"МУК 4.2.992-00. 4.2. Методы контроля. Биологические и микробиологические факторы. Методы выделения и идентификации энтерогеморрагической кишечной палочки Е. coli О157 : Н7. Методические указания"
(утв. Минздравом России 04.11.2000)

1. Разработаны Федеральным центром Госсанэпиднадзора Минздрава России (Л.Г. Подунова, Н.С. Кривопалова, Р.С. Сорокина), Центром Госсанэпиднадзора в Тульской области (Л.И. Шишкина, Т.А. Попова, А.Я. Сыпченко, Н.М. Корнеева), Государственным научным центром прикладной микробиологии (М.В. Храмов).

2. Утверждены Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации - Первым заместителем Министра здравоохранения Российской Федерации 4 ноября 2000 года.

3. Введены впервые.

1. Настоящие Методические указания предназначены для бактериологических лабораторий центров государственного санитарно-эпидемиологического надзора, других учреждений системы здравоохранения Российской Федерации, осуществляющих бактериологическую диагностику острых кишечных инфекций с гемоколитом и развитием гемолитико-уремического синдрома, а также обследование контактных в очагах заболевания и контроль за качеством продовольственного сырья и пищевых продуктов.

2. Методические указания определяют методы обнаружения, выделения и идентификации энтерогеморрагической кишечной палочки Е. coli О157 : Н7 и разработаны в связи с отсутствием в настоящее время нормативных документов по данному разделу бактериологических исследований.

3. Методические указания являются обязательными при контроле продуктов детского питания, молочных и мясных продуктов в ходе проведения противоэпидемических мероприятий при возникновении вспышек, а также осуществления санитарно-эпидемиологического надзора.

4. Настоящие Методические указания созданы с целью унификации и дальнейшего совершенствования бактериологических методов выделения и идентификации энтерогеморрагической кишечной палочки Е. coli О157 : Н7 в связи с регистрацией данной патологии на территории Российской Федерации, а также роста заболеваемости вспышечного характера и спорадической за рубежом.

Методические указания содержат описание микробиологического исследования с целью выделения и идентификации энтерогеморрагической кишечной палочки Е. coli О157 : Н7 из биоматериала от больных неосложненными диареями, острыми кишечными инфекциями с гемоколитом и развитием гемолитико-уремического синдрома, от контактных в очаге, а также пищевых продуктов, сырья.

Предлагаемый дифференциально-диагностический метод основан на использовании некоторых особенностей биохимических свойств данного микроорганизма: отсутствии фермента бета-D-глюкуронидазы и способности ферментировать сорбитол, а также на наличии у Е. coli О157 : Н7 такого "маркера", как продукция веротоксинов (VT1, VT2).

Для осуществления возможности практического использования данной методики в течение короткого периода времени разработана отечественная питательная среда "Сорбитол Е. coli О157 : Н7 агар" (ФС 42-0027-00) для выделения Е. coli О157 : Н7 из клинического материала, объектов окружающей среды (разработчик - Государственный научный центр прикладной микробиологии, отделение "Питательные среды", г. Оболенск Серпуховского района Московской области), а также созданы диагностические сыворотки для реакции агглютинации и методика определения веротоксинов в клиническом материале.

Огромный интерес, проявляемый к острым кишечным инфекциям с гемолитико-уремическим синдромом (ГУС) со стороны научных центров и практического здравоохранения за рубежом и в нашей стране, закономерен.

Количество регистрируемых заболеваний острыми кишечными инфекциями с гемолитико-уремическим синдромом как вспышечного характера, так и спорадических, ежегодно возрастает (США, Канада, Финляндия, Япония, Европа).

Этиологическим фактором этих заболеваний являются энтеро-геморрагические кишечные палочки, продуцирующие веротоксины (шигаподобные токсины). Они представлены довольно большим разнообразием серологических вариантов, из которых Е. coli О157 : Н7 имеет наибольшее эпидемиологическое значение в качестве причин неосложненных диарей и кровавого поноса с последующим развитием ГУС.

К настоящему времени биология эшерихии Е. coli О157 : Н7, эпидемиология, патогенез и диагностика связанных с ней заболеваний достаточно изучены.

Первые сведения о выделении Е. coli О157 : Н7 и регистрация данной патологии в нашей стране имели место в Тульской области, где диагностика острых кишечных инфекций с гемолитико-уремическим синдромом начата с конца 1996 года.

Результаты выделения Е. coli О157 : Н7 из клинического материала от детей, больных ОКИ, сырья, пищевых продуктов (сырого мяса, молока) получены в 1997 - 1999 гг.: установление этиологического фактора (Е. coli О157 : Н7) случаев острых кишечных инфекций, осложненных гемолитико-уремическим синдромом, составило в Тульской области 43%, высеваемость Е. coli О157 : Н7 из пищевых продуктов и сырья - 1,96%; высеваемость культур от животноводов и доярок ферм - 9%.

Наибольшему риску подвержены дети до 5 лет и пожилые люди.

Естественным резервуаром бактерий Е. coli О157 : Н7, патогенных для человека, служит крупный рогатый скот, овцы. Наиболее частый путь распространения этой инфекции - пищевой. Основным фактором передачи является сырая говядина, особенно мясной фарш, мясные полуфабрикаты, прошедшие недостаточную термическую обработку, сырое молоко. Отмечены случаи передачи возбудителя через воду.

3.1. "Основы законодательства Российской Федерации об охране здоровья граждан" от 22.07.1993 N 5487-1.

3.2. Федеральный закон "О санитарно-эпидемиологическом благополучии населения" от 30 марта 1999 г. N 52-ФЗ.

3.3. СанПиН 2.3.2.560-96 "Гигиенические требования к качеству и безопасности продовольственного сырья и пищевых продуктов".

3.4. ГОСТ 26668-85 "Продукты пищевые и вкусовые. Методы отбора проб для микробиологических исследований".

3.5. ГОСТ 26669-85 "Продукты пищевые и вкусовые. Подготовка проб для микробиологических анализов".

3.6. ГОСТ 26670-91 "Продукты пищевые. Методы культивирования микроорганизмов".

3.7. ГОСТ 10444.1-84 "Консервы. Приготовление растворов, красок, индикаторов, питательных сред, применяемых в микробиологическом анализе".

3.8. ГОСТ Р 50474-93 "Продукты пищевые. Методы выявления и определения количества бактерий группы кишечных палочек (колиформных бактерий)".

3.9. ГОСТ Р 50480-93 "Продукты пищевые. Методы выявления бактерий рода Salmonella".

3.10. ГОСТ 9225-84 "Молоко и молочные продукты. Методы микробиологического анализа".

3.11. ГОСТ 9792-73 "Колбасные изделия и продукты из свинины, баранины, говядины и мяса других видов убойных животных и птиц. Правила приемки и методы отбора проб".

3.12. ГОСТ 9958-81 "Изделия колбасные и продукты из мяса. Методы бактериологического анализа".

3.13. ГОСТ 21237-75 "Мясо. Методы микробиологического анализа".

3.14. ГОСТ 4288-76 "Изделия кулинарные и полуфабрикаты из рубленого мяса. Правила приемки и методы испытания".

3.15. ГОСТ Р 50396.0-92 "Мясо птицы, субпродукты и полуфабрикаты птичьи. Методы отбора проб и подготовка к микробиологическим исследованиям".

3.16. ГОСТ 7702.2.2-93 "Мясо птицы, субпродукты и полуфабрикаты птичьи. Методы выявления и определения количества бактерий группы кишечных палочек".

3.17. ГОСТ 7702.2.3-93 "Мясо птицы, субпродукты и полуфабрикаты птичьи. Методы выявления сальмонелл".

3.18. МУ 04-723/3 от 17.12.1984. Методические указания по микробиологической диагностике заболеваний, вызываемых энтеробактериями.

3.19. Инструкция к применению "Набора реагентов для выявления веротоксина у эшерихий" (фирма "Seiken", Япония).

Важным условием выделения эшерихий Е. coli О157 : Н7 из клинического материала является отбор и доставка его в лабораторию в возможно ранние сроки: оптимальными сроками являются 1 - 3 день от момента заболевания.

У больных интенсивность выделения возбудителя снижается, достигая 50% и более низкого уровня через 5 - 8 дней от начала заболевания. Гемолитико-уремический синдром обычно развивается спустя, как минимум, одну неделю после первых признаков диареи, и вероятность обнаружения возбудителя к этому времени существенно уменьшается.

Материалом для бактериологического исследования служат в первую очередь испражнения, моча.

Испражнения собирают в консервант, в качестве которого можно использовать фосфатно-буферную или глицериновую смеси. В случае доставки материала в течение 2 часов с момента забора нативные испражнения отбирают в стерильные флаконы.

При обследовании контактных лиц с целью выявления бактерионосителей возможно взятие материала ректальными тампонами, проволочными петлями.

Мочу после туалета наружных половых органов собирают в стерильную посуду. Перед посевом мочу центрифугируют и засевают осадок. В случае небольшого количества осадка засевают нативную мочу в среду обогащения двойной концентрации в равных объемах (приложение 1 - не приводится).

Методы отбора проб, хранение и подготовка их к анализу регламентированы в действующих нормативных документах на конкретный вид продукта (раздел 3 "Нормативные ссылки").

Проведение испытаний различных пищевых продуктов устанавливает единый метод выявления в определенной навеске пищевого продукта колиформных бактерий в соответствии с ГОСТ Р 50474-93 "Продукты пищевые. Методы выявления и определения количества бактерий группы кишечных палочек (колиформных бактерий)". По классификации кишечных палочек Е. coli О157 : Н7 относится к энтерогеморрагическим, энтеропатогенным кишечным палочкам, поэтому выявление ее как патогена необходимо проводить в 25 г продукта. Возможно выявление Е. coli О157 : Н7 в других объемах, регламентированных нормативной документацией на конкретный вид продукта, а также СанПиН 2.3.2.560-96 "Гигиенические требования к качеству и безопасности продовольственного сырья и пищевых продуктов" (приложения 2, 3 - не приводятся).

Принципы бактериологического исследования с целью выделения Е. coli О157 : Н7 не отличаются от общепринятых для возбудителей острых кишечных инфекций и включают методы классического бактериологического исследования, основанные на выделении чистой культуры микроорганизма и последующей его идентификации по культурально-морфологическим, биохимическим, антигенным свойствам. Основным критерием отнесения штамма к группе энтерогеморрагических эшерихий являются данные, подтверждающие продукцию веротоксинов. Штаммы, не продуцирующие токсинов, не могут считаться возбудителями эшерихиозов у людей.

6.1. Посев клинического материала с целью выделения Е. coli О157 : Н7 проводится на питательную среду Сорбитол Е. coli О157 : Н7 агар (прямой посев) и в соотношении 1:5 в среды накопления, которыми могут служить бульон лактозный с бриллиантовым зеленым и желчью (ГОСТ Р 50474-93), GN Enrichment Broth асс. to HAJNA (Cat. N 10756, фирма "MERCK", Германия). При отсутствии нативного материала испражнения, забранные в консервант, засевают в среду обогащения двойной концентрации (приложение 1).

6.2. Посев пищевых продуктов для выявления БГКП (колиформных бактерий) в определенной навеске продукта проводится в соответствии с ГОСТ Р 50474-93. Дополнительной питательной средой для выявления Е. coli О157 : Н7 является Сорбитол Е. coli О157 : Н7 агар (приложение 2), потому что плотная питательная среда, используемая для выделения колиформных бактерий (Эндо), не может быть использована для целенаправленного поиска Е. coli О151 : Н7, т.к. данный микроорганизм разлагает лактозу подобно другим эшерихиям.

6.3. Подготовку пищевых продуктов для выявления Е. coli О157 : Н7 с применением сред обогащения осуществляют в соответствии с ГОСТ Р 50480-93 "Продукты пищевые. Методы выявления бактерий рода Salmonella", но в качестве сред обогащения могут быть использованы среда Кесслера, трипказо-соевый бульон, бульон лактозный с бриллиантовым зеленым и желчью, Грам-негативный бульон (GN-бульон). После термостатирования посевов при 37 °С в течение 18 - 24 час. проводят высев на плотную среду Сорбитол Е. coli О157 : Н7 агар, обладающую дифференциальными и селективными свойствами (приложение 3).

Отличительным биохимическим свойством Е. coli О157 : Н7 является отсутствие способности ферментировать сорбитол. Для выделения штаммов Е. coli О157 : Н7 необходимо использовать Сорбитол Е. coli О157 : Н7 агар или среды зарубежного производства: Fluorocult(R) E. coli О157 : Н7 Agar (Cat. N 1.04036); Sorbitol MacConkey Agar (SMAC-agar) Cat. N 1.09207; Fluorocult(R) HC Agar acс. to SZABO Cat. N 1.09206 (фирма "MERCK", Германия).

Характеристика роста E. coli О157 : Н7 на плотных питательных средах представлена в таблице 1.

Если на чашке с Сорбитол Е. coli О157 : Н7 агаром выросли 1 - 2 сорбитол-отрицательных колоний, то серологические исследования проводят после посева на одну из сред для первичной дифференциации: агар Клиглера, Олькеницкого, Ресселя. В случае роста на чашке Петри однотипной культуры с 3 - 5 колониями проводят серологическую идентификацию на стекле с "О"- и "Н"-сыворотками к антигенам Е. coli О157 : Н7, либо с латексным антительным диагностикумом.

Серологическая идентификация предусматривает выявление "О"- и "Н"-антигенов у эшерихий Е. coli О157 : Н7.

Определение "О"- и "Н"-антигенов проводится в обычной реакции агглютинации на стекле с эшерихиозными сыворотками к Е. соli О157 : Н7, выпускаемыми АООТ "Биомед" имени И.И. Мечникова (Московская область, Красногорский район, с. Петрово-Дальнее) или латексным антительным диагностикумом производства ГНЦ ПМ (Московская область, Серпуховской район, г. Оболенск). Реакция агглютинации осуществляется в соответствии с наставлениями по применению данных сывороток.

Необходимо отметить, что Е. coli О157 : Н7 имеет антигенные связи с другими эшерихиями (таблица 2).

Все штаммы, дающие положительную реакцию агглютинации, подлежат обязательной биохимической идентификации для подтверждения видовой принадлежности. Биохимические свойства Е. coli О157 : Н7 отражены в таблице 3.

Характерной биохимической особенностью энтерогеморрагических кишечных палочек Е. coli О157 : Н7, в отличие от других Е. coli, является отсутствие способности продуцировать фермент бета-D-глюкуронидазу (95% штаммов) и расщеплять сорбитол.

В остальном биохимические свойства штаммов Е. coli О157 : Н7 практически не отличаются от таковых у Е. coli: ферментируют с кислотообразованием углеводы - глюкозу, маннит, лактозу; не ферментируют адонит и инозит; сбраживают вариабельно рамнозу, сахарозу, салицин, дульцит, раффинозу; не образуют сероводород; не утилизируют цитрат, малонат; не имеют фенилаланиндезаминазы, уреазы; утилизируют ацетат; дают положительную реакцию с метиловым красным и отрицательную Фогеса-Проскауэра; обладают ферментом бета-D-галактозидазой; большинство штаммов (89%) расщепляют аминокислоты лизин и орнитин, не расщепляют аргинин.

Определение фермента бета-D-глюкуронидазы возможно при использовании питательных сред фирмы MERCK: Fluorocult(R) E. coli О157 : Н7 Agar или Fluorocult(R) НС Agar асс. to SZABO. Указанные среды в своей рецептуре содержат 4-methylumbelliferyl-бета-D-glucuronide (MUG), который при наличии у исследуемого штамма бета-D-глюкуронидазы расщепляется ею до глюкуроновой кислоты и компонента 4-methylumbelliferone, который обнаруживается по флюоресценции колоний при освещении длинноволновой ультрафиолетовой лампой (UV-366 nm). Не продуцируя данного фермента, Е. coli О157 : Н7 образуют на вышеуказанных средах флюоресценс-негативные колонии.

Для определения бета-D-галактозидазы и сорбитола используются биохимические пластины для дифференциации энтеробактерий (ПБДЭ) производства НПО "Диагностические системы" (г. Нижний Новгород) и планшеты ММТЕ 1, ММТЕ 2 (НПО "Аллерген", г. Ставрополь).

В практике бактериологических лабораторий учреждений системы здравоохранения широко используются для идентификации энтеробактерий: API-тесты и биохимический экспресс-анализатор "АТВ identification" фирмы BioMerieux (Франция), тест-система BBL "Crystall" фирмы "Becton Dickinson" (Германия), а также идентификатор микроорганизмов MicroTax фирмы "SY-LAB" (Австрия).

С помощью поименованных тест-систем возможно определение всех биохимических свойств и Е. coli О157 : Н7, включая фермент бета-D-глюкуронидазу.

При подтверждении принадлежности выделенной культуры к роду Escherichia, серогруппе О157 или Е. coli О157 : Н7 необходимо определение способности данной культуры продуцировать веротоксины (VТ1, VT2).

Настоящие Методические указания предлагают апробированную и модифицированную методику выявления веротоксинов выделенных культур микроорганизмов с помощью "Набора реагентов для выявления веротоксина у эшерихий" (фирма "Seiken", Япония) для постановки реакции обращенной пассивной латексной агглютинации (далее РОПЛА), методом иммуноферментного анализа (ИФА) с помощью набора Ridasckeen "Веротоксин" (фирма "Biopharm", Германия) и методом биологических проб.

Принцип метода заключается в том, что латексные частицы данного набора, сенсибилизованные специфическими антителами против VT1 и VT2, реагируют с веротоксином образца, что приводит к агглютинации. Комплекс AG+AT диффузно осаждается на дно лунки микропланшета, образуя "зонтик". Об отсутствии веротоксина свидетельствует отрицательная реакция агглютинации - образование плотной латексной бляшки-"пуговки". Методика постановки реакции обращенной пассивной латексной агглютинации аналогична РПГА, проста в постановке и учете результатов. Важным моментом является приготовление образцов из культур эшерихий, позволяющее в полной мере разрушать бактериальные клетки и экстрагировать токсин. В наставлении по применению предложены два варианта приготовления образцов, но оба варианта требуют сложных питательных сред, культивирования в течение 18 - 20 час. на качалке, разрушения клеток с помощью полимиксина В, что является трудоемким для практических лабораторий. Разрушение бактериальных клеток можно проводить с помощью ультразвука на установке УЗТ-101 Ф, для чего делается посев изучаемого штамма на триптозный ГРМ-агар (аналогичной импортной средой является агаризированная среда Brain-heart infusion broth (BHI), Cat. N 51009, фирма "BioMerieux", Франция) с добавлением 90 мкг/мл линкомицина.

После 18 - 20-часового инкубирования при 37 °С выросшую на чашке культуру смывают 3 мл физиологического раствора. Микробную взвесь пипеткой переносят в пробирку диаметром 20 - 23 мм высотой 95 мм. Полученный таким образом образец подвергают ультразвуковой обработке интенсивностью 1 Вт/куб. см, при импульсном режиме работы 10 миллисекунд в течение 5 минут, погружая электрод в микробную взвесь (после каждого образца электрод обрабатывают 70° этиловым спиртом).

Обработанную ультразвуком микробную взвесь переносят в центрифужные пробирки, центрифугируют при 3000 об./мин. 30 минут. Для обнаружения веротоксина берется супернатант.

Постановка реакции с полученным супернатантом и учет результатов обращенной пассивной латексной агглютинации подробно описаны в наставлении по применению набора реагентов "VEROTOX-F", с помощью которого возможно выявление как VT1, так и VT2.

Данная реакция для выявления веротоксинов у эшерихий разных серологических групп, в т.ч. Е. coli О157 : Н7, имеет преимущества перед другими методами: высокая точность, простота постановки, учет результатов реакции через 18 - 20 часов.

Для определения веротоксинов выделенных культур Е. coli О157 : Н7 может быть использован метод иммуноферментного анализа с применением для этих целей наборов Ridascreen "Веротоксин" (Cat. N R-5701 и С-2201, фирма "Biopharm", Германия). В основе процедуры лежит взаимодействие антигенов с антителами. Поставляемый в комплекте набора планшет сенсибилизирован моноклональными антителами к веротоксинам 1 и 2 (VT1 и VT2). Для достижения достаточной чувствительности при определении веротоксинов в выделенных культурах перед иммуноферментным анализом необходимо провести культивацию патогенов в средах обогащения (см. п. 10.3 "Реактивы, питательные среды") в течение 18 - 24 часов при 37 °С. В состав набора входят материалы и реагенты в количестве, достаточном для выполнения 96 определений. Постановка иммуноферментного анализа для выявления веротоксинов проводится в соответствии с методикой, прилагаемой в наставлении к набору.

8.3.1. Определение веротоксинов культур Е. соli О157 : Н7

При отсутствии набора реагентов для выявления веротоксинов выделенных штаммов Е. coli О157 : Н7 (РОПЛА, ИФА) определить веротоксины в супернатанте выделенного штамма можно путем биопробы с использованием белых мышей. Для биопробы следует взять 4 мыши весом 16 - 18 граммов и двум мышам ввести внутрибрюшинно по 1 мл супернатанта. Две другие мыши остаются контрольными, им вводится по 1 мл прокипяченного в течение 45 минут супернатанта. При положительном результате мыши погибают через 10 - 12 часов. В этом случае определяется комплекс токсинов (VT1 + VT2) или один из них, присущий изучаемому штамму. Вскрытие мышей позволяет наблюдать патологические изменения в толстом кишечнике, характеризующиеся явлениями гемоколита (отек слизистой, эритемы, геморрагии). Мыши контрольной группы остаются живы.

8.3.2. Определение веротоксинов в клиническом материале

В случае получения отрицательного результата при исследовании нативного материала путем посева на Сорбитол Е. coli О157 : Н7 агар (прямого и через среду обогащения) или позднего обследования больного ОКИ, когда вероятность выделения культуры резко снижается, возможно определение веротоксинов непосредственно в испражнениях. Испражнения в лабораторию доставляются во флаконе в нативном виде. Не менее 1 г переносят в центрифужную пробирку, заливают 4 - 5 мл физиологического раствора, размешивают стеклянной палочкой и оставляют при комнатной температуре в течение 30 минут, центрифугируют при 3000 об./мин. 30 минут, надосадочную жидкость используют для выявления веротоксинов методом биологических проб. Надосадочная жидкость после центрифугирования фекалий делится на 2 пробы: одна проба кипятится в пробирке 40 - 45 минут с целью разрушения веротоксина и используется как контрольная. На каждую пробу используется по 2 мыши, которым внутрибрюшинно вводится по 1 мл надосадочной жидкости испражнений. В результате мыши, которым был введен нативный экстракт фекалий, гибнут через 10 - 12 часов при наличии веротоксина, а мыши контрольной группы остаются живы.

При наличии незначительного количества возбудителя в пробах и невозможности его выделения классическим методом (на поздних сроках заболевания), а также для получения быстрого результата возможно определение веротоксинов непосредственно из фекалий.

Обнаружение веротоксинов в испражнениях больных является таким же достоверным методом, как и выделение микроорганизма. Основные преимущества этого метода - быстрота определения веротоксинов (т.к. не требуется выделения чистых культур) и возможность определения их концентрации на разных этапах заболевания.

Подготовку испражнений проводят аналогично определению веротоксинов для метода биопроб (п. 8.3.2). Надосадочную жидкость после центрифугирования испражнений в физрастворе используют для определения веротоксинов в реакциях (РОПЛА, ИФА) аналогично обнаружению токсинов выделенных культур Е. coli О157 : Н7. Методика позволяет определить токсин в фекалиях не только качественно, но и показать его концентрацию.

При определении факторов патогенности особый интерес представляют методы, позволяющие обнаруживать токсин бактериального специфического липополисахарида (ЛПС) Е. coli О157 : Н7, а также гены вирулентности посредством изучения цитопатогенной активности в отношении культуры клеток HeLa или почечных клеток Vero. Эффективно также использование методов генетических зондов и ПЦР. Эти исследования недоступны для практических лабораторий и проводятся, как правило, в референс-лабораториях.

Исследование крови с целью обнаружения веротоксинов проводить не рекомендуется, поскольку веротоксины, обладая исключительно высоким аорфинитетом к рецептору УВ 3, очень быстро связываются с ним и практически никогда не определяются в сыворотке крови.

Выявление в сыворотке крови больных эшерихиозом, обусловленным Е. coli О157 : Н7, антител к О-антигену и антитоксических антител является перспективным при диагностике на поздних сроках заболевания, а также для определения причины развития у больных гемолитико-уремического синдрома.

Однако отсутствие отечественных диагностикумов и анатоксинов не позволяет в настоящее время использовать серологические реакции в сети практических лабораторий.

--------------------------------

<*> Производитель - Государственный научный центр прикладной микробиологии, отделение "Питательные среды" (г. Оболенск Серпуховского района Московской области).

<**> Производитель - АООТ "Биомед" имени И.И. Мечникова (Московская область, Красногорский район, с. Петрово-Дальнее).

Возможно использование коммерческих питательных сред, диагностических препаратов и систем идентификации зарубежных фирм, предназначенных для приведенных методов. При использовании их следует руководствоваться рекомендациями фирмы-производителя.

Питательные среды и биологические препараты должны иметь международный сертификат качества ИСО 9.000 или EN 29.000.

10.4.1. Приготовление растворов реактивов и консервантов

10.4.1.1. Физиологический раствор

0,85 г хлористого натрия растворяют в 100 куб. см дистиллированной воды и стерилизуют при температуре (121 +/- 1) °С в течение 30 минут. Хранят при комнатной температуре.

10.4.1.2. Фосфатно-буферная смесь

10.4.1.3. Глицериновая смесь

Натрий хлорид растворяют в дистиллированной воде, смешивают с глицерином и добавляют раствор натрия гидрофосфата в таком количестве, чтобы довести рН до 7,8 - 8,0. Стерилизуют при (112 +/- 1) °С в течение 30 минут. После стерилизации рН = 7,6 - 7,8.

10.4.1.4. Раствор бриллиантового зеленого концентрацией 5 г/куб. дм (по ГОСТ Р 50474-93)

0,5 г бриллиантового зеленого переносят в фарфоровую ступку и постепенно растирают с добавлением горячей дистиллированной воды, затем раствор переливают в мерную колбу вместимостью 100 куб. см и доводят дистиллированной водой до метки. Колбу плотно закупоривают и помещают на 2 - 3 дня в термостат при 37 °С. После этого раствор фильтруют через бумажный фильтр и хранят в темном флаконе с притертой пробкой.

10.4.1.5. Растворы и реактивы для окраски по Граму

Готовят в соответствии с ГОСТ 10444.1.-84.

10.4.2. Приготовление питательных сред

10.4.2.1. Бульон лактозный с бриллиантовым зеленым и желчью (по ГОСТ Р 50474-93)

Ингредиенты тщательно перемешивают в воде, нагревают на слабом огне до кипения, кипятят 1 - 2 минуты, фильтруют через ватно-марлевый фильтр, охлаждают до 45 - 55 °С и устанавливают рН = 7,2 +/- 0,1, после чего среду вновь доводят до кипения. Среда не подлежит стерилизации в автоклаве, ее разливают с соблюдением правил асептики по 10 куб. см в стерильные пробирки с поплавками или по 100 куб. см в стерильные колбы.

10.4.2.2. Среда Кесслера (по ГОСТ Р 50474-93)

Ингредиенты тщательно перемешивают, нагревают на слабом огне до кипения, кипятят 1 - 2 минуты, фильтруют через ватно-марлевый фильтр, охлаждают до 45 - 55 °С, устанавливают рН = 7,3 +/- 0,2.

Среду разливают по 10 куб. см в пробирки с поплавками или в колбы по 100 куб. см и стерилизуют при температуре (115 +/- 1) °С в течение 20 минут.

10.4.2.3. Сердечно-мозговой бульон (BHI), Cat. N 51009, фирма "BioMerieux", Франция

Готовится по прописи, указанной на этикетке, или по инструкции фирмы по приготовлению.

10.4.2.4. Грам-негативный бульон по Хайну (GN Enrichment Broth асс. to HAJNA), Cat. N 10756, фирма "MERCK", Германия (или Cat. N М 242, фирма "Ni Media", Индия)

Готовится по прописи, указанной на этикетке.

10.4.2.5. Трипказо-соевый бульон (Cat. N 51009, фирма "BioMerieux", Франция)

Готовится по прописи, указанной на этикетке.

Среды, поименованные в п.п. 10.4.2.6 - 10.4.2.15, готовятся по прописи на этикетке:

10.4.2.6. Сорбитол E. coli О157 : Н7 агар

10.4.2.7. Агар Клиглера

10.4.2.8. Среда Кесслера

10.4.2.9. Цитратный агар Симмонса

10.4.2.10. ГРМ-агар

10.4.2.11. Среда Ресселя

10.4.2.12. Среды Гисса

10.4.2.13. Триптозный ГРМ-агар

10.4.2.14. Триптозный ГРМ-бульон

10.4.2.15. Среда Олькеницкого