документов"
Источник информации: https://internet-law.ru/documents/prod/nastavlenie/0/nasta_45084.html
На правах рекламы:
|
||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||