юридическая фирма 'Интернет и Право'
Основные ссылки




На правах рекламы:



Яндекс цитирования





Произвольная ссылка:



Описание
Источник публикации
М., Федеральный центр гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора, 2010
Примечание к документу
Документ включен в Перечень методов (методик) определения остаточных количеств действующих веществ пестицидов в продукции (товарах), подлежащий государственному санитарно-эпидемиологическому надзору (контролю) на таможенной границе и таможенной территории Евразийского экономического союза (Решение Комиссии Таможенного союза от 28.05.2010 N 299).

Документ введен в действие с 26 марта 2010 года.
Название документа
"МУК 4.1.2591-10. 4.1. Методы контроля. Химические факторы. Определение остаточных количеств аминопиралида в воде, почве, зерне и соломе зерновых колосовых культур методом газожидкостной хроматографии. Методические указания"
(утв. Роспотребнадзором 26.03.2010)

"МУК 4.1.2591-10. 4.1. Методы контроля. Химические факторы. Определение остаточных количеств аминопиралида в воде, почве, зерне и соломе зерновых колосовых культур методом газожидкостной хроматографии. Методические указания"
(утв. Роспотребнадзором 26.03.2010)



Оглавление


Утверждаю
Руководитель Федеральной
службы по надзору в сфере
защиты прав потребителей
и благополучия человека,
Главный государственный
санитарный врач
Российской Федерации
Г.Г.ОНИЩЕНКО
26 марта 2010 года
4.1. МЕТОДЫ КОНТРОЛЯ. ХИМИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ
ОПРЕДЕЛЕНИЕ ОСТАТОЧНЫХ КОЛИЧЕСТВ АМИНОПИРАЛИДА В ВОДЕ,
ПОЧВЕ, ЗЕРНЕ И СОЛОМЕ ЗЕРНОВЫХ КОЛОСОВЫХ КУЛЬТУР
МЕТОДОМ ГАЗОЖИДКОСТНОЙ ХРОМАТОГРАФИИ
МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ
МУК 4.1.2591-10
Дата введения:
26 марта 2010 года
1. Разработаны Российским государственным аграрным университетом - МСХА им. К.А. Тимирязева, Учебно-научным консультационным центром "Агроэкология пестидов и агрохимикатов" Минсельхоза России.
2. Рекомендованы к утверждению Комиссией по государственному санитарно-эпидемиологическому нормированию при Федеральной службе по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (протокол от 03.12.2009 N 3).
3. Утверждены Руководителем Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации Г.Г. Онищенко 26 марта 2010 г.
4. Введены в действие с 26 марта 2010 г.
5. Введены впервые.
Настоящие методические указания устанавливают метод газожидкостной хроматографии для определения концентрации аминопиралида в воде в диапазоне 0,0005 - 0,01 мг/куб. дм и почве - 0,01 - 0,2 мг/кг, а также уровня его остаточных количеств в зерне - 0,01 - 0,2 мг/кг и соломе зерновых колосовых культур в диапазоне 0,04 - 0,8 мг/кг.
Название действующего вещества по ИСО: аминопиралид.
Название действующего вещества по ИЮПАК: 4-амино-3,6-дихлорпиридино-2-карбоновая кислота.
Структурная формула (не приводится).
Эмпирическая формула: C H Cl N O .
6 4 2 2 2
Молекулярная масса: 207,026.
Физическое состояние технического продукта - желтоватый порошок.
-9
Давление насыщенного пара: 9,52 x 10 Па при 20 °C.
Температура плавления: 163,5 - 165,2 °C, разлагается в точке плавления.
Коэффициент перераспределения октанол/вода: K logP = 1,76 при pH 5;
ow
2,87 при pH 7; 2,96 при pH 9 (при температуре 19 °C).
Константа диссоциации pKa 2,56 при 20 °C.
Растворимость в воде при температуре 20 °C: 2,48 г/куб. дм при pH 2,35; 212 г/куб. дм при pH 5; 205 - 203 г/куб. дм при pH 7 и 9. Растворимость в органических растворителях при 20 °C: гептане < 10 мг/куб. см; ксилоле - 0,05, дихлорэтане - 0,15, этилацетате - 4,37, ацетоне - 37,0, метаноле - 66,4 г/кг.
Стабилен к гидролизу при pH 5, 7 и 9 при температуре от 20 до 50 °C.
Фотолитически малостоек, разрушается на свету с периодом полураспада - 0,6 дня.
Устойчив к разложению в почве в анаэробных условиях: DT при 20 °C
50
составляет в среднем 67 дней (от 18 до 143 дней в различных почвах Европы);
DT - от 26 до 116 дней. В аэробных условиях скорость деградации
90
аминопиралида значительно выше: DT в среднем составляет 25 дней (от 8 до
50
35 дней); DT - 84 дня (от 26 до 116 дней). Основным метаболитом является
90
CO как при анаэробном, так и при аэробном разложении аминопиралида.
2
Краткая токсикологическая характеристика: аминопиралид относится к
веществам малоопасным по острой оральной и дермальной токсичности (СД для
50
крыс - более 5000 мг/кг), но умеренно опасным по ингаляционной токсичности
(СК для крыс, 4 ч, более 5500 мг/куб. м. При продолжительном контакте
50
раздражает слизистые оболочки. Малотоксичен для водных организмов (СК для
50
рыб и дафний более 100 мг/куб. дм).
В России установлены следующие гигиенические нормативы:
