юридическая фирма 'Интернет и Право'
Основные ссылки




На правах рекламы:



Яндекс цитирования





Произвольная ссылка:



Описание
Источник публикации
М., Федеральный центр гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора, 2011
Сборник методических указаний по методам контроля "Определение остаточных количеств пестицидов в сельскохозяйственном сырье и пищевых продуктах" (МУК 4.1.2917-11 - 4.1.2919-11; 4.1.2926-11; 4.1.2936-11)
Примечание к документу
Документ включен в Перечень методов (методик) определения остаточных количеств действующих веществ пестицидов в продукции (товарах), подлежащий государственному санитарно-эпидемиологическому надзору (контролю) на таможенной границе и таможенной территории Евразийского экономического союза (Решение Комиссии Таможенного союза от 28.05.2010 N 299).

Документ введен в действие с 12 июля 2011 года.
Название документа
"МУК 4.1.2919-11. 4.1. Методы контроля. Химические факторы. Определение остаточных количеств Аминопиралида в зеленой массе, зерне и масле кукурузы, семенах и масле рапса методом капиллярной газожидкостной хроматографии. Методические указания"
(утв. Роспотребнадзором 12.07.2011)

"МУК 4.1.2919-11. 4.1. Методы контроля. Химические факторы. Определение остаточных количеств Аминопиралида в зеленой массе, зерне и масле кукурузы, семенах и масле рапса методом капиллярной газожидкостной хроматографии. Методические указания"
(утв. Роспотребнадзором 12.07.2011)



Оглавление


Утверждаю
Руководитель Федеральной
службы по надзору в сфере
защиты прав потребителей
и благополучия человека,
Главный государственный
санитарный врач
Российской Федерации
Г.Г.ОНИЩЕНКО
12 июля 2011 года
4.1. МЕТОДЫ КОНТРОЛЯ. ХИМИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ
ОПРЕДЕЛЕНИЕ ОСТАТОЧНЫХ КОЛИЧЕСТВ АМИНОПИРАЛИДА
В ЗЕЛЕНОЙ МАССЕ, ЗЕРНЕ И МАСЛЕ КУКУРУЗЫ, СЕМЕНАХ И МАСЛЕ
РАПСА МЕТОДОМ КАПИЛЛЯРНОЙ ГАЗОЖИДКОСТНОЙ ХРОМАТОГРАФИИ
МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ
МУК 4.1.2919-11
Дата введения:
с момента утверждения
1. Рекомендованы к утверждению Комиссией по санитарно-эпидемиологическому нормированию при Федеральной службе по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (протокол от 02.06.2011 N 1).
2. Утверждены Руководителем Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации Г.Г. Онищенко 12 июля 2011 г.
3. Введены в действие с момента утверждения.
4. Введены впервые.
Свидетельство о метрологической аттестации N 0065.03.12.10 от 08.12.2010.
Настоящие Методические указания устанавливают метод газожидкостной хроматографии для определения уровня остаточных количеств Аминопиралида в зеленой массе в диапазоне 0,05 - 0,5 мг/кг, в зерне и масле кукурузы, в семенах и масле рапса в диапазоне 0,01 - 0,2 мг/кг.
Название действующего вещества по ИЮПАК: 4-амино-3,6-ди-хлорпиридино-2-карбоновая кислота.
Структурная формула (не приводится).
Эмпирическая формула: C H Cl N O .
6 4 2 2 2
Молекулярная масса: 207,026.
Физическое состояние технического продукта: желтоватый порошок.
-9
Давление паров: 9,52 х 10 Па при 20 °С.
Коэффициент перераспределения октанол-вода (при 19 °С): К log P =
ow
1,76 (рН = 5); 2,87 при рН = 7; 2,96 при рН = 9.
Аминопиралид - сильная кислота: рКа = 2,56 (при 20 °С).
Температура плавления: 163,5 - 165,2 °С, разлагается в точке плавления.
Растворимость в воде (г/куб. дм, при 20 °С): 2,48 при рН 2,35; 212 при рН 5; 205 - 203 при рН 7 и 9.
Растворимость в органических растворителях (г/куб. дм, при 20 °С): в гептане < 10; в ксилоле - 0,05; в дихлорэтане - 0,15; в этилацетате - 4,37; в ацетоне - 37,0; в метаноле - 66,4.
Стабилен к гидролизу при рН 5, 7 и 9 при температуре от 20 до 50 °С.
Фотолитически малостоек, разрушается на свету с периодом полураспада - 0,6 дня.
Устойчив к разложению в почве в анаэробных условиях: DT при 20 °С
50
составляет в среднем 67 дней (от 18 до 143 дней в различных почвах Европы);
DT - от 26 до 116 дней. В аэробных условиях скорость деградации
90
Аминопиралида значительно выше: DT в среднем составляет 25 дней (от 8 до
50
35 дней); DT - 84 дня (от 26 до 116 дней).
90
Краткая токсикологическая характеристика: Аминопиралид относится к
веществам малоопасным по острой пероральной и дермальной токсичности (СД
50
для крыс более 5000 мг/кг), но к умеренно опасным веществам по
ингаляционной токсичности. При продолжительном контакте раздражает
слизистые оболочки. Малотоксичен для водных организмов (СК для рыб и
50
дафний более 100 мг/куб. дм).
Область применения: Аминопиралид - гербицид системного ауксиноподобного действия из группы гетерилкарбоновых кислот. Рекомендуется для послевсходовой обработки зерновых культур и пастбищ против широкого спектра широколистных сорняков в смеси с Флорасуламом с нормой расхода препарата 33 - 66 г/га.
В России установлены следующие гигиенические нормативы: ДСД - 0,5 мг/кг массы человека; ПДК в воде водоемов - 0,1 мг/куб. дм; ОДК в почве - 0,2 мг/кг; МДУ в зерне хлебных злаков - 0,1 мг/кг.
1. Метрологическая характеристика метода
При соблюдении всех регламентированных условий проведения анализа в точном соответствии с данной методикой погрешность (и ее составляющие) результатов измерений при доверительной вероятности Р = 0,95 не превышает значений, приведенных в табл. 1 для соответствующих диапазонов концентраций.
Полнота извлечения вещества, стандартное отклонение, доверительные интервалы среднего результата для полного диапазона концентраций (n = 20) приведены в табл. 2.
Таблица 1
МЕТРОЛОГИЧЕСКИЕ ПАРАМЕТРЫ ДЛЯ АМИНОПИРАЛИДА
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Анализи- ?Диапазон ?Показатель ?Стандартное?Предел ?Предел ?
?руемый ?определя- ?точности ?отклонение ?повторя-?воспро- ?
?объект ?емых кон- ?(граница от- ?повторяе- ?емости, ?изводи- ?
? ?центраций,?носительной ?мости, ?r, % ?мости, ?
? ?мг/кг ?погрешности),?сигма , % ? ?R, % ?
? ? ?+/- дельта, ? r ? ? ?
? ? ?%, P = 0,95 ? ? ? ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Зеленая ?0,05 - 0,1?50 ?2,7 ?7,5 ?8,9 ?
?масса ?вкл. ? ? ? ? ?
?кукурузы ????????????????????????????????????????????????????????
? ?0,1 - 0,5 ?25 ?5,2 ?16,4 ?19,6 ?
? ?вкл. ? ? ? ? ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Зерно ?0,01 - 0,1?50 ?4,8 ?13,5 ?16,0 ?
?кукурузы ?вкл. ? ? ? ? ?
? ????????????????????????????????????????????????????????
? ?0,1 - 0,2 ?25 ?6,9 ?19,2 ?22,8 ?
? ?вкл. ? ? ? ? ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Масло ?0,01 - 0,1?50 ?4,3 ?12,1 ?14,3 ?
?кукурузы ?вкл. ? ? ? ? ?
? ????????????????????????????????????????????????????????
? ?0,1 - 0,2 ?25 ?4,0 ?11,1 ?13,2 ?
? ?вкл. ? ? ? ? ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Семена ?0,01 - 0,1?50 ?3,2 ?9,0 ?10,7 ?
?рапса ?вкл. ? ? ? ? ?
? ????????????????????????????????????????????????????????
? ?0,1 - 0,2 ?25 ?4,4 ?12,2 ?14,5 ?
? ?вкл. ? ? ? ? ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
?Масло ?0,01 - 0,1?50 ?3,4 ?9,3 ?11,1 ?
?рапса ?вкл. ? ? ? ? ?
? ????????????????????????????????????????????????????????
? ?0,1 - 0,2 ?25 ?5,9 ?16,3 ?19,4 ?
? ?вкл. ? ? ? ? ?
??????????????????????????????????????????????????????????????????
Таблица 2
ПОЛНОТА ИЗВЛЕЧЕНИЯ ВЕЩЕСТВА,
СТАНДАРТНОЕ ОТКЛОНЕНИЕ, ДОВЕРИТЕЛЬНЫЙ ИНТЕРВАЛ
СРЕДНЕГО РЕЗУЛЬТАТА ДЛЯ АМИНОПИРАЛИДА
Анализи-
руемый
объект
Метрологические параметры, Р = 0,95, n = 20
Предел
обнару-
жения,
мг/кг
Диапазон
определяемых
концентраций,
мг/кг
Полнота
извлече-
ния веще-
ства, %
Стан-
дартное
отклоне-
ние,
S, %
Доверительный
интервал
среднего
результата,
+/-, %
Зеленая
масса
кукурузы
0,05
0,05 - 0,5
82,8
0,88
1,92
Зерно
кукурузы
0,01
0,01 - 0,2
83,4
1,16
2,63
Масло
кукурузы
0,01
0,01 - 0,2
85,2
0,79
1,86
Семена
рапса
0,01
0,01 - 0,2
84,0
0,70
1,70
Масло
рапса
0,01
0,01 - 0,2
83,0
0,95
2,06
2. Метод измерений
Метод основан на определении Аминопиралида методом капиллярной газожидкостной хроматографии с использованием детектора по захвату электронов после его экстракции из зеленой массы кукурузы и масел подкисленным ацетонитрилом и водно-спиртовым раствором щелочи из зерна кукурузы и семян рапса, очистки экстракта концентрированной серной кислотой, на концентрирующих патронах Диапак С16 и Диапак П, бутилирования и дополнительной очистки полученного бутилового эфира Аминопиралида на колонках с Флоризилом.
Идентификация веществ проводится по времени удерживания, а количественное определение - методом абсолютной калибровки.
В предлагаемых условиях анализа метод специфичен. Специфичность обеспечивается подбором капиллярной колонки и условий программирования температуры.
3. Средства измерений, реактивы,
вспомогательные устройства и материалы
3.1. Средства измерений
Весы аналитические "OHAUS", ЕР 114 с
наибольшим пределом взвешивания до 110 г
и дискретностью 0,0001 г, класс точности
по ГОСТ 24104-1 - специальный (I)
Весы лабораторные общего назначения с
наибольшим пределом взвешивания до 600 г
и пределом допустимой погрешности +/-
0,038 г "ACCULAB" V600, соответствуют
классу точности по ГОСТ 24104-1 -
средний (III)
Колбы мерные на 10, 25, 50, 100, 500 и ГОСТ 1770-74
1000 куб. см
Микрошприц для газовой хроматографии
"Hamilton, 1700", объем 10 куб. мм,
фирма "SUPELCO", кат. N 20972
Пипетки мерные на 1,0; 2,0; 5,0 и 10 ГОСТ 29227-91
куб. см
рН-метр/милливольтметр рН-15
0...14 рН;
+/- 1999 мВ, номер госрегистрации
N 10663
Хроматограф газовый "Кристалл 2000м" с
детектором по захвату электронов (ЭЗД) с
пределом детектирования по Линдану
-14
4 х 10 г/куб. см и приспособлениями
для капиллярной колонки. Номер в госу-
дарственном реестре средств измерений
14516-95
Цилиндры мерные на 10, 25 и 50 куб. см ГОСТ 1770-74
Допускается использование средств измерений с аналогичными или лучшими характеристиками.
3.2. Реактивы
Аминопиралид, CAS 150114-71-9,
аналитический стандарт с содержанием
действующего вещества не менее 99,5%,
фирма Dr. Ehreus-torfer GmbH,
аккредитованная по ИСО 9001:2000
Азот, осч ГОСТ 9293-74
Ацетон, осч ТУ 6-09-3513-86
Ацетонитрил, осч, УФ-200 нм ТУ 6-09-2167-84
Бутанол, ч ГОСТ 6006-78
Вода дистиллированная и (или) бидистил- ГОСТ 6709-72
лированная (вода дистиллированная, пере-
гнанная повторно в стеклянной емкости)
Гелий очищенный марки "А" ТУ 51-940-80
n-Гексан, хч ТУ 6-09-3818-89
Калий марганцово-кислый, хч ГОСТ 20490-75
Кальций хлористый, ч ТУ 6-09-4711-81
Кислота серная, хч ГОСТ 4204-77
Кислота соляная, хч ГОСТ 3118-77
Кислота уксусная ледяная, хч ГОСТ 61-75
Концентрирующие патроны Диапак С16 и ТУ 4215-002-05451931-94
Диапак П (0,6 г), фирма "БиоХимМак СТ"
Натрий гидроокись, хч ГОСТ 4328-77
Натрий серно-кислый безводный, хч ГОСТ 4166-76
Спирт метиловый (метанол), хч ГОСТ 6995-77
Спирт этиловый, ректификованный ГОСТ 18300-87
технический Флоризил(R) (Магния силикат,
99%, CAS 1343-88-0) для колоночной
хроматографии, зернение 60/100 меш,
фирма "Acros Organics"
Допускается использование реактивов иных производителей с аналогичными или лучшими характеристиками.
3.3. Вспомогательные устройства и материалы
Аллонж прямой с отводом для вакуума ГОСТ 25336-82
(АО-14/23) для работы с концентрирующими
патронами Диапак С16
Аппарат для встряхивания проб
"SKLO UNION TYP LT1"
Банки с крышками для экстракции на 250
куб. см, полипропилен, кат. N 3120-0250,
фирма "NALGENE"
Блок нагревательный для виал, Dri-Block
DB-3, фирмы Tecam, или песчаная баня
Ванна ультразвуковая "UNITRA" UNIMA
OLSZTYN UM-4
Вата медицинская гигроскопическая ГОСТ 5556-81
хлопковая нестерильная
Виалы (пузырьки) с тефлоновыми
прокладками емкостью 40 куб. см,
кат. N Z 27, 702-9, фирма "Aldrich"
Воронки делительные на 250 куб. см ГОСТ 25336-82
Воронки лабораторные стеклянные ГОСТ 25336-82
Испаритель ротационный Rota vapor R110
Buchi с водяной баней В-480, фирма
"Buchi"
Колбы конические плоскодонные ГОСТ 25336-82
на 100, 250 и 1000 куб. см
Колбы круглодонные со шлифом ТУ 92-891.029-91
(концентраторы) на 100, 250 куб. см
и 4000 куб. см ТС
Колонка хроматографическая кварцевая
НР-1 длиной 30 м, внутренним диаметром
0,32 мм, толщина пленки 0,25 мкм, фирма
"Hewlett Packerd"
Насос водоструйный ГОСТ 25336-82
Насос диафрагменный FT.19,
фирма "KNF Neu Laboport"
Стаканы стеклянные термостойкие ГОСТ 25336-82
объемом 100 - 2000 куб. см
Установка для перегонки растворителей
с круглодонной колбой объемом
4000 куб. см и приемной конической
колбой объемом 1000 куб. см
Фильтры бумажные "красная лента" ТУ 6-09-1678-86
Центрифуга MPW-350e с набором полипро-
пиленовых банок емкостью 200 куб. см
ИС NORMPROD: примечание.
Взамен ГОСТ 24861-91 Приказом Ростехрегулирования от 20.10.2009 N 459-ст
с 01.09.2010 введен в действие ГОСТ Р ИСО 7886-1-2009.
Шприц инъекционный однократного ГОСТ 24861-91
применения объемом 10 куб. см (ИСО 7886:84)
Допускается применение хроматографических колонок и другого оборудования с аналогичными или лучшими техническими характеристиками.
4. Требования безопасности
4.1. При выполнении измерений необходимо соблюдать требования техники безопасности при работе с химическими реактивами по ГОСТ 12.1.007, требования электробезопасности при работе с электроустановками по ГОСТ 12.1.019, а также требования, изложенные в технической документации на газовый хроматограф.
4.2. Помещение должно соответствовать требованиям пожаробезопасности по ГОСТ 12.1.004 и иметь средства пожаротушения по ГОСТ 12.4.009. Содержание вредных веществ в воздухе не должно превышать норм, установленных ГН 2.2.5.1313-03 "Предельно допустимые концентрации (ПДК) вредных веществ в воздухе рабочей зоны". Организация обучения работников безопасности труда по ГОСТ 12.0.004.
5. Требования к квалификации операторов
К выполнению измерений и обработке их результатов допускаются специалисты, имеющие высшее или специальное химическое образование, опыт работы в химической лаборатории, прошедшие обучение и владеющие техникой проведения анализа, освоившие метод анализа в процессе тренировки и уложившиеся в нормативы контроля при проведении процедуры контроля погрешности анализа.
6. Условия измерений
При выполнении измерений соблюдают следующие условия:
- процессы приготовления растворов и подготовки проб к анализу проводят при температуре воздуха (20 +/- 5) °С, относительной влажности не более 80% и нормальном атмосферном давлении;
- выполнение измерений на газожидкостном хроматографе проводят в условиях, рекомендованных технической документацией к прибору.
7. Подготовка к выполнению определений
Выполнению измерений предшествуют следующие операции: очистка растворителей (при необходимости), приготовление растворов, кондиционирование хроматографической колонки, подготовка концентрирующих патронов Диапак С16, Диапак П и колонок с Флоризилом для очистки экстракта, проверка хроматографического поведения вещества на концентрирующих патронах Диапак С16, Диапак П и на колонках с Флоризилом, установление градуировочной характеристики.
7.1. Подготовка органических растворителей
7.1.1. Очистка ацетонитрила
Ацетонитрил, содержащий воду, предварительно осушают, добавляя в него гранулированный безводный хлористый кальций из расчета не менее 100 г/куб. дм. Выдерживают его над осушителем в течение 5 - 6 ч. Затем ацетонитрил сливают с осушителя в круглодонную колбу со шлифом объемом 4000 куб. см аппарата для перегонки растворителей.
Ацетонитрил перегоняют при температуре 81,5 °С, а фракции, отогнанные при температуре ниже и выше 81,5 °С, отбрасывают.
7.1.2. Очистка ацетона
Ацетон помещают в круглодонную колбу со шлифом объемом 4000 куб. см от аппарата для перегонки растворителей, добавляют к нему марганцово-кислый калий из расчета 1 г/куб. дм.
Ацетон перегоняют при температуре 56,2 °С, а фракции, отогнанные при температуре ниже и выше 56,2 °С, отбрасывают.
7.1.3. Приготовление бидистиллированной воды
Дистиллят помещают в круглодонную колбу со шлифом объемом 4000 куб. см от аппарата для перегонки растворителей, добавляют к нему марганцово-кислый калий из расчета 1 г/куб. дм и кипятят в течение 6 ч.
Собирают фракции, отогнанные при температуре 100,0 °С, а фракции, отогнанные при температуре ниже и выше 100,0 °С, отбрасывают.
7.2. Приготовление растворов для проведения анализа
7.2.1. Приготовление рабочих растворов
7.2.1.1. Приготовление 10%-ного водного раствора гидроокиси натрия.
В мерную колбу на 500 куб. см переносят 50 г гидроокиси натрия, добавляют 500 - 600 куб. см дистиллированной воды. Затем раствор перемешивают и после охлаждения доводят водой объем в колбе до метки (при приготовлении раствора соблюдать осторожность и работать под тягой).
7.2.1.2. Приготовление водно-спиртового раствора щелочи.
Водно-спиртовой раствор щелочи готовят путем смешивания 950 куб. см этилового спирта и 50 куб. см 10%-ного водного раствора гидроокиси натрия.
7.2.1.3. Приготовление подкисленного ацетонитрила.
К необходимому объему ацетонитрила пипеткой добавляют концентрированную соляную кислоту до рН ~ 1. При приготовлении раствора соблюдать осторожность и работать под тягой.
7.2.1.4. Приготовление 2%-ного раствора серной кислоты в бутаноле (бутилирующей смеси).
Мерным цилиндром отбирают 2 куб. см концентрированной серной кислоты и осторожно переносят в мерную колбу на 100 куб. см, куда предварительно наливают около 60 куб. см бутанола. Затем раствор перемешивают и доводят бутанолом объем в колбе до метки (при приготовлении раствора соблюдать осторожность и работать под тягой).
7.2.1.5. Приготовление 1 М раствора соляной кислоты.
Мерным цилиндром отбирают 82 куб. см концентрированной соляной кислоты и осторожно переносят в мерную колбу на 1000 куб. см, куда предварительно наливают около 400 куб. см дистиллированной воды. Затем раствор перемешивают и после охлаждения доводят водой объем в колбе до метки (при приготовлении раствора соблюдать осторожность и работать под тягой).
7.2.1.6. Приготовление 2 М раствора соляной кислоты.
Мерным цилиндром отбирают 164 куб. см концентрированной соляной кислоты и осторожно переносят в мерную колбу на 1000 куб. см, куда предварительно наливают около 400 куб. см дистиллированной воды. Затем раствор перемешивают и после охлаждения доводят водой объем в колбе до метки (при приготовлении раствора соблюдать осторожность и работать под тягой).
7.2.1.7. Приготовление 10 М раствора гидроокиси натрия.
В мерную колбу на 500 куб. см переносят 200 г гидроокиси натрия, добавляют 200 - 300 куб. см дистиллированной воды. Затем раствор перемешивают и после охлаждения доводят водой объем в колбе до метки (при приготовлении раствора соблюдать осторожность и работать под тягой).
7.2.2. Приготовление градуировочных растворов
7.2.2.1. Стандартный раствор N 1 с концентрацией Аминопиралида 1,0 мг/куб. см.
Взвешивают 50 мг Аминопиралида в мерной колбе объемом 50 куб. см. Навеску растворяют в ацетоне и доводят объем до метки ацетоном. Полученный стандартный раствор N 1 используется для приготовления стандартных растворов для хроматографического исследования и построения калибровочной кривой. Стандартный раствор N 1 хранится в холодильнике в течение 6 месяцев.
7.2.2.2. Стандартный раствор N 2 с концентрацией Аминопиралида 100,0 мкг/куб. см.
Из стандартного раствора N 1 отбирают пипеткой 1 куб. см, помещают в мерную колбу объемом 10 куб. см и доводят объем до метки ацетоном. Стандартный раствор N 2 используется для приготовления стандартных растворов для построения калибровочной кривой. Стандартный раствор N 2 хранится в холодильнике в течение 6 месяцев.
7.2.2.3. Стандартный раствор N 3 с концентрацией Аминопиралида 1,0 мкг/куб. см.
Из стандартного раствора N 2 отбирают пипеткой 1 куб. см, помещают в мерную колбу объемом 100 куб. см и доводят объем до метки ацетоном. Стандартный раствор N 3 используется для приготовления стандартных растворов для построения калибровочной кривой и для внесения в контрольные образцы. Стандартный раствор N 3 хранится в холодильнике в течение 6 месяцев.
7.2.2.4. Стандартный раствор N 4 с концентрацией Аминопиралида 0,5 мкг/куб. см.
Из стандартного раствора N 3 отбирают пипеткой 5 куб. см, помещают в мерную колбу объемом 10 куб. см и доводят объем до метки ацетоном. Стандартный раствор N 4 используется для построения калибровочной кривой и для внесения в контрольные образцы. Стандартный раствор N 4 хранится в холодильнике в течение 6 месяцев.
7.2.2.5. Стандартный раствор N 5 с концентрацией Аминопиралида 0,2 мкг/куб. см.
Из стандартного раствора N 3 отбирают пипеткой 2 куб. см, помещают в мерную колбу объемом 10 куб. см и доводят объем до метки ацетоном. Стандартный раствор N 5 используется для построения калибровочной кривой и для внесения в контрольные образцы. Стандартный раствор N 5 хранится в холодильнике в течение 6 месяцев.
7.2.2.6. Стандартный раствор N 6 с концентрацией Аминопиралида 0,1 мкг/куб. см.
Из стандартного раствора N 3 отбирают пипеткой 1 куб. см, помещают в мерную колбу объемом 10 куб. см и доводят объем до метки ацетоном. Стандартный раствор N 6 используется для построения калибровочной кривой и для внесения в контрольные образцы. Стандартный раствор N 6 хранится в холодильнике в течение 6 месяцев.
7.2.2.7. Стандартный раствор N 7 с концентрацией Аминопиралида 0,01 мкг/куб. см.
Из стандартного раствора N 6 отбирают пипеткой 1 куб. см, помещают в мерную колбу объемом 10 куб. см и доводят объем до метки ацетоном.
Стандартный раствор N 7 используется для построения калибровочной кривой и для внесения в контрольные образцы. Стандартный раствор N 7 хранится в холодильнике в течение 6 месяцев.
7.3. Бутилирование
7.3.1. Бутилирование экстракта
К сухому остатку в концентраторе прибавляют 4 куб. см 2%-ного раствора концентрированной серной кислоты в бутаноле (бутилирующей смеси), полученной по п. 7.2.1.4, тщательно обмывают стенки концентратора и выдерживают 1 - 2 мин. в ультразвуковой ванне. Отбирают пипеткой 2 куб. см раствора из концентратора и переносят его в виалу. Виалу плотно закрывают крышкой, помещают в блок для виал, нагретый до 100 °С, и оставляют на 30 мин. По истечении этого времени виалу вынимают из блока, охлаждают до комнатной температуры, добавляют 10 куб. см гексана и 25 - 30 куб. см очищенной воды. Смесь интенсивно встряхивают и после разделения фаз в виале из верхнего (гексанового) слоя 1 куб. мм вводят в хроматограф.
7.3.2. Бутилирование стандартных растворов
В виалы объемом 40 куб. см помещают по 1 куб. см каждого стандартного раствора Аминопиралида в ацетоне (N 3, 4, 5, 6), удаляют растворитель током теплого воздуха и проводят бутилирование, как указано выше.
7.4. Установление градуировочной характеристики
Градуировочную характеристику, выражающую зависимость площади (высоты) пика от концентрации Аминопиралида в растворе (мкг/куб. см), устанавливают методом абсолютной калибровки по 4 растворам для градуировки с концентрацией 0,01; 0,02; 0,05 и 0,10 мкг/куб. см.
В испаритель хроматографа вводят по 1 куб. мм каждого градуировочного раствора и анализируют в условиях хроматографирования по п. 9.5. Осуществляют не менее 5 параллельных измерений.
7.5. Подготовка концентрирующих патронов Диапак С16
для очистки экстракта и проверка хроматографического
поведения Аминопиралида
7.5.1. Подготовка концентрирующих патронов Диапак С16 для очистки экстракта
Все процедуры происходят с использованием вакуума, скорость потока растворов через патрон не должна превышать 5 куб. см/мин. (1 - 2 кап./с).
Патрон Диапак С16 устанавливают на аллонж с отводом для вакуума, сверху в патрон вставляют шприц с разъемом типа Люер объемом не менее 10 куб. см (используют как емкость для элюентов).
Кондиционирование: концентрирующий патрон промывают 5 куб. см смеси ацетонитрила с водой в соотношении 1:1, затем 10 куб. см воды. Элюаты отбрасывают.
7.5.2. Проверка хроматографического поведения Аминопиралида на концентрирующих патронах Диапак С16
Из стандартного раствора Аминопиралида в ацетоне, содержащего 1 мкг/куб. см, отбирают 1 куб. см, помещают в концентратор объемом 100 куб. см и выпаривают на ротационном вакуумном испарителе досуха при температуре не выше 30 °С. Сухой остаток растворяют в 2 куб. см ацетонитрила, тщательно обмывая стенки концентратора, прибавляют 8 куб. см воды, перемешивают и вносят на патрон. Элюат собирают в концентратор объемом по 100 куб. см, выпаривают на ротационном вакуумном испарителе досуха при температуре не выше 30 °С.
Исходный концентратор обмывают 2 куб. см ацетонитрила, прибавляют 8 куб. см воды, перемешивают, вносят на патрон. Процедуру повторяют еще раз, используя тот же объем и состав элюентов. Элюат после прохождения каждой порции элюентов собирают в отдельные концентраторы объемом по 100 куб. см, выпаривают досуха на ротационном вакуумном испарителе при температуре не выше 30 °С.
Сухой остаток каждой фракции растворяют в 4 куб. см бутилирующей смеси и проводят бутилирование, как указано в п. 7.3.1.
Определяют фракции, содержащие Аминопиралид, полноту смывания с патрона и необходимый объем элюента.
Изучение поведения Аминопиралида на концентрирующих патронах Диапак С16 проводят каждый раз при отработке методики или поступлении новой партии концентрирующих патронов.
7.6. Подготовка концентрирующих патронов Диапак П
для очистки экстракта и проверка хроматографического
поведения Аминопиралида
7.6.1. Подготовка концентрирующих патронов Диапак П для очистки экстракта
Все процедуры происходят с использованием вакуума, скорость потока растворов через патрон не должна превышать 5 куб. см/мин. (1 - 2 кап./с).
Патрон Диапак П устанавливают на аллонж с отводом для вакуума, сверху в патрон вставляют шприц с разъемом типа Люер объемом не менее 10 куб. см (используют как емкость для элюентов).
Кондиционирование: концентрирующий патрон промывают 20 куб. см очищенной воды, затем 10 куб. см 1%-ного водного раствора уксусной кислоты. Элюаты отбрасывают.
7.6.2. Проверка хроматографического поведения Аминопиралида на концентрирующих патронах Диапак П
Из стандартного раствора Аминопиралида в ацетоне, содержащего 1 мкг/куб. см, отбирают 1 куб. см, помещают в концентратор объемом 100 куб. см и выпаривают на ротационном вакуумном испарителе досуха при температуре не выше 30 °С. Сухой остаток растворяют в 2 куб. см 1 М водного раствора соляной кислоты, тщательно обмывая стенки концентратора, прибавляют 5 куб. см воды, перемешивают, помещают на 10 с в ультразвуковую ванну и вносят на патрон. Элюат собирают в концентратор объемом по 100 куб. см, выпаривают на ротационном вакуумном испарителе досуха при температуре не выше 30 °С.
Исходный концентратор обмывают последовательно 20 куб. см очищенной воды, затем 20 куб. см 1%-ного водного раствора уксусной кислоты и тремя порциями по 10 куб. см каждая 1%-ного раствора уксусной кислоты в метаноле. Полученные растворы последовательно вносят на патрон. Элюат после прохождения каждой порции элюентов собирают в отдельные концентраторы объемом по 100 куб. см, выпаривают досуха на ротационном вакуумном испарителе при температуре не выше 30 °С.
Сухой остаток каждой фракции растворяют в 4 куб. см бутилирующей смеси и проводят бутилирование, как указано в п. 7.3.1.
Определяют фракции, содержащие Аминопиралид, полноту смывания с патрона и необходимый объем элюента.
Изучение поведения Аминопиралида на концентрирующих патронах Диапак П проводят каждый раз при отработке методики или поступлении новой партии концентрирующих патронов.
7.7. Подготовка колонок с Флоризилом для очистки
экстракта и проверка хроматографического поведения
бутилового эфира Аминопиралида
7.7.1. Подготовка колонки с Флоризилом для очистки экстракта
В пластиковую или стеклянную колонку диаметром 15 мм помешают 4 г Флоризила с зернением 60/100 меш. и, аккуратно постукивая по стенкам колонки, формируют слой адсорбента. На слой Флоризила наносят слой безводного серно-кислого натрия толщиной 1 см.
За день до использования колонку промывают 20 куб. см ацетона, затем 10 куб. см гексана и высушивают при комнатной температуре.
7.7.2. Проверка хроматографического поведения бутилового эфира Аминопиралида на колонке с Флоризилом
В концентратор объемом 100 куб. см вносят 1 куб. см стандартного раствора бутилового эфира Аминопиралида в гексане с концентрацией 1,0 мкг/куб. см и выпаривают его досуха на ротационном вакуумном испарителе при температуре не выше 30 °С. Сухой остаток растворяют в 2 куб. см гексана, тщательно обмывают стенки концентратора и наносят на подготовленную колонку. Элюат собирают в концентратор объемом по 100 куб. см и выпаривают досуха при температуре не выше 30 °С.
Исходную колбу обмывают сначала 10 куб. см гексана, затем 10 куб. см смеси гексана с ацетоном в соотношении 9:1, а затем еще двумя порциями смеси гексана с ацетоном в соотношении 1:1 объемом 10 куб. см каждая и последовательно вносят их на колонку. Каждую порцию собирают отдельно в концентраторы объемом по 100 куб. см и выпаривают досуха на ротационном вакуумном испарителе при температуре не выше 30 °С.
Сухой остаток каждой фракции растворяют в 10 куб. см гексана и 1 куб. мм пробы вводят в хроматограф.
Определяют фракции, содержащие Аминопиралид, полноту смывания с колонки и необходимый объем элюента.
Изучение поведения Аминопиралида на колонке проводят каждый раз при отработке методики или поступлении новой партии Флоризила.
8. Отбор проб и хранение
ИС NORMPROD: примечание.
ГОСТ 5471-83 утратил силу на территории Российской Федерации с 1 июня 2004 года в связи с введением в действие ГОСТ Р 52062-2003 (Постановление Госстандарта России от 28.05.2003 N 166-ст).
Отбор проб производится в соответствии с "Унифицированными правилами отбора проб сельскохозяйственной продукции, пищевых продуктов и объектов окружающей среды для определения микроколичеств пестицидов" N 2051-79 от 21.08.79, а также по ГОСТ 13586.3-83 "Зерно. Правила приемки и методы отбора проб", ГОСТ Р 50436-92 (ИСО 950:79) "Зерновые. Отбор проб зерна", ГОСТ 8808-2000 "Масло кукурузное, ТУ", ГОСТ 5471-83 "Масла растительные. Правила приемки и методы отбора проб", ГОСТ 27262 "Корма растительного происхождения. Методы отбора проб", ГОСТ 10852-86 "Семена масличные. Правила приемки и методы отбора проб" и ГОСТ 8988-2002 "Масло рапсовое. ТУ".
Пробы зеленой массы хранятся в полиэтиленовых пакетах в холодильнике при температуре 0 - 4 °С в течение суток. Для длительного хранения пробы замораживаются и хранятся в морозильной камере при температуре -18 °С.
Пробы зерна кукурузы и семян рапса подсушивают до стандартной влажности и хранят в бумажных или тканевых мешочках в сухом, хорошо проветриваемом шкафу, недоступном для грызунов.
Пробы масла кукурузы и рапса хранят в плотно закрытой стеклянной или полиэтиленовой таре в холодильнике при температуре 0 - 4 °С не более 2 недель.
9. Подготовка проб и выполнение измерений
9.1. Зеленая масса кукурузы
9.1.1. Экстракция и очистка полученного экстракта
Образец измельченной зеленой массы кукурузы массой 10 г помещают в полипропиленовую банку для экстракции, прибавляют 50 куб. см подкисленного ацетонитрила и помещают на механический встряхиватель на 30 мин. Экстракт фильтруют в делительную воронку объемом 250 куб. см через фильтр "красная лента". Экстракцию повторяют еще два раза, используя каждый раз по 40 куб. см подкисленного ацетонитрила и помещая на 15 мин. на механический встряхиватель. Экстракты объединяют в делительной воронке объемом 250 куб. см.
К полученному экстракту добавляют 30 куб. см гексана и интенсивно встряхивают воронку 2 мин. После полного разделения фаз в делительной воронке верхний слой (гексан) отбрасывают, а ацетонитрил собирают в концентратор объемом 250 куб. см через слой безводного сульфата натрия и выпаривают досуха на ротационном вакуумном испарителе при температуре не выше 30 °С.
9.1.2. Очистка экстракта концентрированной серной кислотой
(Внимание! Последующий этап анализа следует проводить только в вытяжном шкафу!)
К сухому остатку в концентраторе, полученному в п. 9.1.1, прибавляют 4 куб. см концентрированной серной кислоты и тщательно обмывают стенки концентратора. Концентратор оставляют при комнатной температуре на 20 мин. По истечении этого времени в концентратор осторожно прибавляют 20 куб. см дистиллированной воды, перемешивают и охлаждают полученную смесь до комнатной температуры. Затем в концентратор добавляют 10 М раствор щелочи до рН 3, перемешивают и охлаждают до комнатной температуры. Помещают концентратор в ультразвуковую ванну на 1 - 2 мин., а затем содержимое фильтруют в чистый концентратор объемом 250 куб. см через фильтр "красная лента". Исходный концентратор обмывают 10 куб. см дистиллированной воды, выдерживают в ультразвуковой ванне 1 - 2 мин. и фильтруют в тот же концентратор. Объединенный раствор выпаривают досуха на ротационном вакуумном испарителе при температуре не выше 30 °С.
К сухому остатку в концентраторе добавляют 10 куб. см метанола, тщательно обмывают стенки концентратора и помещают на 1 мин. в ультразвуковую ванну. Содержимое концентратора фильтруют в чистый концентратор объемом 250 куб. см через слой безводного сульфата натрия. Во избежание потерь исходный концентратор тщательно обмывают еще двумя порциями по 10 куб. см каждая 1%-ным раствором уксусной кислоты в метаноле и 10 куб. см метанола, каждый раз помещая концентратор в ультразвуковую ванну. Все порции фильтруют через слой безводного сульфата натрия в концентратор, а затем выпаривают досуха на ротационном вакуумном испарителе при температуре не выше 30 °С.
9.1.3. Очистка экстракта на концентрирующих патронах Диапак С16
К остатку в концентраторе, полученному по п. 9.1.2, добавляют 2 куб. см ацетонитрила, обмывая стенки концентратора, затем в концентратор прибавляют 8 куб. см очищенной воды, тщательно перемешивают, выдерживают концентратор в ультразвуковой ванне 1 - 2 мин. и отфильтровывают содержимое через фильтр "красная лента" в емкость для элюента. Элюат собирают в концентратор объемом 100 куб. см.
Исходный концентратор обмывают 2 куб. см ацетонитрила, прибавляют 8 куб. см воды, перемешивают, вносят на патрон. Элюаты объединяют в концентраторе объемом 100 куб. см и выпаривают до объема 1 - 2 куб. см на ротационном вакуумном испарителе при температуре не выше 30 °С.
К остатку после упаривания добавляют 5 куб. см очищенной воды, перемешивают содержимое концентратора и помещают на 1 - 2 мин. в ультразвуковую ванну.
Далее проводят очистку экстракта на концентрирующих патронах Диапак П.
9.1.4. Очистка экстракта на концентрирующих патронах Диапак П
Раствор, полученный по п. 9.1.3, наносят на заранее подготовленный патрон Диапак П, элюат отбрасывают. Исходный концентратор обмывают последовательно 20 куб. см очищенной воды, затем 20 куб. см 1%-ного водного раствора уксусной кислоты. Полученные растворы последовательно вносят на патрон, элюаты отбрасывают.
Аминопиралид элюируют с патрона 20 куб. см 1%-ного раствора уксусной кислоты в метаноле. Элюат собирают в концентратор объемом 100 куб. см и выпаривают досуха на ротационном вакуумном испарителе при температуре не выше 30 °С.
9.1.5. Бутилирование экстракта
К сухому остатку в концентраторе, полученному по п. 9.1.2, добавляют 4 куб. см бутилирующей смеси, проводят бутилирование, как указано в п. 7.3.1 "Бутилирование экстракта".
Полученный бутиловый эфир Аминопиралида подвергают дополнительной очистке на колонках с Флоризилом.
9.1.6. Очистка бутилированного экстракта на колонках с Флоризилом
Из верхнего (гексанового) слоя в виале, полученного в п. 9.1.5, отбирают 2 куб. см и наносят на заранее подготовленную колонку с Флоризилом.
Исходную колбу обмывают сначала 10 куб. см гексана, затем 10 куб. см смеси гексана с ацетоном в соотношении 9:1, последовательно наносят на колонку и элюаты отбрасывают.
Аминопиралид элюируют с колонки 15 куб. см смеси гексана с ацетоном в соотношении 1:1. Элюат собирают в концентратор объемом 100 куб. см и выпаривают досуха на ротационном вакуумном испарителе при температуре не выше 30 °С.
Сухой остаток растворяют в 5 куб. см гексана и 1 куб. мм пробы вводят в хроматограф.
9.2. Зерно кукурузы
9.2.1. Экстракция
Образец измельченного зерна кукурузы массой 20 г помещают в полипропиленовую банку для экстракции и центрифугирования объемом 200 куб. см, прибавляют 75 куб. см водно-спиртового раствора щелочи и помещают на 30 мин. на механический встряхиватель. Пробу центрифугируют в течение 15 мин. при скорости 4000 об./мин. и экстракт фильтруют в концентратор объемом 250 куб. см через фильтр "красная лента". Экстракцию повторяют еще два раза, используя каждый раз по 40 куб. см водно-спиртового раствора щелочи и помещая каждый раз на 30 мин. на механический встряхиватель. Пробы центрифугируют в течение 15 мин. при скорости 4000 об./мин., супернатант фильтруют. Экстракты объединяют в концентраторе объемом 250 куб. см. К объединенному экстракту прибавляют 5 куб. см 2 М соляной кислоты и упаривают до водного остатка на ротационном вакуумном испарителе при температуре не выше 30 °С.
Далее проводят очистку экстракта по схеме, указанной в пунктах 9.1.2 - 9.1.6.
Сухой остаток после упаривания растворяют в 5 куб. см гексана и 1 куб. мм пробы вводят в хроматограф.
9.3. Семена рапса
9.3.1. Экстракция
Образец измельченных семян рапса массой 20 г помещают в полипропиленовую банку для экстракции и центрифугирования объемом 200 куб. см, прибавляют 75 куб. см водно-спиртового раствора щелочи и помещают на 30 мин. на аппарат для встряхивания проб. Пробу центрифугируют в течение 15 мин. при скорости 4000 об./мин. и экстракт фильтруют в концентратор объемом 250 куб. см через фильтр "красная лента". Экстракцию повторяют еще два раза, используя каждый раз по 40 куб. см водно-спиртового раствора щелочи и помещая на 30 мин. на аппарат для встряхивания проб. Пробы центрифугируют в течение 15 мин. при скорости 4000 об./мин., супернатант фильтруют. Экстракты объединяют в концентраторе объемом 250 куб. см. К объединенному экстракту прибавляют 5 куб. см 2 М соляной кислоты и упаривают до маслянистого остатка на ротационном вакуумном испарителе при температуре не выше 30 °С.
9.3.2. Очистка экстракта перераспределением в системе несмешивающихся растворителей
К водному остатку в концентраторе, полученному в п. 9.3.1, прибавляют 25 куб. см ацетонитрила, обмывают стенки концентратора и добавляют 25 куб. см дистиллированной воды, переносят в делительную воронку объемом 250 куб. см. Полученную водную фракцию промывают двумя порциями гексана по 30 куб. см каждая, встряхивая делительную воронку 2 мин. После полного разделения фаз в делительной воронке верхний слой (гексан) отбрасывают, а водную фракцию переносят в чистый концентратор объемом 250 куб. см и выпаривают досуха на ротационном вакуумном испарителе при температуре не выше 35 °С.
Далее проводят очистку экстракта по схеме, указанной в пунктах 9.1.2 - 9.1.6.
Сухой остаток после упаривания растворяют в 5 куб. см гексана и 1 куб. мм пробы вводят в хроматограф.
9.4. Масло кукурузы и рапса
9.4.1. Экстракция
Из пробы кукурузного (или рапсового) масла отбирают в полипропиленовую банку для экстракции объемом 250 куб. см навеску массой 20 г, добавляют 50 куб. см гексана и 75 куб. см подкисленного ацетонитрила и помещают на 30 мин. на механический встряхиватель, а затем на 10 мин. в ультразвуковую ванну. Содержимое банки переносят в делительную воронку объемом 250 куб. см, после разделения слоев нижний слой (ацетонитрил) фильтруют через фильтр "красная лента" в концентратор объемом 250 куб. см, а верхний (гексановый) слой возвращают в банку для экстракции. Экстракцию повторяют еще два раза, используя каждый раз по 50 и 50 куб. см подкисленного ацетонитрила и помещая на 30 мин. на механический встряхиватель, а затем на 10 мин. в ультразвуковую ванну.
Объединенный ацетонитрильный экстракт выпаривают досуха на ротационном вакуумном испарителе при температуре не выше 35 °С.
Далее проводят очистку экстракта по схеме, указанной в пунктах 9.1.2 - 9.1.6.
Сухой остаток после упаривания растворяют в 5 куб. см гексана и 1 куб. мм пробы вводят в хроматограф.
9.5. Условия хроматографирования
Хроматограф газовый "Кристалл 2000 м" с электронно-захватным детектором
-14
с пределом детектирования по Линдану 4 х 10 г/куб. см и приспособлениями
для капиллярной колонки. Номер в государственном реестре средств измерений
14516-95.
Колонка хроматографическая капиллярная кварцевая НР-1 (Crosslinked Methyl Siloxane), длина 30 м, внутренний диаметр 0,25 мм, толщина пленки 0,25 мкм.
Температура термостата программированная. Начальная температура - 180 °С, выдержка 2 мин.; нагрев колонки по 10 град./мин. до температуры 240 °С, выдержка 7 мин.
Температура: детектора - 340 °С; испарителя - 260 °С.
Газовый режим - Splitless.
Газ-носитель - гелий (Г1): тип регулятора расхода газа - РРГ 11, линейная скорость - 22 см/с, давление на входе 102,9 кПа.
Газ 2 (Г2) - гелий, расход 1 куб. см/мин., сброс 1:50, начало сброса - 20 с, длительность сброса - 2 мин.
Газ 3 (Г3) - азот (поддув в детектор), расход во время анализа - 45 куб. см/мин.
Продувка системы после анализа при температуре 260 °С в течение 4 мин.: продувка испарителя гелием - 50 куб. см/мин.; продувка детектора азотом - 65 куб. см/мин.
Абсолютное время удерживания Аминопиралида - 10 мин. 11 с +/- 2%.
Объем вводимой пробы: 1 куб. мм.
Линейность детектирования сохраняется в пределах 0,01 - 0,1 нг.
10. Обработка результатов анализа
Содержание Аминопиралида в образцах зеленой массы, зерна и масла кукурузы, семян и масла рапса рассчитывают по формуле:
S х A х V
пр
Х = ------------- х Р,
100 х S х m
ст
где:
X - содержание Аминопиралида в пробе, мг/кг;
S - высота (площадь) пика стандарта, мВ;
ст
S - высота (площадь) пика образца, мВ;
пр
A - концентрация стандартного раствора, мкг/куб. см;
V - объем экстракта, подготовленного для хроматографирования, куб. см;
m - масса анализируемого образца, г;
P - содержание Аминопиралида в аналитическом стандарте, %.
11. Проверка приемлемости результатов
параллельных определений
За результат анализа принимают среднее арифметическое результатов двух параллельных определений, расхождение между которыми не превышает предела повторяемости (1):
2 х |X - X | х 100
1 2
------------------ <= r, (1)
(X + X )
1 2
где:
X , X - результаты параллельных определений, мг/кг;
1 2
r - значение предела повторяемости (табл. 1), при этом
r = 2,8 х сигма .
r
При невыполнении условия (1) выясняют причины превышения предела
повторяемости, устраняют их и вновь выполняют анализ.
12. Оформление результатов
Результат анализа представляют в виде:
_
(X +/- ДЕЛЬТА), мг/кг, при вероятности P = 0,95,
где:
_
X - среднее арифметическое результатов определений, признанных
приемлемыми, мг/кг;
ДЕЛЬТА - граница абсолютной погрешности, мг/кг;
_
дельта х X
ДЕЛЬТА = ----------,
100
где дельта - граница относительной погрешности методики (показатель точности в соответствии с диапазоном концентраций, табл. 1), %.
В случае если содержание компонента менее нижней границы диапазона определяемых концентраций, результат анализа представляют в виде:
"содержание вещества в пробе менее 0,02 мг/кг" <*>.
--------------------------------
<*> 0,02 мг/кг - предел обнаружения.
13. Контроль качества результатов измерений
Оперативный контроль погрешности и воспроизводимости измерений осуществляется в соответствии с ГОСТ Р ИСО 5725-1-6-2002 "Точность (правильность и прецизионность) методов и результатов измерений".
13.1. Стабильность результатов измерений контролируют перед проведением измерений, анализируя один из градуировочных растворов.
13.2. Плановый внутрилабораторный оперативный контроль процедуры выполнения анализа проводится методом добавок.
Величина добавки C должна удовлетворять условию:
д
C = ДЕЛЬТА _ + ДЕЛЬТА _ ,
д л,X л,X'
где +/- ДЕЛЬТА _ (+/- ДЕЛЬТА _ ) - характеристика погрешности
л,X л,X'
(абсолютная погрешность) результатов анализа, соответствующая содержанию
компонента в испытуемом образце (расчетному значению содержания компонента
в образце с добавкой соответственно), мг/кг, при этом:
ДЕЛЬТА = +/- 0,84 ДЕЛЬТА,
л
где ДЕЛЬТА - граница абсолютной погрешности, мг/кг;
_
дельта х X
ДЕЛЬТА = ----------,
100
где дельта - граница относительной погрешности методики (показатель
точности в соответствии с диапазоном концентраций, табл. 1), %.
Результат контроля процедуры К рассчитывают по формуле:
к
_ _
К = X' - X - C ,
к д
_ _
где X', X, C - среднее арифметическое результатов параллельных
д
определений (признанных приемлемыми по п. 11), содержания компонента
в образце с добавкой, испытуемом образце и концентрация добавки
соответственно, мг/кг.
Норматив контроля К рассчитывают по формуле:
_____________________
/ 2 2
К = \/ ДЕЛЬТА _ + ДЕЛЬТА _.
л,X' л,X
Проводят сопоставление результата контроля процедуры (К ) с нормативом
к
контроля (К).
Если результат контроля процедуры удовлетворяет условию:
|К | <= К, (2)
к
процедуру анализа признают удовлетворительной.
При невыполнении условия (2) процедуру контроля повторяют. При
повторном невыполнении условия (2) выясняют причины, приводящие к
неудовлетворительным результатам, и принимают меры по их устранению.
13.3. Проверка приемлемости результатов измерений, полученных в
условиях воспроизводимости.
Расхождение между результатами измерений, выполненных в двух разных
лабораториях, не должно превышать предела воспроизводимости (R):
2 х |X - X | х 100
1 2
------------------- <= R, (3)
(Х + Х )
1 2
где:
X , X - результаты измерений в двух разных лабораториях, мг/кг;
1 2
R - предел воспроизводимости (в соответствии с диапазоном концентраций,
14. Разработчики
Российский государственный аграрный университет - МСХА имени К.А. Тимирязева.
Учебно-научный консультационный центр "Агроэкология пестицидов и агрохимикатов".



Вернуться в "Каталог нормативных документов"



 

Источник информации: https://internet-law.ru/documents/prod/metodicheskie-ukazaniya/3/muk_4_60903.html

 

На эту страницу сайта можно сделать ссылку:

 


 

На правах рекламы: