![]() Рис. 1. Внешний вид Beauveria bassiana sp.
Мицелиальный гриб образует практически одинаковые колонии на среде Сабуро и картофельно-декстрозном агаре, достигающие 25 - 30 мм в диаметре на 10 сутки роста при 23 °C. Колонии войлочные, плотно прилегающие к поверхности среды, белого цвета, обладают слабым невнятным запахом. С возрастом поверхность колоний становится мучнистой. Обратная сторона колонии имеет желтоватую окраску, растворимый пигмент отсутствует.
При микроскопировании обнаруживаются септированные, разветвленные, бесцветные вегетативные гифы с гладкими стенками, 1 - 2 мкм шириной. Конидиеносцы образуются латерально на воздушных гифах.
Конидиогенные клетки расположены одиночно, парами или пучками, с расширенным основанием и тонкой вытянутой вершиной с зигзагообразным недетерминированным рахисом (окончанием), несущим одиночные шаровидные гладкие конидии шириной 2 - 3 мкм.
Конидии бесцветные, несептированные, с тонкими гладкими стенками, имеют размер 2 - 3 мкм, форму, близкую к сферической, иногда со слабозаметной выемкой у основания. В массе конидии белого цвета, агрегированы в сферические кластеры среди воздушного мицелия.
Штамм Beauveria bassiana ОРВ-43 по критериям вирулентности, токсичности, токсигенности и диссеминации относится к непатогенным микроорганизмам для теплокровных животных. Он не является фитопатогеном, а также не входит в состав 4 групп патогенности в соответствии с санитарно-эпидемиологическими правилами СП 1.3.2322-08 "Безопасность работы с микроорганизмами" в редакции Дополнений и изменений N 2, утвержденных Постановлением Главного государственного санитарного врача Российской Федерации от 29.06.2011 N 86.
Предельно допустимая концентрация (ПДК) в воздухе рабочей зоны - 50 000 кл./м3.
Методика обеспечивает выполнения измерений количества клеток в воздухе рабочей зоны в диапазоне концентраций от 50 до 500 000 клеток в 1 м3 воздуха при доверительной вероятности 0,95.
Метод основан на аспирации из воздуха производственных помещений конидий и/или бластоспор гриба на среду Сабуро и подсчета количества выросших колоний по типичным культурально-морфологическим признакам.
реактивы и материалы
При выполнении измерений применяют следующие средства измерений, вспомогательные устройства и материалы, реактивы и питательные среды.
5.1. Средства измерений
Примечание. Допускается использование средств измерения с аналогичными или лучшими характеристиками.
5.2. Вспомогательные устройства и материалы
Примечание. Допускается применение оборудования и материалов с аналогичными или лучшими техническими характеристиками.
5.3. Реактивы и питательные среды
Примечание. Допускается использование других питательных сред и диагностических препаратов с аналогичными характеристиками.
При выполнении измерений концентрации клеток в воздухе рабочей зоны соблюдают следующие требования.
6.1. СП 1.3.2322-08 "Безопасность работы с микроорганизмами III - IV групп патогенности (опасности) и возбудителями паразитарных болезней".
6.2. СП 1.3.2518-09 Дополнения и изменения N 1 к СП 1.3.2322-08.
6.3. Правила техники безопасности при работе с химическими реактивами по ГОСТ 12.1.007-76.
6.4. Требования по электробезопасности при работе с электроустановками по ГОСТ 12.1.019-09 и инструкции по эксплуатации прибора.
6.5. Все виды работ с реактивами проводят только в вытяжном шкафу при работающей вентиляции, работа с биологическим материалом осуществляется в боксе, оборудованном бактерицидными лампами.
К выполнению измерений и обработке их результатов допускаются лица с высшим или средним специальным образованием, прошедшие соответствующую подготовку и имеющие навыки работы в области микробиологических исследований.
Приготовление сред, подготовку к анализу проводят в следующих условиях:
Для приготовления агаризованной среды Сабуро 62 г препарата размешивают в 1 дм3 воды, кипятят до полного растворения препарата и фильтруют через ватно-марлевый тампон. Стерилизуют среду в течение 15 мин при температуре (121 +/- 1) °C. Для подавления роста посторонней микрофлоры ex temporo в готовую и охлажденную до температуры (48 +/- 2) °C среду добавляют канамицин из расчета 50 мкг/мл среды, после чего разливают в чашки Петри.
Среду хранят в герметично закрытой упаковке в помещении с относительной влажностью не более 60% и температурой от 5 до 25 °C.
10.1. Отбор проб воздуха
Отбор проб воздуха проводят с учетом требований ГОСТ 12.1.005-88 с изменением N 1 "ССБТ. Общие санитарно-гигиенические требования к воздуху рабочей зоны" и ГОСТ 8.563-96. "ГСП. Методики выполнения измерений".
Для этого воздух аспирируют при помощи пробоотборника на поверхность плотной питательной среды в соответствии с технической документацией (инструкцией) на прибор. Время аспирации и объем отбираемого воздуха зависит от предполагаемой концентрации микроорганизма.
Аппарат перед каждым отбором пробы воздуха тщательно протирают 96° этиловым спиртом. Особенно тщательно обрабатывают поверхность подвижного диска и внутреннюю стенку прибора; наружную и внутреннюю стенку крышки. На подвижной диск устанавливают подготовленную чашку Петри со средой, одновременно снимая с нее крышку. Прибор закрывают. Соприкосновение крышки прибора со средой недопустимо (количество питательной среды в чашки вносят в соответствии с инструкцией к прибору). После отбора пробы воздуха и остановки диска прибор открывают, быстро снимают чашку Петри и закрывают крышкой от данной чашки. На дне чашки Петри стеклографом отмечают точку контроля, время аспирации и дату отбора пробы.
10.2. Выполнение анализа
При выполнении анализа воздуха стерильную среду Сабуро расплавляют, остужают до температуры (48 +/- 2) °C, добавляют канамицин из расчета 50 мкг/мл среды и разливают в чашки Петри.
Контроль чистоты розлива проводят в соответствии с п. 7.1.1 МУК 4.2.2316-08. Для этого чашки с застывшей средой помещают в термостат при температуре 37 °C не менее чем на 18 часов. Проросшие чашки бракуют, стерильные чашки используют для контроля воздуха. Разлитую в чашки питательную среду хранят при температуре (2 - 8) °C не более 10 дней.
После отбора проб воздуха чашки Петри помещают в термостат с температурой (27 +/- 2) °C. Через 5 - 7 суток производят подсчет выросших колоний по культурально-морфологическим признакам.
Ростовые свойства используемой питательной среды должны быть проверены до проведения анализа воздуха в соответствии с требованиями к ростовым свойствам питательных сред, руководствуясь МУК 4.2.2316-08. Для этого эталонный музейный штамм Beauveria bassiana ОРВ-43 высевается на 2 - 3 чашки используемой среды.
Лиофилизованную культуру музейного штамма необходимо использовать 2 - 3 пассажа во избежание потери им заданных ростовых свойств.
Расчет концентрации клеток производят по формуле:
К = (П x 1 000)/C x T кл./м3,
где К - концентрация Beauveria bassiana ОРВ-43 в воздухе, кл./м3;
П - количество типичных колоний, выросших на чашке Петри;
1 000 - коэффициент пересчета на 1 м3 воздуха;
C - скорость аспирации воздуха, л/мин;
T - время аспирации, мин.
Результаты измерений оформляют протоколом по нижеприведенной форме.
количественного микробиологического анализа
Beauveria bassiana ОРВ-43 в воздухе рабочей зоны
1. Дата проведения анализа ________________________________________________
2. Рабочее место (профессия работающего) __________________________________
3. Место отбора пробы (название и адрес организации, производство,
технологическая стадия, точка отбора пробы) _______________________________
3. Вид пробоотборника _____________________________________________________
4. Дата последней метрологической поверки оборудования для отбора проб ____
5. Питательная среда, время инкубации _____________________________________
6. Результаты испытания ростовых свойств питательной среды ________________
7. Количественная и качественная характеристика выросших колоний
(количество типичных колоний) _____________________________________________
8. Результаты идентификации микроорганизмов Beauveria bassiana ОРВ-43
(морфологические признаки) ________________________________________________
9. Результаты расчета концентрации штамма _________________________________
10. Соотношение полученных результатов с уровнем ПДКр.з. __________________
11. Отбор пробы проведен (Ф.И.О., должность, дата, подпись) _______________
12. Идентификация штамма и расчет концентрации проведены (Ф.И.О.,
должность, дата, подпись) _________________________________________________
Вернуться в "Каталог нормативных документов"
Источник информации: https://internet-law.ru/documents/prod/metodicheskie-ukazaniya/2/muk_4_44764.html
На правах рекламы:
|
||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||