ПДК в воде - 0,1 мг/куб. дм;
ПДК в почве - 0,2 мг/кг;
МДУ в зерне зерновых культур - 0,1 мг/кг.
Область применения препарата: аминопиралид - гербицид системного ауксиноподобного действия из группы гетерилкарбоновых кислот. Рекомендуется для послевсходовой обработки зерновых культур и пастбищ против широкого спектра широколистных сорняков в смеси с флорасуламом. Норма расхода препарата - 10 - 20 г д.в./га.
1. Метрологическая характеристика метода
При соблюдении всех регламентированных условий проведения анализа в точном соответствии с данной методикой погрешность (и ее составляющие) результатов измерений при доверительной вероятности P = 0,95 не превышает значений, приведенных в табл. 1 для соответствующих диапазонов концентраций.
Таблица 1
МЕТРОЛОГИЧЕСКИЕ ПАРАМЕТРЫ ДЛЯ АМИНОПИРАЛИДА
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
?Анали-? Диапазон ? Показатель ? Стандартное ?Предел ?Предел ?
?зируе-?определяемых ?точности (граница? отклонение ?повторя-?воспроиз- ?
?мый ?концентраций,? относительной ?повторяемости,?емости, ?водимости,?
?объект? мг/кг ? погрешности), ? сигма , % ?r, % ?R, % ?
? ? ? +/- дельта, % ? r ? ? ?
? ? ? P = 0,95 ? ? ? ?
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
?Вода ?менее 0,005 ?150 ?3 ?9 ?10 ?
? ????????????????????????????????????????????????????????????????????
? ?0,005 - 0,01 ?100 ?2 ?6 ?7 ?
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
?Почва ?0,1 - 0,2 ?25 ?5,3 ?15 ?19 ?
? ????????????????????????????????????????????????????????????????????
? ?0,01 - 0,1 ?50 ?4 ?11 ?13 ?
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
?Зерно ?0,1 - 0,2 ?25 ?5,8 ?16 ?20 ?
? ????????????????????????????????????????????????????????????????????
? ?0,01 - 0,1 ?50 ?5 ?14 ?18 ?
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
?Солома?0,1 - 0,8 ?25 ?4,9 ?14 ?17 ?
? ????????????????????????????????????????????????????????????????????
? ?0,04 - 0,1 ?50 ?6,1 ?18 ?22 ?
???????????????????????????????????????????????????????????????????????????
Полнота извлечения вещества, стандартное отклонение, доверительные интервалы среднего результата для полного диапазона концентраций (n = 20) приведены в табл. 2.
Таблица 2
Анали-
зируе-
мый
объект
Метрологические параметры, P = 0,95, n = 20
Предел
обнару-
жения,
мг/кг
Диапазон
определяемых
концентраций,
мг/кг
Среднее
значение
определения, %
Стандартное
отклонение,
S, %
Доверительный
интервал среднего
результата,
+/-, %
Вода
0,0005
0,0005 - 0,01
90,2
1,47
0,78
Почва
0,01
0,01 - 0,2
83,4
1,53
0,88
Зерно
0,01
0,01 - 0,2
84,6
1,74
0,98
Солома
0,05
0,04 - 0,8
78,0
1,35
0,83
2. Метод измерения
Метод основан на определении аминопиралида методом газожидкостной хроматографии с использованием детектора по захвату электронов после гидролиза пробы и экстракции аминопиралида щелочным этанолом из проб зерна и соломы, подкисленным ацетонитрилом из почвы и очистки экстрактов на патронах Диапак C16, Диапак П и колонках с флоризилом.
Идентификация проводится по времени удерживания. Количественное определение - методом абсолютной калибровки.
В предлагаемых условиях анализа метод специфичен. Избирательность обеспечивается путем подбора капиллярной колонки и условий программирования температуры.
3. Средства измерений, реактивы, вспомогательные
устройства и материалы
3.1. Средства измерений
Весы аналитические "OHAUS", ЕР 114 с наибольшим
пределом взвешивания до 110 г и дискретностью
0,0001 г, класс точности - специальный (I) ГОСТ 24104-1
Весы лабораторные общего назначения
с наибольшим пределом взвешивания
до 600 г и пределом допустимой погрешности
+/- 0,038 г "ACCULAB" V600
Колбы мерные на 25, 50, 100 и 1000 куб. см ГОСТ 1770-74
Микрошприц на 10 куб. мм ТУ 2.833.106
Пипетки градуированные вместимостью
1, 2, 5 и 10 куб. см ГОСТ 29227-91
Хроматограф газовый "Кристалл 2000м"
с детектором по захвату электронов (ЭЗД)
с пределом детектирования по Линдану
-14
4 x 10 г/куб. см и приспособлениями
для капиллярной колонки
Номер в Государственном реестре средств измерений N 14516-95
Цилиндры мерные на 10, 25 и 50 куб. см ГОСТ 1770-74
Допускается использование средств измерения с аналогичными или лучшими характеристиками.
3.2. Реактивы
Аминопиралид, CAS 150114-71-9 - аналитический
стандарт чистотой не менее 98,0%
Азот, ос.ч. ГОСТ 9293-74
Ацетон, х.ч. ТУ 6-09-3513-86
Ацетонитрил, ч.д.а. ТУ 6-09-3534-87
Бутанол, х.ч., свежеперегнанный ГОСТ 6006-78
Вода бидистиллированная (бидистиллят),
деионизированная или перегнанная над KMnO ГОСТ 6709-72
4
н-Гексан, ч. ТУ 6-09-3375-78
Гелий очищенный, марки "А" ТУ 51-940-80
Калий марганцовокислый (перманганат), х.ч. ГОСТ 20490-75
Кальций хлористый, безводный, х.ч. ТУ 6-09-4711-81
Кислота серная концентрированная, ос.ч. ГОСТ 14262-78
Кислота хлороводородная
концентрированная, х.ч. ГОСТ 3118-77
Кислота уксусная концентрированная, ос.ч. ГОСТ 18270-72
Натрий сернокислый безводный, х.ч. ГОСТ 4166-76
Натрия гидроксид, х.ч. ГОСТ 4328-77
Патроны концентрирующие Диапак C16
и Диапак П (0,6 г), фирма "БиоХимМак", МГУ ТУ 4215-002-05451931-94
Спирт метиловый, х.ч. ГОСТ 6995
Спирт этиловый, ректифицированный ТУ 6-09-1710-77
Флоризил(R) (Магния силикат, 99%,
CAS 1343-88-0) для колоночной хроматографии,
зернение 60/100 меш, фирмы "Флюка"
Допускается использование реактивов иных производителей с аналогичными или лучшими характеристиками.
3.3. Вспомогательные устройства и материалы
Алонж прямой с отводом для вакуума для работы
с концентрирующими патронами Диапак
Аппарат для встряхивания проб
"SKLO UNION TYP LT1"
Банки с крышками для экстракции на 250 куб. см,
полипропилен, кат. N 3120-0250, NALGENE
Блок нагревательный для виал,
Dri-Block DB-3, Tecam
Ванна ультразвуковая "UNITRA"
UNIMA OLSZTYN UM-4
Виалы (пузырьки) с тефлоновыми прокладками
емкостью 40 куб. см, кат. N Z 27,702-9, Aldrich
Воронки лабораторные стеклянные ГОСТ 25336-82
Воронки делительные на 250 куб. см ГОСТ 25336-82
Испаритель ротационный Rota vapor
R110 Buchi с водяной баней
Колбы конические плоскодонные
на 100 и 250 куб. см ГОСТ 25336-82
Колонка хроматографическая капиллярная кварцевая
HP-5 (5% Фенил и 95% метилсилоксана),
длина 15 м, внутренний диаметр 0,32 мм,
толщина пленки 0,25 мкм,
фирмы "Хьюлетт Паккард"
Колбы круглодонные со шлифом
(концентраторы) на 100 и 250 куб. см, ТС ТУ 92-891.029-91
Насос диафрагменный FT.19 фирмы
"KNF Neu Laboport"
Стаканы стеклянные термостойкие
объемом 100 - 500 куб. см ГОСТ 25336-82
Установка для перегонки растворителей
Фильтры бумажные "синяя лента" ТУ 6-09-1678-86
Шприц медицинский с разъемом типа Люер,
объемом не менее 10 куб. см
Допускается применение хроматографических колонок и другого оборудования с аналогичными или лучшими техническими характеристиками.
4. Требования безопасности
4.1. При выполнении измерений необходимо соблюдать требования техники безопасности при работе с химическими реактивами по ГОСТ 12.1.007, требования электробезопасности при работе с электроустановками по ГОСТ 12.1.019, а также требования, изложенные в технической документации на газовый хроматограф.
4.2. Помещение должно соответствовать требованиям пожаробезопасности по ГОСТ 12.1.004 и иметь средства пожаротушения по ГОСТ 12.4.009. Содержание вредных веществ в воздухе не должно превышать норм, установленных ГН 2.2.5.1313-03 "Предельно допустимые концентрации (ПДК) вредных веществ в воздухе рабочей зоны". Организация обучения работников безопасности труда - по ГОСТ 12.0.004.
5. Требования к квалификации операторов
К выполнению измерений допускают специалистов, имеющих квалификацию не ниже лаборанта-исследователя, с опытом работы на газовом хроматографе.
К проведению пробоподготовки допускают оператора с квалификацией "лаборант", имеющего опыт работы в химической лаборатории.
6. Условия измерений
При выполнении измерений соблюдают следующие условия:
- процессы приготовления растворов и подготовки проб к анализу проводят при температуре воздуха (20 +/- 5) °C и относительной влажности не более 80%;
- выполнение измерений на газовом хроматографе проводят в условиях, рекомендованных технической документацией к прибору.
7. Подготовка к выполнению определений
Выполнению измерений предшествуют следующие операции: очистка растворителей (при необходимости), приготовление растворов, кондиционирование хроматографической колонки, подготовка концентрирующих патронов Диапак для очистки экстракта, проверка хроматографического поведения вещества на патронах, построение калибровочной кривой.
7.1. Подготовка органических растворителей
7.1.1. Очистка ацетонитрила. Ацетонитрил перегоняют.
7.1.2. Очистка гексана. Гексан встряхивают с концентрированной серной кислотой, промывают бледно-розовым водным раствором марганцовокислого калия (в 100 куб. см воды растворяют несколько кристаллов марганцовокислого калия) до тех пор, пока раствор не перестанет обесцвечиваться, затем промывают водой, сушат над безводным хлористым кальцием и перегоняют.
7.1.3. Очистка ацетона. Ацетон перегоняют над небольшим количеством марганцовокислого калия.
7.2. Приготовление рабочих растворов
7.2.1. Приготовление деионизированной воды
Деионизированную воду получают при кипячении бидистиллированной воды в течение 6 ч с марганцовокислым калием, добавленным из расчета 1 г/л, и затем перегоняют.
7.2.2. Приготовление 10%-го водного раствора едкого натра
На лабораторных весах общего назначения взвешивают 100 г едкого натра и в вытяжном шкафу осторожно пересыпают навеску в термостойкий стакан объемом 500 куб. см, содержащий примерно 350 куб. см бидистиллированной воды, тщательно размешивая раствор. Полученный раствор охлаждают до комнатной температуры и переносят в мерную колбу объемом 1000 куб. см. Объем доводят до метки бидистиллированной водой, охлаждая колбу.
7.2.3. Приготовление водноспиртового раствора щелочи
Водноспиртовой раствор щелочи готовят путем смешивания 950 куб. см этилового спирта и 50 куб. см 10% водного раствора едкого натра.
7.2.4. Подготовка бутилирующей смеси
Бутилирующую смесь готовят в мерной колбе на 100 куб. см в вытяжном шкафу. Наливают в колбу 50 - 60 куб. см бутанола, осторожно приливают пипеткой 2 куб. см концентрированной серной кислоты, доводят объем до метки бутанолом и перемешивают содержимое.
7.3. Приготовление стандартных растворов
Взвешивают 50 мг аминопиралида в мерной колбе на 50 куб. см, растворяют навеску в ацетоне и доводят объем до метки ацетоном (стандартный раствор N 1, концентрация 1 мг/куб. см). Стандартный раствор N 1 можно хранить в холодильнике в течение 6 месяцев. Методом последовательного разбавления готовят стандартный раствор аминопиралида в ацетоне с концентрацией 100; 10; 1,0 и 0,1 мкг/куб. см для построения калибровочного графика и внесения в контрольный образец.
Для построения калибровочного графика отбирают пипеткой 1 куб. см стандартного раствора аминопиралида с концентрацией 10 мкг/куб. см, помещают его в виалу и удаляют растворитель током теплого воздуха или азота. Проводят бутилирование, как указано в разделе 7.3.1. После бутилирования слой гексана отбирают пипеткой и помещают в чистую виалу. Полученный раствор имеет концентрацию 1,0 мкг/куб. см. Далее методом последовательного разбавления этого раствора гексаном готовят стандартные растворы с концентрацией 0,1; 0,05; 0,1 и 0,005 мкг/куб. см.
7.3.1. Бутилирование
Бутилирование проводят в вытяжном шкафу. К сухому остатку в виале добавляют 2 см 2%-го раствора концентрированной серной кислоты в бутаноле (раздел 2.4.1.3). Плотно закрывают виалу крышкой, помещают в блок для виал, нагретый до 100 °C, и оставляют на 30 мин. Далее виалу вынимают из блока, охлаждают до комнатной температуры, добавляют 10 куб. см гексана и 25 - 30 куб. см дистиллированной воды. Смесь интенсивно встряхивают и после разделения фаз из верхнего гексанового слоя аликвоту 1 мкл вводят в хроматограф.
7.4. Подготовка концентрирующих патронов Диапак и колонок
с флоризилом и изучение хроматографического
поведения аминопиралида
7.4.1. Подготовка патронов Диапак C16
Патрон устанавливают на алонж с отводом для вакуума, сверху в патрон вставляют шприц с разъемом типа Люер объемом не менее 10 куб. см, который используют как емкость для элюента. Патрон промывают последовательно 10 куб. см ацетонитрила и 10 куб. см деионизированной воды. Промывку проводят под вакуумом непосредственно перед очисткой экстрактов образцов со скоростью не более 2 куб. см/мин., не допуская высыхания поверхности патрона.
7.4.2. Подготовка патронов Диапак П
Патрон промывают последовательно 10 куб. см метанола и 10 куб. см деионизированной воды, не допуская высыхания поверхности патрона.
7.4.3. Изучение хроматографического поведения
аминопиралида на патроне Диапак П
Помещают в стакан 1 куб. см стандартного раствора аминопиралида с концентрацией 1 мкг/куб. см и удаляют растворитель током теплого воздуха или азота. Добавляют к сухому остатку 2 куб. см 1 н раствора соляной кислоты, 5 куб. см деионизированной воды и помещают стаканчик на 1 мин. в ультразвуковую ванну. Содержимое стаканчика наносят на кондиционированный патрон. Смыв отбрасывают.
Промывают патрон последовательно 30 куб. см деионизированной воды и 20 куб. см 1%-го водного раствора уксусной кислоты, смывы отбрасывают.
Элюируют аминопиралид 1%-ным раствором уксусной кислоты в метаноле, пропуская через патрон 4 - 5 порций раствора по 5 куб. см каждая и собирая их в отдельные концентраторы емкостью 100 куб. см. Собранные фракции выпаривают досуха. В каждый концентратор добавляют 4 куб. см бутилирующей смеси, обмывают стенки концентратора и выдерживают 1 - 2 мин. в ультразвуковой ванне. Отбирают пипеткой 2 куб. см раствора из концентратора и переносят его в виалу. Виалу плотно закрывают крышкой и помещают на 30 мин. в нагревательный блок для бутилирования аминопиралида.
Далее виалу вынимают из блока, охлаждают до комнатной температуры, добавляют 10 куб. см гексана и 25 - 30 куб. см дистиллированной воды. Смесь интенсивно встряхивают и после разделения фаз из верхнего гексанового слоя аликвоту 1 куб. мм вводят в хроматограф.
После введения бутилированных проб в хроматограф рассчитывают содержание вещества в элюате, определяют полноту смыва с патрона и необходимый объем элюата.
7.4.4. Подготовка колонки с флоризилом
В пластмассовую колонку длиной 15 см и диаметром 1,5 см помещают на дно стекловату и заполняют 5 г флоризила 60/100 меш, уплотняя его путем вибрации колонки. На слой флоризила наносят слой безводного сернокислого натрия толщиной 1 см. За день до определения флоризил в колонке промывают 20 куб. см ацетона, а в день определения - 10 куб. см гексана.
7.4.5. Проверка хроматографического поведения
бутилированного аминопиралида на колонке с флоризилом
Отбирают пипеткой 5 куб. см раствора бутилированного аминопиралида в гексане с концентрацией 1 мкг/куб. см (см. раздел 7.3) и наносят его на колонку. Промывают колонку последовательно 10 куб. см гексана и 10 куб. см смеси гексан:ацетон - 9:1, смывы отбрасывают.
После этого пропускают через колонку 3 - 4 порции смеси гексан:ацетон - 1:1 по 5 куб. см каждая, собирая их в отдельные концентраторы. Собранные фракции выпаривают досуха на ротационном вакуумном испарителе при температуре не выше 35 °C. Сухой остаток в концентраторе разводят в 10 куб. см гексана и вводят в хроматограф 1 куб. мм пробы. После введения проб в хроматограф рассчитывают содержание вещества в элюате, определяют полноту смыва с колонки и необходимый объем элюата.
8. Отбор проб и хранение
ИС NORMPROD: примечание.
В официальном тексте документа, видимо, допущена опечатка: стандарт имеет номер ГОСТ 17.4.3.01-83, а не ГОСТ 1743.01-83.
Отбор проб производится в соответствии с "Унифицированными правилами отбора проб сельскохозяйственной продукции, пищевых продуктов и объектов окружающей среды для определения микроколичеств пестицидов" от 21.08.79 N 2051-79, а также в соответствии с ГОСТ Р 51592-2000 "Вода. Общие требования к отбору проб", ГОСТ 1743.01-83 "Почвы. Общие требования к отбору проб", ГОСТ 26950-89 "Почвы. Отбор проб", ГОСТ 13586.3-83 "Зерно. Правила приемки и методы отбора проб", ГОСТ Р 50436-92 (ИСО 950-79) "Зерновые. Отбор проб зерна" и ГОСТ 27262 "Корма растительного происхождения. Методы отбора проб".
Пробы воды хранят в стеклянной герметично закрытой таре в холодильнике при температуре 4 °C; пробы почвы - в полиэтиленовой таре в морозильнике при температуре -18 °C.
Отобранные пробы зерна и соломы подсушивают до стандартной влажности и хранят в бумажных или тканевых мешочках в сухом, хорошо проветриваемом шкафу, недоступном для грызунов.
Для длительного хранения пробы почвы подсушивают при комнатной температуре в отсутствие прямого солнечного света. Сухие почвенные образцы могут храниться в темной таре в течение года. Перед анализом сухую почву просеивают через сито с отверстиями диаметром 1 мм.
9. Проведение определений
9.1. Вода
Пробу воды объемом 200 куб. см фильтруют в коническую колбу емкостью 250 куб. см через бумажный фильтр "синяя лента" и подкисляют 2 н соляной кислотой до pH = 1.
9.1.1. Очистка пробы воды на патроне Диапак П
Всю пробу воды пропускают со скоростью не более 2 куб. см/мин. через предварительно кондиционирующий патрон Диапак П (раздел 7.4.2). Затем промывают патрон 20 куб. см 1%-го водного раствора уксусной кислоты. Смыв отбрасывают. Элюируют аминопиралид 20 куб. см 1%-го раствора уксусной кислоты в метаноле, собирая элюат в концентратор. Пробу выпаривают досуха на ротационном вакуумном испарителе при температуре не выше 35 °C.
9.1.2. Бутилирование пробы воды
Добавляют в концентратор 4 куб. см бутилирующей смеси, обмывают стенки концентратора и помещают его на 1 - 2 мин. в ультразвуковую ванну. Отбирают пипеткой 2 куб. см пробы, переносят в виалу. Закрывают виалу крышкой, помещают ее в блок для виал, нагретый до 100 °C, и оставляют на 30 мин. Далее виалу вынимают из блока, охлаждают до комнатной температуры, добавляют 10 куб. см гексана и 25 - 30 куб. см дистиллированной воды. Смесь интенсивно встряхивают и после разделения фаз из верхнего гексанового слоя аликвоту 1 куб. мм вводят в хроматограф.
В случае недостаточной очистки пробы воды на патроне Диапак П используют для очистки бутилированной пробы колонку с флоризилом.
9.1.3. Очистка пробы воды на колонке с флоризилом
На подготовленную (как указано в разделе 7.4.4) колонку наносят 5 куб. см (1/2 часть) бутилированной пробы в гексане, отобранной из виалы. Промывают колонку последовательно 10 куб. см гексана и 10 куб. см смеси гексан:ацетон - 9:1. Смывы отбрасывают.
Элюируют аминопиралид 15 куб. см смеси гексан:ацетон - 1:1. Элюат выпаривают досуха на ротационном вакуумном испарителе при температуре не выше 35 °C. Сухой остаток разводят в 5 куб. см гексана и вводят в хроматограф 1 куб. мм пробы.
9.2. Почва
9.2.1. Экстракция
Навеску почвы (10 г) помещают в центрифужную банку емкостью 200 куб. см, заливают 50 куб. см смеси ацетонитрил:0,1 н соляная кислота - 1:1 и встряхивают в течение 30 мин. По окончании встряхивания пробу центрифугируют 15 мин. при скорости 4000 об./мин. Фильтруют экстракт в концентратор емкостью 250 куб. см через бумажный фильтр ("синяя лента"). Повторяют экстракцию еще 2 раза, встряхивая пробу по 15 мин. и заливая навеску каждый раз 30 куб. см смеси. Объединенный экстракт выпаривают досуха на ротационном вакуумном испарителе при температуре не выше 35 °C.
Добавляют в концентратор 2 куб. см ацетонитрила и 8 куб. см дистиллированной воды (соотношение ацетонитрил:вода - 1:4), обмывают стенки концентратора, помещают его на 1 - 2 мин. в ультразвуковую ванну (при необходимости объединенный экстракт можно оставить на ночь). Затем экстракт очищают на патроне Диапак C16.
9.2.2. Очистка пробы почвы на патроне Диапак C16
Пробу пропускают через кондиционированный (раздел 7.4.1) патрон со скоростью не выше 2 куб. см/мин., собирая весь элюат в концентратор емкостью 100 куб. см. Содержимое концентратора упаривают на ротационном вакуумном испарителе при температуре не выше 35 °C до объема 1 - 2 куб. см. Добавляют в концентратор 5 куб. см деионизированной воды, перемешивают содержимое и помещают концентратор на 1 - 2 мин. в ультразвуковую ванну. Далее очищают пробу на патроне Диапак П.
9.2.3. Очистка пробы почвы на патроне Диапак П
Наносят пробу на кондиционированный патрон (раздел 7.4.2). Промывают патрон последовательно 20 куб. см деионизированной воды и 20 куб. см 1%-го водного раствора уксусной кислоты. Смывы отбрасывают.
Элюируют аминопиралид 20 куб. см 1%-го раствора уксусной кислоты в метаноле. Элюат собирают в концентратор (при необходимости элюат можно оставить на ночь) и выпаривают содержимое досуха на ротационном вакуумном испарителе при температуре не выше 35 °C.
Далее проводят бутилирование пробы, как указано в разделе 9.1.2.
После бутилирования пробу очищают на колонке с флоризилом, как указано в разделе 9.1.3. Элюат выпаривают досуха на ротационном вакуумном испарителе при температуре не выше 35 °C. Сухой остаток разводят в 5 куб. см гексана и вводят в хроматограф 1 куб. мм пробы.
9.3. Зерно пшеницы
9.3.1. Экстракция и предварительная очистка
Навеску зерна (10 г) в полипропиленовой банке емкостью 200 куб. см тщательно смачивают 5 куб. см дистиллированной воды. Для экстракции аминопиралида щелочного гидролиза белков и для разрушения конъюгатов добавляют к пробе 50 куб. см водноспиртового раствора щелочи и встряхивают банку 30 мин. По окончании встряхивания центрифугируют пробу 15 мин. при скорости 4000 об./мин. Фильтруют экстракт в концентратор емкостью 250 куб. см через бумажный фильтр ("синяя лента"), смоченный дистиллированной водой. Повторяют экстракцию еще 2 раза, встряхивая пробу по 15 мин. и заливая навеску каждый раз 30 куб. см щелочного этанола.
К объединенному экстракту добавляют 3 куб. см 2 н соляной кислоты (при необходимости объединенный экстракт можно оставить на ночь) и выпаривают экстракт досуха на ротационном вакуумном испарителе при температуре 35 - 40 °C. (Внимание! Последующий этап анализа следует проводить только в вытяжном шкафу!)
Добавляют в концентратор 4 куб. см концентрированной серной кислоты и тщательно обмывают стенки концентратора. Оставляют концентратор на 10 мин. По истечении этого времени осторожно наливают в концентратор 20 куб. см дистиллированной воды, перемешивают его содержимое и охлаждают раствор до комнатной температуры.
Затем добавляют в концентратор 25 куб. см 20%-го раствора едкого натра до pH 1, перемешивают раствор в концентраторе и упаривают его на ротационном вакуумном испарителе при температуре не выше 35 °C до объема 1 - 2 куб. см.
Остаток в концентраторе разводят 10 куб. см метанола, обмывают стенки концентратора и помещают на 1 мин. в ультразвуковую ванну. Содержимое концентратора фильтруют в чистый концентратор емкостью 250 куб. см через стеклянную воронку с небольшим количеством (2 - 3 г) безводного сернокислого натрия. Во избежание потерь тщательно обмывают концентратор еще 3 раза: двумя порциями по 10 куб. см 1%-го раствора уксусной кислоты в метаноле и 10 куб. см метанола, каждый раз помещая концентратор в ультразвуковую ванну. Все порции объединяют в один концентратор, пропуская их через безводный сульфат натрия, и упаривают на ротационном вакуумном испарителе при температуре не выше 35 °C до объема 0,5 - 1,0 куб. см.
9.3.2. Очистка пробы зерна на патроне Диапак C16
К остатку в концентраторе добавляют 2 куб. см ацетонитрила, перемешивают содержимое, обмывая стенки концентратора. Затем приливают в концентратор 8 куб. см воды, еще раз перемешивают содержимое, выдерживают концентратор в ультразвуковой ванне 1 - 2 мин. и пропускают раствор через кондиционированный патрон, собирая смыв в концентратор емкостью 100 куб. см. Обмывают концентратор второй порцией тех же растворителей, пропускают смесь через патрон и собирают ее в концентратор, объединив с первой порцией. Объединенные смывы упаривают до объема 1 - 2 куб. см на ротационном вакуумном испарителе при температуре не выше 35 °C.
Приливают в концентратор 5 куб. см деионизированной воды, перемешивают содержимое и помещают концентратор на 1 - 2 мин. в ультразвуковую ванну.
Далее очищают пробу на патроне Диапак П, как указано в разделе 9.2.3. Затем проводят бутилирование (раздел 9.1.2).
После бутилирования очищают пробу на колонке с флоризилом (раздел 9.1.3). Элюат выпаривают досуха на ротационном вакуумном испарителе при температуре не выше 35 °C. Сухой остаток разводят в 5 куб. см гексана и вводят в хроматограф 1 куб. мм пробы.
9.4. Солома пшеницы
Навеску соломы (5 г) в полипропиленовой банке емкостью 200 куб. см смачивают 10 куб. см дистиллированной воды, добавляют 70 куб. см водноспиртового раствора щелочи и встряхивают 30 мин. По окончании встряхивания фильтруют экстракт в концентратор емкостью 250 куб. см через бумажный фильтр ("синяя лента"), смоченный дистиллированной водой. Повторяют экстракцию еще 2 раза, встряхивая пробу по 15 мин. и заливая навеску каждый раз 50 куб. см водноспиртового раствора щелочи.
К объединенному экстракту добавляют 6 куб. см 2 н соляной кислоты и выпаривают экстракт на ротационном вакуумном испарителе досуха при температуре 35 - 40 °C. (Внимание! Последующий этап анализа следует проводить только в вытяжном шкафу!)
Добавляют в концентратор 4 куб. см концентрированной серной кислоты и тщательно обмывают стенки концентратора. Оставляют концентратор на 10 мин. По истечении этого времени осторожно наливают в концентратор 20 куб. см дистиллированной воды, перемешивают его содержимое и охлаждают раствор до комнатной температуры.
Затем добавляют в концентратор 25 куб. см 20%-го раствора едкого натра до pH 1, перемешивают раствор в концентраторе и упаривают его на ротационном вакуумном испарителе при температуре не выше 35 °C до объема 1 - 2 куб. см.
Остаток в концентраторе разводят 10 куб. см метанола, обмывают стенки концентратора и помещают на 1 мин. в ультразвуковую ванну. Содержимое концентратора фильтруют в чистый концентратор емкостью 250 куб. см через стеклянную воронку с небольшим количеством (2 - 3 г) безводного сернокислого натрия. Во избежание потерь тщательно обмывают концентратор еще 3 раза: двумя порциями по 10 куб. см 1%-го раствора уксусной кислоты в метаноле и 10 куб. см метанола, каждый раз помещая концентратор в ультразвуковую ванну. Все порции объединяют в один концентратор, пропуская их через безводный сульфат натрия, и упаривают на ротационном вакуумном испарителе при температуре не выше 35 °C до объема 0,5 - 1,0 куб. см.
Далее очищают пробу, как указано в разделе 9.3.
После очистки пробы на колонке с флоризилом и выпаривания сухой остаток разводят в 10 куб. см гексана и вводят в хроматограф 1 куб. мм пробы.
9.5. Условия хроматографирования
Хроматограф "Кристалл 2000м" с детектором постоянной скорости
63
рекомбинации ионов Ni, с пределом детектирования по Линдану не выше
-14
4 x 10 .
Колонка капиллярная кварцевая HP-5, длина 15 м, внутренний диаметр 0,32 мм, толщина пленки 0,25 мкм.
Температура термостата колонки программированная. Начальная температура - 150 °C, выдержка 2 мин.; нагрев колонки по 10°/мин до температуры 200 °C, выдержка 2 мин., нагрев колонки по 5°/мин. до 220 °C, выдержка 5 мин.
Температура испарителя - 260 °C, детектора - 350 °C.
Газовый режим работы - Splitless.
Регулятор расхода гелия: тип регулятора - РРГ-11; минимальный расход гелия - 20 куб. см/мин.; длительность сброса - 2 мин.
Газ 1 - гелий, расход - 0,5 куб. см/мин., линейная скорость - 20 см/с, давление на входе - 26,66 кПа.
Газ 2 - гелий (продувка испарителя), сброс 1:100, начало сброса - 30 с, расход - 50 куб. см/мин.
Газ 3 - азот (поддув в детектор), расход во время анализа - 45 куб. см/мин.
Продувка детектора азотом - 65 куб. см/мин. после анализа при температуре 270 °C в течение 5 мин.
Абсолютное время удерживания аминопиралида - 11,08 - 11,15 мин.
Объем вводимой пробы - 1 куб. мм.
Линейность детектирования сохраняется в пределах 0,01 - 0,2 нг.
Каждую анализируемую пробу вводят в хроматограф 3 раза и вычисляют среднюю площадь пика. Образцы, дающие пики больше, чем стандартный раствор с концентрацией 0,2 мкг/куб. см, разбавляют.
10. Обработка результатов
Для обработки результатов хроматографического анализа используется программа сбора и обработки хроматографической информации "Хроматэк Аналитик", версия 1.20.
Альтернативная обработка результатов.
Содержание аминопиралида в пробах воды, почвы, зерна и соломы пшеницы при анализе методом ГЖХ рассчитывают методом абсолютной калибровки по формуле:
S x A x V x D
1
X = -------------- x P,
S x m x 100
0
где:
X - содержание аминопиралида в пробе, мг/кг;
S - площадь пика образца, мВ;
1
S - площадь пика стандарта, мВ;
0
A - концентрация стандартного раствора, мкг/куб. см;
V - объем экстракта, подготовленного для хроматографирования (куб. см);
m - масса или объем анализируемого образца, г или куб. см;
D - коэффициент пересчета на взятие аликвоты;
P - содержание аминопиралида в аналитическом стандарте, мг/кг.
11. Проверка приемлемости результатов
параллельных определений
За результат анализа принимают среднее арифметическое результатов двух параллельных определений, расхождение между которыми не превышает предела повторяемости:
2 x |X - X | x 100
1 2
------------------- <= r, (1)
(X + X )
1 2
где:
Х , Х - результаты параллельных определений, мг/кг;
1 2
r - значение предела повторяемости (табл. 1) (r = 2,8 сигма ).
r
12. Оформление результатов
Результат анализа представляют в виде:
_
(X +/- ДЕЛЬТА), мг/кг, при вероятности P = 0,95,
где:
_
X - среднее арифметическое результатов определений, признанных
приемлемыми, мг/кг;
ДЕЛЬТА - граница абсолютной погрешности, мг/кг;
_
дельта x X
ДЕЛЬТА = ----------,
100
где дельта - граница относительной погрешности методики (показатель точности в соответствии с диапазоном концентраций, табл. 1), %.
В случае, если содержание компонента менее нижней границы диапазона определяемых концентраций, результат анализа представляют в виде:
"содержание вещества в пробе менее 0,01 мг/кг" <*>.
--------------------------------
<*> 0,01 мг/кг - предел обнаружения.
13. Контроль качества результатов измерений
Оперативный контроль погрешности и воспроизводимости измерений осуществляется в соответствии с ГОСТ Р ИСО 5725-1-6-2002 "Точность (правильность и прецизионность) методов и результатов измерений".
13.1. Стабильность результатов измерений контролируют перед проведением измерений, анализируя один из градуировочных растворов.
13.2. Плановый внутрилабораторный оперативный контроль процедуры выполнения анализа проводится с применением метода добавок.
Величина добавки С должна удовлетворять условию:
д
С = ДЕЛЬТА _ + ДЕЛЬТА _ ,
д л,X л,X'
где +/- ДЕЛЬТА _ (+/- ДЕЛЬТА _ ) - характеристика погрешности
л,X л,X'
(абсолютная погрешность) результатов анализа, соответствующая содержанию
компонента в испытуемом образце (расчетному значению содержания компонента
в образце с добавкой соответственно), мг/кг, при этом:
ДЕЛЬТА = +/- 0,84 ДЕЛЬТА,
л
где ДЕЛЬТА - граница абсолютной погрешности, мг/кг;
_
дельта x X
ДЕЛЬТА = ----------,
100
где дельта - граница относительной погрешности методики (показатель
точности в соответствии с диапазоном концентраций, табл. 1), %.
Результат контроля процедуры К рассчитывают по формуле:
к
_ _
К = X' - X - С ,
к д
_ _
где X', X, С - среднее арифметическое результатов параллельных
д
определений (признанных приемлемыми по п. 11) содержания компонента в
образце с добавкой, испытуемом образце и концентрация добавки
соответственно, мг/кг.
Норматив контроля К рассчитывают по формуле:
_____________________
/ 2 2
К = \/ДЕЛЬТА _ + ДЕЛЬТА _.
л,X' л,X
Проводят сопоставление результата контроля процедуры (К ) с нормативом
к
контроля (К).
Если результат контроля процедуры удовлетворяет условию:
|К | <= К, (2)
к
процедуру анализа признают удовлетворительной.
При невыполнении условия (2) процедуру контроля повторяют. При повторном невыполнении условия (2) выясняют причины, приводящие к неудовлетворительным результатам, и принимают меры к их устранению.
13.3. Проверка приемлемости результатов измерений, полученных в условиях воспроизводимости:
Расхождение между результатами измерений, выполненных в двух разных лабораториях, не должно превышать предела воспроизводимости (R):
2 x |X - X | x 100
1 2
------------------- <= R,
(X + X )
1 2
где:
X , X - результаты измерений в двух разных лабораториях, мг/кг;
1 2
R - предел воспроизводимости (в соответствии с диапазоном концентраций,



Вернуться в "Каталог нормативных документов"



 

Источник информации: https://internet-law.ru/documents/prod/metodicheskie-ukazaniya/4/muk_4_68545.html

 

На эту страницу сайта можно сделать ссылку:

 


 

На правах рекламы: